BACTEC™ Plus Aerobic/F Culture Vials



BACTEC

™

English: pages 1 – 3

Français : pages 3 – 5

Deutsch: Seiten 5 – 7

Plus Aerobic/F Culture Vials

Soybean-Casein Digest Broth in a Plastic Vial

Italiano:

Español: pagine 7 – 9 páginas 9 – 11

Português: páginas 11 – 13



8089074(02)

2015-04

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οδηγίες. / Kasutusjuhiste suhtes kontakteeruge oma kohaliku BD esindajaga. / Ota yhteys lähimpään BD:n edustajaan ohjeiden saamiseksi. /

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INTENDED USE

BD BACTEC Plus Aerobic/F medium is used in a qualitative procedure for the aerobic culture and recovery of microorganisms (bacteria and yeast) from blood.

The principal use of this medium is with the BD BACTEC fluorescent series instruments.

SUMMARY AND EXPLANATION

The sample to be tested is inoculated into one or more vials which are inserted into the

BACTEC fluorescent series instrument for incubation and periodic reading.

Each vial contains a chemical sensor which can detect increases in CO

2

produced by the growth of microorganisms. The sensor is monitored by the instrument every ten minutes for an increase in its fluorescence, which is proportional to the amount of CO

2

present. A positive reading indicates the presumptive presence of viable microorganisms in the vial. Detection is limited to microorganisms that will grow in a particular type of medium.

Resins have been described for the treatment of blood specimens both prior to and after their inoculation into culture media. Resins have been incorporated into

BACTEC culture media to enhance recovery of organisms without a need for special processing.

1-3

PRINCIPLES OF THE PROCEDURE

If microorganisms are present in the test sample inoculated into the BACTEC vial, CO

2

will be produced when the organisms metabolize the substrates present in the vial. Increases in the fluorescence of the vial sensor caused by the higher amount of CO

Analysis of the rate and amount of CO contains viable organisms.

2

2

are monitored by the BACTEC fluorescent series instrument.

increase enables the BACTEC fluorescent series instrument to determine if the vial is positive, i.e., that the test sample

REAGENTS

The BACTEC culture vials contain the following reactive ingredients prior to processing:

List of Ingredients BACTEC Plus Aerobic/F (442023)

Processed Water 30 mL

w/v

Soybean-Casein Digest Broth

Yeast Extract

3.0%

0.25%

Amino Acids 0.05%

Sugar 0.2%

Sodium Polyanetholsulfonate (SPS) 0.05%

Vitamins 0.025%

Antioxidants/Reductants 0.005%

Nonionic Adsorbing Resin

Cationic Exchange Resin

13.4%

0.9%

All BACTEC media are dispensed with added CO

2

.

Warnings and Precautions:

The prepared culture vials are for in vitro diagnostic use.

This product contains dry natural rubber.

Pathogenic microorganisms, including hepatitis viruses and Human Immunodeficiency Virus, may be present in clinical specimens. "Standard

Precautions" 4-7 and institutional guidelines should be followed in handling all items contaminated with blood.

Prior to use, each vial should be examined for evidence of contamination such as cloudiness, bulging or depressed septum, or leakage. DO NOT USE any vial showing evidence of contamination. A contaminated vial could contain positive pressure. If a contaminated vial is used for direct draw, gas or contaminated culture media could be refluxed into the patient’s vein. Vial contamination may not be readily apparent. If a direct draw procedure is used, monitor the process closely to avoid refluxing materials into the patient.

Prior to use, the user should examine the vials for evidence of damage or deterioration. Vials that are cracked or leaking, or display turbidity, contamination, or discoloration (darkening) should not be used. On rare occasions, a vial neck may be cracked and the neck may break during removal of the flip-off cap or in handling. Also, on rare occa sions a vial may not be sealed sufficiently. In both cases the contents of the vials may leak or spill, especially if the vial is inverted. If the vial has been inoculated, treat the leak or spill with caution, as pathogenic organisms/agents may be present. Before discarding, sterilize all inoculated vials by autoclaving.

Positive culture vials for subculturing or staining, etc.: before sampling it is necessary to release gas which often builds up due to microbial metabolism.

Sampling should be performed in a biological safety cabinet if possible, and appropriate protective clothing, including gloves and masks, should be worn. See

Procedure section for more information on subculturing.

