ATTO Technical Manual

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ATTO Technical Manual | Manualzz
ATTO Technical Manual
核酸のアガロースゲル電気泳動のコツ
核酸のアガロースゲル電気泳動のコツ
アガロースゲルの蛍光色素染色のコツ
アガロースゲルの蛍光色素染色のコツ
蛍光色素染色ゲルの撮影の原理とコツ
蛍光色素染色ゲルの撮影の原理とコツ
ATTO Corporation
ATTO Corporation (Osaka)
1-5-32 Yushima Bunkyo-ku Tokyo 〒113-0034
2-1-7 Minami-Morimachi Kita-ku Osaka City
TEL 03-3814-4861 FAX 03-3814-4868
URL http://www.atto.co.jp
〒 530-0054
TEL 06-6365-7121 FAX 06-6365-7125
1
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
核酸のアガロースゲル電気泳動の
パターンの理想のポイントは以下の
とおりです。
●バンドがシャープである
●バックが低い
(高S/N)
●バックが均一である
●泳動がまっすぐ
●輝度と濃度に比例関係がある
これらの条件を満たすためには、
使
用する装置の機能、
実験の操作上の
コツなどが重要です。
実際にきれいなパターンを出すためにはど
のようなことをすればいいのか?をまとめたのがこの資料です。
実験の流れと注意項目
● TE バッファーに BPB(色素)、 ショ糖(比重)
などを混ぜサンプルバッファーとする
●適度に希釈(バンドをシャープに)
●要時調製
●分子量マーカーを用意
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSC
核酸
(DNA/RNA)
を分析するために、
アガロースゲルや
ポリアクリルアミドゲル
(PAG)
などによる電気泳動法が広く
使用されています。
核酸はゲル中で、
分子量毎、
バンド状に分離
されます。
これを可視化、
検出することは広義で
「染色する」
と
言われています。
ここでは、
色々な
「染色する」
の中から、
感度や定量性などに
優れる
「蛍光色素染色法」
について記述し、
アガロースゲル電気
泳動法をテキストに実験上のコツなどをまとめました。
!
あ~!失敗してしまった
原因は色々と考えられますが、
最終的なデータがこんな風
になったらうれしくありません。
こうならないためにこの
技術資料を参考に実験をしてみてください。
! 高いバック
! バンドのボケ
! 2層バッ ク
※上の画像は、実際の現象に似せて加工したものです。
核酸の電気泳動で最も一般的なアガロースゲル電気泳動につい
て実験方法を解説します。
以下はその実験の流れと各ステップで
のポイントを書き出しました。
以降のページではそれぞれのス
テップについて手順や注意すべき点等をまとめます。
「実験の流れと注意項目」
の図では各ステップでの主な注意点、
コツなどの要件を列挙しています。
次ページからはこれらの詳細
を説明していきたいと思います。
●アガロースは電子レンジor湯せんで完全に溶解
●エチジウムブロマイド(EtBr)はゲルに入れない
●溶解後、 冷ましてからゲルトレイに注ぐ
● 5mm厚より 3mm厚を推奨
●全てのウエルにサンプルを添加
●サンプル容量を同じに
●チップの挿入位置、 サンプル液の注入スピード、 最後
の液の押し出しの有無など条件を同じに
●マーカーは両側に入れる
●泳動槽はサブマリンタイプ
●泳動条件は電極間距離に合わせる (5~10V/cm)
●長時間泳動はバッファーを還流
●バッファーは消耗品につき、 要時調製
● EtBr は 0.5ug/ml以下が標準濃度
●振とうしながら染色
●染色液保存は遮光 ・ 室温で1 週間以内
●高バック時は水道水で脱色
●ゲル撮影装置を使用
●蛍光染色剤に適なフィルターを選択
●長時間の紫外線照射は禁物
●解析データは保存する
●蛍光強度から濃度を数値化
●既知濃度バンドから定量
●マーカーから分子量計測
●計測結果を保存
2
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
を量り、記録して おきま す。
④電子レンジまたは湯せんなどでアガロースを完全に溶解します。
電子レンジを使用する場合は突沸※4に注意してください。
沸騰し
てきたら停止させ、
泡立てないよう攪拌し、
再度あたためます。
⑤アガロースが完全に溶けたら、
三角フラスコを秤に載せ、
質量
を量ります。
加熱により蒸発した水分は蒸留水を追加し、
記録し
ておいた質量に合わせます。
ゲル溶液は約60℃以下になるまで
冷ましておきます※5。
①アガロースゲルの濃度を決め、
秤量します※1。
バッファー量:ゲルの幅(W)×長さ(L)×厚み(H)cm=Aml
アガロース量:A×ゲル濃度%=Bg
ゲル厚は標 準的に5 mm が広く使 用されて いますが 、3 m m
にす る こ とで バ ン ド がシ ャ ー プ にな り ま す。
②TAE※2またはTBE※3バッファーをメスフラスコでAml計
量し、
アガロースの粉末と混ぜます。
③アガロース、
バッファーを三角フラスコに入れたら全体の質量
①アガロース粉末の秤量
②バッファーを加える
!