To minimize the potential of leakage during inoculation of specimen into culture vials, use syringes with permanently attached needles or Luer-Lok™ tips.

Storage Instructions

The BACTEC vials are ready for use as received and require no reconstitution or dilution. Store in a cool, dry place (2° – 25 °C), out of direct light.

SPECIMEN COLLECTION

The specimen must be collected using sterile techniques to reduce the chance of contamination. The recommended specimen volume is 8 – 10 mL. It is recommended that the specimen be inoculated into the BACTEC vials at bedside. A 10cc or 20cc syringe with a Luer-Lok brand tip is used to draw the sample, or a Vacutainer™

Brand Needle Holder and a Vacutainer™ Brand Blood Collection Set, Vacutainer™ Safety-Lok™ Blood Collection Set or other tubing “butterfly” set may be used. If using a needle and tubing set (direct draw), carefully observe the direction of blood flow when starting sample collection. The vacuum in the vial will usually exceed 10 mL, so the user should monitor the volume collected by means of the 5 mL graduation marks on the vial label. Sample volumes as low as 3 mL can be used, however, recovery will not be as great as with larger volumes.

The inoculated BACTEC vial should be transported to the laboratory as quickly as possible.

PROCEDURE

Remove the flip-off cap from the BACTEC vial top and inspect the vial for cracks, contamination, excessive cloudiness in medium, and bulging or indented septums. DO NOT USE if any defect is noted. Before inoculating, swab the septum with alcohol (iodine is NOT recommended). Aseptically inject or draw directly

8 – 10 mL of specimen per vial. If sample volumes of 3 – 7 mL are used, recovery will not be as great as with larger volumes (see Limitations of the Procedure).

Inoculated aerobic vials should be placed in the BACTEC fluorescent series instrument as soon as possible for incubation and monitoring. If placement of an inoculated vial into the instrument has been delayed and visible growth is apparent, it should not be tested in the BACTEC fluorescent series instrument, but rather it should be subcultured, Gram-stained and treated as a presumptively positive vial.

Vials entered into the instrument will be automatically tested every ten minutes for the duration of the testing protocol period. Positive vials will be determined by the BACTEC fluorescent series instrument and identified as such (see the appropriate BACTEC Fluorescent Series Instrument User’s Manual). The sensor inside the bottle will not appear visibly different in positive and negative vials, however the BACTEC fluorescent series instrument can determine a difference in fluorescence.

If at the end of the testing period a negative vial appears visually positive (i.e., chocolatized blood, bulging septum, lysed and/or very darkened blood in

BACTEC Plus Aerobic/F medium), it should be subcultured and Gram-stained and treated as a presumptively positive vial.

Positive vials should be subcultured and Gram-stained. In a great majority of cases, organisms will be seen and a preliminary report can be made to the physician. Subcultures to solid media and a preliminary direct antimicrobial susceptibility test may be prepared from fluid in the BACTEC vials.

Subculturing: Prior to subculturing, put the vial in an upright position, and place an alcohol wipe over the septum. To release pressure in the vial, use an appropriate venting unit (BD catalog # 249560) or equivalent. The needle should be removed after the pressure is released and before sampling the vial for subculture. The insertion and withdrawal of the needle should be done in a straight-line motion, avoiding any twisting motions.

QUALITY CONTROL

Quality control requirements must be performed in accordance with applicable local, state and/or federal regulations or accreditation requirements and your laboratory's standard Quality Control procedures. It is recommended that the user refer to pertinent CLSI guidance and CLIA regulations for appropriate Quality

Control practices.

DO NOT USE culture vials past their expiration date.

DO NOT USE culture vials that exhibit any cracks or defects; discard the vial in the appropriate manner.

Quality Control Certificates are provided with each carton of media. Quality Control Certificates list test organisms, including ATCC of the organisms listed on the Quality Control Certificate for this medium:

® cultures specified in the

CLSI Standard M22, Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media. The range of time-to-detection in hours was ≤ 72 hours for each

• Neisseria meningitidis

ATCC 13090

• Haemophilus influenzae

ATCC 19418

• Streptococcus pneumoniae*

ATCC 6305

• Streptococcus pyogenes

ATCC 19615

• Pseudomonas aeruginosa

ATCC 27853

• Candida glabrata

ATCC 66032

• Staphylococcus aureus

ATCC 25923

• Escherichia coli

ATCC 25922

• Alcaligenes faecalis

ATCC 8750

*CLSI recommended strain

For information on Quality Control for the BACTEC fluorescent series instrument, refer to the appropriate BACTEC Fluorescent Series Instrument User’s Manual.

RESULTS

A positive sample is determined by the BACTEC fluorescent series instrument and indicates the presumptive presence of viable micro organisms in the vial.

LIMITATIONS OF THE PROCEDURE

Contamination

Care must be taken to prevent contamination of the sample during collection and inoculation into the

BACTEC vial. A contaminated sample will give a positive reading, but will not indicate a relevant clinical sample. Such a determination must be made by the user based on such factors as type of organism recovered, occurrence of the same organism in multiple cultures, patient history, etc.

Recovery of SPS Sensitive Organisms From Blood Samples

Because blood can neutralize the toxicity of SPS toward organisms sensitive to SPS, the presence of maximum volumes of blood (8 – 10 mL) can help to optimize recovery of these organisms. To enhance the growth of SPS sensitive organisms when less than 8 mL of blood is inoculated, additional whole human blood may be added.

Some fastidious organisms, such as certain Haemophilus species, require growth factors, such as NAD, or factor V, which are provided by the blood specimen.

If the blood specimen volume is 3.0 mL or less, an appropriate supplement may be required for recovery of these organisms. BACTEC FOS™ Fastidious

Organism Supplement or whole human blood may be used as nutritional supplements.

Nonviable Organisms

A Gram-stained smear from a culture medium may contain small numbers of nonviable organisms derived from media constituents, staining reagents, immersion oil, glass slides, and specimens used for inoculation. In addition, the patient specimen may contain organisms that will not grow in the culture medium or in media used for subculture. Such specimens should be subcultured to special media as appropriate.

Antimicrobial Activity

Neutralization of the antimicrobial activity by resins varies depending upon dosage level and timing of specimen collection. The use of supplementary additives should be considered in appropriate situations; as an example, the addition of penicillinase when β-lactam therapy is being employed.

Recovery of Streptococcus pneumoniae

In aerobic media, S. pneumoniae will typically be visually and instrument positive, but in some cases no organism will be seen on Gram stain or recovered on routine subculture. If an anaerobic vial was also inoculated, the organism can usually be recovered by performing an aerobic subculture of the anaerobic vial, since this organism has been reported to grow well under anaerobic conditions.

11

General Considerations

Optimum recovery of organisms will be achieved by adding maximum amounts of blood. Published clinical studies have shown that the use of lower blood volumes may adversely affect recovery and/or detection times of organisms.

12 Blood may contain antimicrobials or other inhibitors which may slow or prevent the growth of microorganisms. False negative readings may result when certain organisms are present which do not produce enough CO to be detected by the system or if significant growth has occurred before placing the vial into the system. In analytical studies, this device recovered 17 of 18 Leuconostoc spp. tested.

False positivity may occur when the white blood cell count is high. The default 5 day protocol was utilized for all analytical testing with this device, and protocol lengths of >5 days have not been evaluated.

Due to the nature of biological materials in media products and inherent organism variability, the user should be cognizant of potential variable results in the recovery of certain microorganisms.

2

EXPECTED VALUES AND SPECIFIC PERFORMANCE CHARACTERISTICS

Performance of the BD BACTEC Plus Aerobic/F medium in glass vials has been established by a number of external clinical studies.

1-3,8,9 Seeded laboratory studies performed by BD have shown equivalent performance of the BD BACTEC Plus Aerobic/F medium in plastic vials compared to the BD BACTEC Plus

Aerobic/F medium in glass vials.

10 The yeasts Candida albicans, C. glabrata, and Cryptococcus neoformans were tested in the analytical testing of this device.

AVAILABILITY

Cat. No.

442023

Description

BD BACTEC™ Plus Aerobic/F Medium

REFERENCES

1. Wallis, C. et al. 1980. Rapid isolation of bacteria from septicemic patients by use of an antimicrobial agent removal device. J. Clin. Microbiol.

11:462-464.

2. Applebaum, P.C. et al. 1983. Enhanced detection of bacteremia with a new BACTEC resin blood culture medium. J. Clin. Microbiol. 17:48-51.