③全体質量を計測
④電子レンジで溶解
⑤蒸留水を加える
⑥水準器を用いて、
ゲルトレイを水平に設置します。
微妙な調整
は、
紙などを重ねて行うと容易に行えます。
⑦コウムをセットしたゲルトレイにゲル溶液を注ぎます※5。
⑧しばらく放置しゲルが固まるのを待ちます。
水準器
⑥ゲルトレイを水平に置く
注意:ゲルに EtBr(エチブロ)を入れない方が定量性がよ
くなります。
定量しない場合は入れても問題ありません。
泳動像 p2「失敗してしまった 2 層バック」
厚み調整の紙
ゲルトレイ
※1:アガロースの種類や濃度は、分離したい核酸の分子量により決めてください。
※2:TAE:40mM トリス、40mM 氷酢酸、1mMEDTA
※3:TBE:89mM トリス、89mM ホウ酸、2mMEDTA
※4:特にゲル濃度が高い場合(2% 以上)注意が必要。加熱中は電子レンジから離れな
いようにしてください。
⑦冷ましたゲルをゲルトレイに注ぐ
※5:ゲルトレイに使用されているアクリルなどの樹脂は、熱により変形の恐れがあ
⑧ゲルを固化させる
ります。6 0 ℃以下に冷ましてからゲル溶液を流し込みます。
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSC
アガ ロー ス ゲル のコ ウ ム形 状を 見 てみ ると 、通常 、歯の 部分 の 断面 は長 方 形を して い ます 。この 形状 の コウ ムで は 、両端
が盛り上がった形のバンドになります。 歯 の 断 面 形 状 を 台 形 に す る と 、 バ ン ド 全 体 の 厚 み が 揃 い 、 シ ャ ー プ な 泳 動
パ タ ー ン が 得 ら れ る よ う に な り ま す 。アト ーで は この 形 状を 採 用し た コウ ム をア ガ ロー ス ゲル 電気 泳 動装 置 に採 用 して
います(AE-6100 型を除く)
コウムの歯の断面形状のバンドパターンへの影響
①長方形断面のコウム
コウム形状にまでこだわった!
②台形断面のコウム
ATTO
①
②
ATTO
アト ー ア ガロ ー ス ゲ ル電 気 泳 動 装置
AE-6111 26/13 検体 48,000 円
AE-6125 32/16 検体 58,000 円
AE-6133 42/21 検体 68,000 円
↑ウエル中のサンプル泳動イメージ
①
②
※製品詳細は弊社顧客部までお問い合わせください。
ATTO
※通常のコウムを削っても、
コウム形状が不揃いになるため、
きれい
なパターンが得られません。
是非アトー社製品をご使用ください。
↑バンドの形状イメージ
3
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
泳動したときのマーカー色素の動き
●ランニングバッファーの調製
TEバッファーにBPB(ブロムフェノールブルー:青)、
XC(キシ
レンシアノール:緑)
等のマーカー色素を入れ、
ショ糖やグリセリ
ン※6で比重を付け、
サンプルバッファーとします。
マーカー色素は
0.001~0.01%程度、
薄く色がつく位の濃度にします※7。
●試料溶液の調製
試料をランニングバッファーで希釈調製します。
適度に希釈して
アプライすることで、
バンドがシャープになります。
目安として
は1バンドあたり10~100ng程度がよいでしょう。
(右図は希釈時
のバンドイメージ)
●試料は要時調製して下さい。
希釈すると保存中に分解・吸着など
で量が少なくなります。
●分子量マーカーを用意
分子量の推定だけでなく、
電気泳動自体の良否の確認も行えるの
で、
一緒に泳動することをお勧めします。
← XC
←BPB
濃 度高
濃度低
サンプル濃度と、バンドの形の関係
※6:グリセリンは弱い変成作用があり、
まれに泳動パターンが乱れるこ
とがあります。
その場合はショ糖を使用してください。
※7:マーカー色素が多いと泳動パターンの乱れや計測時のバックグラウ
ンドの不均一などの原因になります。