3. Pohlman, J.K. et al. 1995. Controlled clinical comparison of Isolator and BACTEC 9240 Aerobic/F resin bottle for detection of bloodstream infections. J.

Clin. Microbiol. 33:2525-2529.

4. Clinical and Laboratory Standards Institute. 2005. Approved Guideline M29-A3. Protection of laboratory workers from occupationally acquired infections,

3rd ed. CLSI, Wayne, Pa.

5. Garner, J.S. 1996. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee, U.S. Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for isolation precautions in hospitals. Infect. Control Hospital Epidemiol. 17: 53-80.

6. U.S. Department of Health and Human Services. 2007. Biosafety in microbiological and biomedical laboratories, HHS Publication (CDC), 5th ed. U.S.

Government Printing Office, Washington, D.C.

7. Directive 2000/54/EC of the European Parliament and of the Council of 18 September 2000 on the protection of workers from risks related to exposure to biological agents at work (seventh individual directive within the meaning of Article 16(1) of Directive 89/391/EEC). Official Journal L262, 17/10/2000, p. 0021-0045.

8. Smith, J.A. et al. 1995. Comparison of BACTEC 9240 and BacT/Alert blood culture systems in an adult hospital. J. Clin. Microbiol. 33:1905-1908.

9. Flayhart, D. et al. 2007. Comparison of BACTEC Plus blood culture media to BacT/Alert FA blood culture media for detection of bacterial pathogens in samples containing therapeutic levels of antibiotics. J. Clin. Microbiol. 45:816-821.

10. Data available from BD Diagnostics.

11. Howden, R.J. 1976. Use of anaerobic culture for the improved isolation of Streptococcus pneumoniae. J. Clin. Pathol. 29:50-53.

12. IIstrup, Duane M. and John A. Washington. 1983. The importance of volume of blood cultured in the detection of bacteremia and fungemia. Diagn.

Microbiol. Infect Dis. 1:107-110.

Technical Information: In the United States contact BD Technical Service and Support at 800-638-8663 or www.bd.com/ds.



BACTEC Plus Aerobic/F Culture Vials

Bouillon digéré de soja-caséine en flacon plastique

Français

APPLICATION

Le milieu BD BACTEC Plus Aerobic/F serve à une procédure qualitative de culture aérobie et de mise en évidence des microorganismes (bactéries et levures) du sang. Ce milieu est essentiellement utilisé avec les appareils BD BACTEC de la série à fluorescence.

RESUME ET EXPLICATION

L'échantillon à analyser est ensemencé dans un ou plusieurs flacons qui sont ensuite placés dans un appareil BACTEC de la série à fluorescence pour être incubés et lus périodiquement. Chaque flacon contient un détecteur chimique qui détecte toute augmentation en CO microorganismes. L'appareil contrôle ce détecteur toutes les dix minutes en recherchant une augmentation de la fluorescence qui est proportionnelle à la quantité de CO

2

2

résultant de la croissance des

présent. Une lecture positive indique la présence présumée de microorganismes viables dans le flacon. La détection se limite aux microorganismes pouvant se développer dans un type particulier de milieu de culture.

Des résines ont été décrites pour préparer les échantillons de sang avant et après leur ensemencement sur les milieux de culture. De telles résines ont été incorporées dans les milieux de culture BACTEC afin d'améliorer la mise en évidence des microorganismes sans avoir à recourir à des préparations spéciales.

1-3

PRINCIPES DE LA METHODE

Si des microorganismes sont présents dans l’échantillon inoculé dans le flacon BACTEC, ils métabolisent les substrats contenus dans le flacon et produisent du

CO

2

. L'appareil BACTEC de la série à fluorescence surveille à la recherche de toute augmentation de la fluorescence du détecteur du flacon due à un

2

. L'analyse de l'accroissement, taux et quantité, du CO

2

permet à l'appareil BACTEC de la série à fluorescence de

REACTIFS

Avant traitement, les flacons de culture BACTEC contiennent les réactifs suivants :

Liste des composants

Eau traitée

BACTEC Plus Aerobic/F (442023)

30 mL

poids/vol

Bouillon digéré de soja-caséine

Extrait de levure

3,0%

0,25%

Aminoacides 0,05%

Sucre 0,2%

Polyanétholsulfonate de sodium (PSS) 0,05%

Vitamines 0,025%

Antioxydants/réducteurs 0,005%

Résine adsorbante non ionique

Résine échangeuse de cations

13,4%

0,9%

Tous les milieux BACTEC sont fournis avec CO

2

.