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSC
●ウエルにサンプル溶液を注入する場合には、
チップの挿入位置、
サンプル液の注入スピード、
最後の液の押し出しの有無など条件
を同じにしてください。
●サンプル溶液の注入はなるべくゆっくり静かに行います。
各
レーン同じ場所から同じスピードで、
同じ容量を入れてください。
●全てのウエルにサンプルを添加します。
またその時の添加容量
を同じにします。
各レーンへの電荷をそろえることでパターンが
乱れることを防ぎます。
●基本的にマーカーは両側に添加します。
レーン数が多いときは
中心レーンにも流しておくと後で分子量の計測精度が向上します。
ピペットのチップ
分子量マーカー
試料
分子量マーカー
サンプル添加の模式図
両端に分子量マーカー、
間
に試料をアプライします。
サンプル溶液
アガロースゲル
サンプルウエル
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSC
●長時間(2 ~ 3 時間以 上)泳動
バッ フ ァ ー 還 流 や 冷 却 を 行 っ て く だ さ い。バッファー
の緩 衝 能 の 低 下 や イ オ ン 強度 の ム ラ に よ る 泳 動 パ タ ーン
の乱 れ を 防ぐ こ と がで き ま す。
●泳動用バッファーは消耗品
要時 調 製 し て 下 さ い 。繰返 し 使 用 す る 時 は 還 流 や冷 却 を
行ってください。
●アガロースゲル電気泳動槽
アガロースゲルの電気泳動に使用されるサブマリンタイプの電気
泳動槽は基本構造が単純であるため、
ほぼ完成されています。
従って、
ゲルさえ普通に出来ていれば、
マニュアルに従って使用
することで綺麗なパターンが得られます。
●泳動用バッファー
ゲル が1~2mm沈む程 度の量 を入 れてく ださ い。
ただし、
バッ
ファー量が極端に少なくなる場合は泳動時間は短く、
電圧も低め
に設定します。
●基本的には電圧一定で電気泳動
外部から電源装置をつなげて使用する泳動槽の場合は、
電極間距
離
(陽極と陰極の白金線の間の距離)
に合わせ、
5~10V/cmを標
準にして定電圧条件で泳動してください。
電極間距離20cmの場合
は100~200V定電圧が標準設定です。
●ミューピッド
電源 一 体 型 の 簡 易 泳 動 槽 のた め 、設定 項 目 は 少 な い で す
が、ゲルの出来、バッファーの出 来などで結果 が大きく左
右さ れ ま す。基本 に 忠 実な 実 験 方法 が 望 ま れま す 。
4
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
● 染 色 し た 後 に は ・・・・
バック が高い 時は 水道水 に浸 して 3 0 ~ 60 分脱色し ます。
蛍光 染 色 色素 に よ り 、脱色 が 不 要な も の も あり ま す 。
●染 色 は い つ す る ?
アガ ロー ス ゲル は 後染 め が理 想 的で す ※8。
●染 色 液 は 保存 が 利 く の?
EtBr染色液の保存は遮光・室温で1週間以内に留めてください。
SYBR Green/Gold はほとんど保存が利かず、 使い捨てが基本で
す。
●蛍 光 色 素 の 選 択 は?
アガ ロ ー ス ゲ ル で 泳 動 し た核 酸 の 蛍 光 染 色 は 主 に エ チジ
ウムブロマイド(EtBr)が利用されています。分子量の小さ
いものや要求 感度画高い場 合は SYBR Green などの高感度
のも の を 使用 し ま す。
●蛍光染色試薬の安全性
EtBrなどの蛍光染色試薬は核酸に特異的に結合することから、
発
ガン性・変異原性などが報告されています。
操作時は必ずグロー
ブを 着 用 し て く だ さ い 、使用 後 は 所 定 の 廃 棄 手 順 を経 て
処理 し て くだ さ い 。
●染 色 液 の 濃 度 は ?
EtBr 染色液は 0.5ug/ml 以下が標準 濃度です ※9。
●染 色 方 法 は?