Avertissements et précautions :

Les flacons de culture fournis sont destinés au diagnostic in vitro.

Ce produit contient du caoutchouc naturel sec.

Des microorganismes pathogènes, notamment les virus de l’hépatite et de l’immunodéficience humaine, sont susceptibles d’être présents dans les

échantillons cliniques. Respecter les « Précautions standard » 4-7 et les consignes en vigueur dans l’établissement pour manipuler tout objet contaminé avec du sang.

Avant utilisation, il convient d’examiner les flacons pour vérifier l’absence de toute contamination, à savoir turbidité, bouchon protubérant ou enfoncé, ou de fuite.

NE PAS UTILISER les flacons présentant des signes de contamination. Les flacons contaminés peuvent être sous pression. Si un flacon contaminé est utilisé

3

pour un prélèvement direct, des gaz ou du milieu contaminé pourraient être refoulés dans la veine du patient. La contamination du flacon peut ne pas être visible. Si une procédure de prélèvement direct est utilisée, surveillez de près la procédure pour éviter tout reflux de matériaux dans le patient.

Avant utilisation, il convient d’examiner les flacons pour vérifier l’absence d’endommagement ou de détérioration. Ne pas utiliser un flacon fissuré ou qui fuit, ou dont le milieu est trouble, contaminé ou décoloré (foncé). Occasionnellement, il peut arriver que le goulot d’un flacon soit fêlé et se rompe lors du retrait de la capsule de protection ou pendant les manipulations. Il peut aussi arriver qu’un flacon ne soit pas hermétiquement bouché. Dans les deux cas, le contenu du flacon risque de fuir ou de se répandre, surtout si le flacon est inversé. Si le flacon a été ensemencé, traiter la fuite ou le liquide répandu avec précaution en raison de la présence éventuelle de microorganismes ou d’agents pathogènes. Stériliser à l’autoclave les flacons ensemencés avant de les jeter.

Flacons contenant une culture positive destinée au repiquage ou à la coloration, etc. : avant de faire un prélèvement, il est nécessaire de libérer tout gaz accumulé résultant du métabolisme bactérien. Les prélèvements doivent être effectués dans une hotte biologique de sécurité, si possible, et il convient de porter des vêtements de protection appropriés, dont gants et masque. Pour plus d’informations sur le repiquage, voir la rubrique Méthode.

Afin de minimiser les risques de fuite pendant l’ensemencement des échantillons dans les flacons de culture, utiliser des seringues munies d’aiguilles ou d’embouts Luer-Lok inamovibles.

Instructions Pour La Conservation

Les flacons BACTEC sont reçus prêt à l'emploi et ne demandent aucune reconstitution ou dilution. Les conserver dans un endroit frais et sec (2 à 25 °C), à

l'abri de la lumière directe.

PRELEVEMENT DES ECHANTILLONS

Les échantillons doivent être recueillis de façon aseptique afin de réduire les risques de contamination. Le volume d’échantillon conseillé est de 8 à 10 mL. Il est conseillé d’ensemencer les flacons BACTEC au chevet du malade. On peut utiliser une seringue de 10cc ou 20cc avec un embout Luer-Lok pour prélever l'échantillon, ou encore un porte-aiguille Vacutainer et un système de prélèvement sanguin Vacutainer, un système de prélèvement sanguin

Vacutainer Safety-Lok ou autre système à ailettes. Si on utilise une aiguille et un système de tubes (prélèvement direct), il faut observer soigneusement la direction du flot sanguin au moment où le prélèvement de l'échantillon est démarré. Le vide dans le flacon en général dépasse 10 mL, de sorte que l'utilisateur doive surveiller le volume prélevé au moyen des graduations de 5 mL sur l'étiquette du flacon. Des petits volumes d'échantillons de l'ordre de 3 mL peuvent être utilisés, toutefois la mise en évidence ne sera pas aussi bonne qu'avec les plus grands volumes.

Le flacon BACTEC inoculé doit être envoyé le plus

rapidement possible au laboratoire.