ゲルを EtBr 染色液に浸し、振とうしながら 染色 5 ~ 30 分
染色 し ま す。エチ ジ ウ ム ブ ロ マ イ ド は ゲ ルへ の 浸 透 が 早
く、短時 間 の 染色 で も 十分 な 感 度が 得 ら れま す 。
SYBR Green は 30 ~ 60 分染色しま す。EtBr に比べるとゲ
ルへ の浸 透性 が低 く、相対 的に 染色 時間 が長 くな りま す。
SYBR Gold は EtB r と同じ時間 の染色で高 感度が得 られま
す。
※8:ゲルに蛍光色素を入れて作製し泳動すると、
バックグラウンド
の不均一、泳動パターンの乱れの原因となります。
※9:EtBrを希釈する溶液は、
使用済みの泳動バッファーまたは水道
水を使用します。
●そ の 他 の蛍 光 染 色 試薬 の 特 長 比較
SYBR (R) Green Ⅰ/ SYBR (R) Green Ⅱ/ SYBR
染色試薬の種類
エチジウムブロマイド
EtBr
DNA染色
RNA染色
感度
(分子量大)
感度
(分子量小)
染色性
(R)
Gold など
危険性
○〔良好) 発ガン性
ランニング
コスト
○
△
○
△
SYBR
®
GreenⅠ
○
△
○
◎
△
変異原性
○
×
SYBR
®
GreenⅡ
△
◎
○
○
△
変異原性
×
SYBR
®
Gold
○
○
○
○
○〔良好) 変異原性
△
DNAの蛍光染色試薬感度比較データ
電気泳動条件データ
分子量
サンプル:λ-HindⅢ DNA希釈系列
(5ng、
2.5ng、
1.25ng、0.625ng、0.3125ng/lane)
電気泳動:0.8%アガロースゲル、100V定電圧、45分
染色条件:①0.5ug/ml EtBr染色液に浸し、
振とうしながら30分
:②SYBR GreenⅠ染色液に浸し、
振とうしながら30分
:③SYBR Gold染色液に浸し、
振とうしながら30分
検
出:①EtBr 312nmUV YA-3フィルター
:②SYBR Green 254nmUV OYフィルター
:③SYBR Gold 254nmUV OYフィルター
撮
影:アトー プリントグラフ
23130bp
9416bp
6557bp
4361bp
2322bp
2027bp
525bp
②
①
③
検出感度比較
EtBrは分子量
「2027bp」
の
「26pg」
まで検出できました。
し
かし、分子量「525bp」では「54pg」まで検出できました。
SYBR Green/Goldは分子量
「2027bp」
の
「13pg」
のバンドま
で検出できました。
分子量
「525bp」
では
「7pg」
まで検出で
きました。
SYBR Green/Goldは、EtBrと比べると分子量「2027bp」の
バンドでは約2倍の感度、
分子量
「525bp」では約8倍の感
度であることが分かります。
このことから、
分子量が大きい(2kbp以上)
バンドの検出で
はSYBR Green/Goldの優位性はあまりないようです。
しか
し、
2kbp以下のバンドの場合は感度面で、
SYBR Green/Gold
に優位性が認められます。
バンドあたりの量(pg)
分子量(bp)
23130
2385
1193
596
298
149
9416
970
485
243
121
61
6557
675
338
169
84
42
4361
450
225
112
56
28
2322
239
119
60
30
15
2027
525
レーン総量(ng)
209
54
5
105
27
2.5
52
14
1.25
26
7
0.625
13
3
0.3125
ゲル中のバンドあたりのDNAの量算出方法
バンドの量(pg)
=レーン総量(ng)×(分子量÷λDNA全体の分子量)×1000
5
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
●蛍光の原理
EtBrに代表される核酸の蛍光染色では、
紫外線照射により蛍光物質が励起され蛍
光を発します。
EtBrなどの蛍光物質は核
酸に特異的に結合し、
その結合量は核酸
の分子量、
濃度に依存しています。
つま
り、
分子量が大きく、
量が多いバンドは
より強く光り、
反対に分子量が小さく、
量が少ないバンドは蛍光が弱くなりま
す。
(蛍光検出の基本概念)
E
励起状態
基底状態
E
E
E
光
E
UV照射
EtBr分子
基底状態
E
●検出感度と紫外線の波長との関係
紫外線照射装置を用いる場合、
EtBrや
SYBR Greenなどの蛍光物質では254nmの
短波長が最も検出感度が高くなります。
●紫外線照射によるバンドの消失
紫外線照射により核酸画分解され、
蛍光
が徐々に弱くなり、
最終的にバンドは消
失します。
1ng以下のバンドは254nmの波
長で1分程度で消失してしまいます。
●励起光源
蛍光物質を励起させる最適な光の波長は物質によって異なりま
す。EtBr、SYBR Green/Goldでは250~310nmの紫外線を使用
します。
蛍光は、