METHODE

Retirer la capsule de protection du flacon BACTEC et vérifier l’absence de fissure, de contamination, de turbidité excessive du milieu, de bouchon protubérant ou en dépression. NE PAS UTILISER le flacon si on note un tel défaut. Avant d'ensemencer, tamponner le bouchon avec de l’alcool (l’utilisation d’iode N’EST

PAS recommandée). Injecter aseptiquement ou extraire directement 8 à 10 mL d'échantillon par flacon. Si des volumes d'échantillon de l'ordre de 3 à 7 mL sont utilisés, la mise en évidence ne sera pas aussi importante qu'avec les plus grands volumes (voir Limites de la méthode).

Les flacons aérobies ensemencés

doivent être placés dans l'appareil BACTEC de la série à fluorescence dès que possible pour être incubés et suivis. Si le placement dans l'appareil d'un flacon ensemencé a été retardé et qu'une croissance est visible, il ne doit pas être testé dans l'appareil BACTEC de la série à fluorescence, mais plutôt il doit

être repiqué, soumis à une coloration de Gram et traité comme un flacon présumé positif.

Les flacons placés dans l'appareil seront automatiquement testés toutes les 10 minutes pendant toute la durée du protocole de test. Les flacons positifs seront reconnus et identifiés comme tels par l'appareil BACTEC de la série à fluorescence (voir le manuel d'utilisation de l'appareil BACTEC de la série à fluorescence approprié). Le détecteur à l'intérieur du flacon n'apparaîtra pas visiblement différent dans les flacons positifs et les flacons négatifs, mais l'appareil BACTEC de la série à fluorescence sera lui capable de déterminer une différence dans la fluorescence.

Si à la fin de la période de test, un flacon négatif apparaît visuellement positif (par ex., sang couleur chocolat, bouchon protubérant, sang lysé et/ou très sombre dans un milieu BACTEC Plus Aerobic/F), il doit être repiqué, soumis à une coloration de Gram et traité comme un flacon présumé positif.

Les flacons positifs doivent être repiqués et soumis à une coloration de Gram. Dans la grande majorité des cas, les organismes seront visibles et un rapport préliminaire pourra être fait au médecin. Les repiquages sur milieux solides et un test préliminaire direct de sensibilité aux antibiotiques pourront être préparés directement à partir du liquide dans les flacons BACTEC.

Repiquage : Avant d’effectuer un repiquage, poser le flacon debout et placer un coton imbibé d’alcool sur le bouchon. Pour relâcher la pression dans le tube, utiliser un évent approprié (référence BD n° 249560) ou équivalent. L’aiguille doit être retirée après le relâchement de la pression et avant de faire un prélèvement pour repiquage. L’insertion et le retrait de l’aiguille doivent être faits avec un mouvement rectiligne, en évitant tout mouvement de torsion.

CONTROLE DE QUALITE

Effectuer les contrôles de qualité conformément aux réglementations locales, nationales et/ou internationales en vigueur, aux exigences des organismes d’homologation concernés et aux procédures de contrôle de qualité en vigueur dans l’établissement. Il est recommandé à l’utilisateur de consulter les directives

CLSI et la réglementation CLIA correspondantes pour plus d’informations sur les modalités de contrôle de qualité.

NE PAS UTILISER les flacons de culture au-delà de leur date de péremption.

NE PAS UTILISER de flacon de culture fêlé ou défectueux ; éliminer ces flacons conformément aux procédures en vigueur.

Des certificats de contrôle de qualité se trouvent dans chaque carton de milieux. Les certificats de contrôle de qualité dressent la liste des microorganismes de test, y compris les cultures ATCC spécifiées dans la norme CLSI M22, Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media. Le délai de détection en heures était ≤ 72 heures pour chacun des organismes figurant sur le certificat de contrôle de qualité pour ce milieu.


ATCC 13090


ATCC 19418


ATCC 6305


ATCC 19615


ATCC 27853


ATCC 66032


ATCC 25923


ATCC 25922


ATCC 8750

*Souche recommandée par le CLSI

Pour une information concernant le Contrôle Qualité pour l'appareil BACTEC de la série à fluorescence, se reporter au manuel d'utilisation de l'appareil

BACTEC de la série à fluorescence approprié.

RESULTATS

Un échantillon positif est identifié par l'appareil BACTEC de la série à fluorescence et signale la présence présumée de microorganismes viables dans le flacon.