紫外線プロテクターを着用すれば目視が可能
です。
また、
画像撮影装置での記録も可能となります。
●撮影用フィルター
画像撮影装置
「プリントグラフ」
や
「ライトキャプチャー」
で
撮影する場合、
蛍光色素に適した光学フィルターを選択する必
要があります。
詳細は撮影装置の取扱説明書を参照ください。
紫外線照射によるバンドの消失
アトーの画像撮影装置にはFREEZE機能があり、
露出が決まったら
画像をFREEZEできるので紫外線照射時間を最小限に出来ます。
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOLOGY ATTO BIOSC
ムで す 。ライ ト キ ャ プ チ ャ ー で は カメ ラ が 冷 却 C C D カ
メラ に な り、化学 発 光 検出 ま で 可 能と し た もの で す 。
(→価格 2,050,000円~ 2,600,000円)
●蛍光ゲルの検出及びデータ取得にはゲル撮影装置を使用します
※10
。
●蛍光色素染色をしたゲルは、
ラップや紫外線透過型のアクリル
トレイに乗せて紫外線照射装置の上に置きます。
●プリントグラフシリーズ
高感度モノクロCCDカメラを独自のカメラコントローラーで制
御して、
好みの検出感度で蛍光染色ゲルの撮影を行うことが可能
です。
適正な画像を得るためのフィルターの組み合わせや、
用途
に合わせた遮光キャビネットなどを備えています。
予算や用途に
合わ せて さま ざま なタ イプ から シス テム を選 択で きま す。
(→価格 900,000円~ 1,600,000円)
●ライトキャプチャー
プリントグラフと同様に、
蛍光ゲル撮影が可能な画像撮影システ
撮影システムのフィルターの効果
プリントグラフ
100
相対強度
※10:アトー蛍光ゲル撮影装置は、
電気泳動のノウハウ
をもとに、
蛍光染色ゲルの検出に伴う高感度検出、
迅速な
データ出力、
撮影画像のデジタル化などを実現しました。
こ
れらの装置は励起光源に紫外線照射装置(254nm~365nm)を
用い、
蛍光物質に最適な蛍光撮影フィルターを装備し、
高
感度CCDカメラとシャッタースピードコントローラーの組み
合わせで装置を構成しています。
蛍光ゲルの撮影・保存に
は是非上記製品をお使いください。
50
0
300
400
500
600
700
波長 (nm)
↓
適正なフィルターを使用
↓
相対強度
100
50
0
300
400
500
600
ライトキャプチャー
700
波長 (nm)
6
蛍光染色ゲル作製・撮影のコツ
「アガロースゲル」
プリントグラフの構造とフィルターの役割
●CCDカメラ
プリングラフでは、
微弱な蛍光を捉えることが出来る高
感度モノクロCCDカメラを採用しています。
●ショートウエーブパスフィルター
紫外線照射装置の蛍光管の筋を見えなくするための
フィルターです。
プリングラフでは、
CCDカメラ本
体に組込まれています。
●ズームレンズ
撮影範囲を可変することの出来るズームレンズです。
絞
りを調節することで露出の微調整も行います。
●オレンジフィルター
EtBr
(エチジウムブロマイド)
染色ゲルの蛍光撮影時
のバックグラウンドを低減します。
●フィルターケース
オレンジフィルターなどのフィルターをセットします。
●UVカットフィルター
紫外線照射装置点灯時のUV光をカット
します。
ここはゲルを直接観察するとき
の覗き窓となるため、
紫外線防護の働き
もします。
●覗き窓
直接ゲルを観察するときにここから覗き込
みます。
●遮光キャビネット
簡易暗室になります。
●紫外線照射装置
蛍光色素の励起光源です。
トランスイルミネーター
ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSCIENCE & BIOTECHNOL OGY ATTO BIOSC
値化するためのソフトウエアです。
濃度を数値化できれば、
バンドの濃さを比較したり、
濃度を求め
ることが可能です。
●確実なパターン解析を行うために
画像解析ソフトウエアは便利な機能が付いていますが、
定量デー
タを出す場合には再現性が求められます。
データの再現性を挙げ
る最も良い方法はきれいな電気泳動パターンを得ることです。
こ
こまでに記述してきた内容を参考にして、
きれいな電気泳動パ
ターンが得られる実験を行ってください。
●分子量の推定
分子量マーカーの各バンドの分子量と移動度を比較して検量線を
作成すれば、
目的バンドの分子量を推定することが可能です。
●濃度定量
蛍光色素染色ゲルのバンドからは、
濃度に比例した蛍光強度が得
られます。
この蛍光強度からバンドの濃度を数値化することが可
能です。
電気泳動パターン解析ソフトウエアはバンドの濃度を数
アトーLane Analyzer/CS Analyzerの主な機能
※製品に関するお問い合わせは下記弊社営業部までご連絡ください。
7
8

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