LIMITES DE LA METHODE

Contamination

Veiller à ne pas contaminer l’échantillon au cours du prélèvement et de l’ensemencement dans le flacon BACTEC. Un échantillon contaminé donnera une lecture positive mais n’indiquera pas un échantillon à valeur clinique. Cette détermination doit être effectuée par l’utilisateur sur la base de facteurs comme le type de microorganisme récupéré, l’apparition du même microorganisme dans plusieurs cultures, les antécédents du malade, etc.

Isolement d’organismes sensibles au PSS à partir de sang

Compte tenu du fait que le sang peut neutraliser la toxicité du PSS envers les organismes sensibles au PSS, la présence de volumes maximaux de sang

(de 8 à 10 mL) peut aider à l’optimisation de la mise en évidence de ces organismes. Pour augmenter la croissance d’organismes sensibles au PSS quand un volume de sang inférieur à 8 mL est ensemencé, on peut ajouter du sang humain total.

Certains organismes exigeants, tels que les espèces d'Haemophilus, requièrent des facteurs de croissance, comme NAD ou le facteur V, qui sont fournis par l'échantillon de sang. Si le volume de l'échantillon de sang est 3,0 mL ou moins, un complément adéquat peut s'avérer nécessaire pour la mise en évidence de

4

ces organismes. Le BACTEC FOS Fastidious Organism Supplement (complément pour organisme exigeant) ou du sang entier humain peuvent être utilisés comme compléments nutritifs.

Organismes non-viables

Un frottis de Gram réalisé à partir d'un milieu de culture peut contenir des petits nombres d'organismes non viables provenant des composants du milieu, des réactifs de coloration, de l'huile d'immersion, des lames en verre, et des échantillons utilisés pour l'ensemencement. De plus, l'échantillon du patient peut contenir des organismes qui ne croîtront pas dans le milieu de culture ou dans les milieux de repiquage. De tels échantillons doivent être repiqués sur des milieux spéciaux comme approprié.

Activité antimicrobienne

La neutralisation de l’activité antimicrobienne par les résines varie selon le niveau de dosage et le moment du prélèvement de l’échantillon. L'utilisation d’additifs supplémentaires devra être considérée dans des situations appropriées; par exemple, l’addition de pénicillinase lorsqu’un traitement à base de β-lactame est utilisé.

Isolement de Streptococcus pneumoniae

Sur les milieux aérobies, S. pneumoniae sera en général positif à l'œil nu et selon l'instrument, mais dans certains cas aucun organisme ne sera visible par la coloration de Gram ou mis en évidence par les repiquages de routine. Si un flacon anaérobie a aussi été ensemencé, l'organisme peut en général être mis en

évidence par un repiquage aérobie du flacon anaérobie puisqu'il a été rapporté que cet organisme se développait bien dans des conditions anaérobies.

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Considérations générales

La mise en évidence optimale des organismes peut être obtenue en ajoutant les quantités de sang maximum. Les études cliniques publiées ont montré que that l'utilisation de plus petits volumes peut affecter négativement la mise en évidence et/ou les délais de détection des organismes.

agents antimicrobiens ou d’autres inhibiteurs qui peuvent ralentir ou empêcher la croissance des microorganismes. Des cultures faussement négatives peuvent

être observées en présence de certains microorganismes qui produisent du CO

2

12 Le sang peut contenir des

en quantité insuffisante pour être détecté par le système ou si une croissance considérable s’est produite avant l’introduction du flacon dans le système. Dans les études analytiques, ce dispositif a mis en evidence 17 sur 18 souches de

Leuconostoc spp. testées. Des faux positifs peuvent être obtenus quand le nombre de globules blancs sanguins est élevé. Dans toutes les expériences analytiques effectuées sur ce dispositif on a utilisé par défaut le protocole de 5 jours ; on n'a pas évalué de durées de protocole >5 jours.

En raison de la nature du matériel biologique présent dans les milieux de culture et de la variabilité inhérente aux microorganismes, l’utilisateur doit savoir qu’une variation des résultats est possible lors de la mise en évidence de certains microorganismes.

VALEURS ATTENDUES ET CARACTERISTIQUES SPECIFIQUES DE PERFORMANCES

La performance du milieu BD BACTEC Plus Aerobic/F en flacon de verre a été établie par un certain nombre d'études cliniques externes.

1-3,8,9 Des études de laboratoire sur échantillons ensemencés effectuées par BD ont montré que la performance du milieu BD BACTEC Plus Aerobic/F en flacon plastique était

équivalente à celle du milieu BD BACTEC Plus Aerobic/F en flacon de verre.

testées dans les expériences analytiques effectuées sur ce dispositif.

10 Les levures Candida albicans, C. glabrata, et Cryptococcus neoformans ont été

CONDITIONNEMENT

N° ref.

442023

Description

BD BACTEC Plus Aerobic/F Medium

REFERENCES : voir la rubrique "References" du texte anglais

Service et assistance technique de BD Diagnostics : contacter votre représentant local de BD.

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Casein-Soja-Pepton-Bouillon in Plastikfläschchen

Deutsch

VERWENDUNGSZWECK

Das

BD BACTEC Plus Aerobic/F-Medium wird in einem qualitativen Verfahren zur Kultivierung aerober Mikroorganismen sowie zur Isolierung von

Mikroorganismen (Bakterien und Hefepilzen) aus Blut eingesetzt. Dieses Medium wird vornehmlich zusammen mit den

BD BACTEC-Geräten der Fluoreszenz-

Serie verwendet.

ZUSAMMENFASSUNG UND ERKLÄRUNG

Ein oder mehrere Fläschchen, die zur Inkubation und regelmäßigen Messung in das BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie gestellt werden, werden mit der zu testenden Probe inokuliert. Jedes Fläschchen ist mit einem chemischen Sensor ausgestattet, mit dem gemessen werden kann, wenn der CO aktuellen CO

2

2

-Gehalt ist. Ein positiver Befund zeigt die präsumtive Anwesenheit von lebensfähigen Mikroorganismen im Fläschchen an. Der Nachweis ist auf die in einer bestimmten Medienart zum Wachstum fähigen Mikroorganismen beschränkt.

-Gehalt durch das

Wachstum von Mikroorganismen ansteigt. Das Gerät überprüft alle zehn Minuten, ob der Sensor einen Fluoreszenzanstieg anzeigt, der proportional zum

Kunstharze wurden zur Behandlung von Blutproben vor und nach ihrer Inokulation in Kulturmedien in der Literatur beschrieben. Die Kunstharze wurden den

BACTEC-Kulturmedien zugesetzt, um die Isolierung von Organismen zu verbessern, ohne dass dabei besondere Aufbereitungsschritte nötig werden.

1-3

VERFAHRENSGRUNDLAGEN

Falls die in das BACTEC-Fläschchen inokulierte Probe Mikroorganismen enthält, wird beim Abbau der in dem Fläschchen enthaltenen Substrate durch die

Organismen CO

2

erzeugt. Das BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie überwacht den durch den höheren CO

2

Sensors im Fläschchen. Durch die Analyse der CO

2

-Anstiegsrate und der Zunahme des CO

2

-Gehalt verursachten Fluoreszenzanstieg des

-Gehalts kann das BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie feststellen, ob die Probe lebensfähige Mikroorganismen enthält und der Befund für das Fläschchen somit positiv ist.

REAGENZIEN

Die BACTEC-Kulturfläschchen enthalten vor der Aufbereitung die folgenden reaktiven Bestandteile:

Liste der Bestandteile

Demineralisiertes Wasser


30 mL

Gew./Vol.

Casein-Soja-Pepton-Bouillon 3,0%

Hefeextrakt 0,25%

Aminosäuren 0,05%

Zucker 0,2%

Natriumpolyanetholsulfonat (NPS) 0,05%

Vitamine 0,025%

Antioxidantien/Reduktionsmittel 0,005%

Nicht ionisches Adsorptionsharz 13,4%

Kationenaustauscherharz 0,9%

Alle BACTEC-Medien werden mit CO

2

-Zusatz abgefüllt.

Warnungen und Vorsichtsmaßnahmen:

Die gebrauchsfertigen Kulturfläschchen sind zur In-vitro-Diagnostik vorgesehen.

Dieses Produkt enthält Naturkautschuk (getrocknet).

Klinische Proben können pathogene Mikroorganismen, wie z. B. Hepatitis-Viren und HIV, enthalten. Beim Umgang mit allen mit Blut kontaminierten

Artikeln sind die „Allgemeinen Vorsichtsmaßnahmen“ 4-7 sowie die einschlägigen Richtlinien der jeweiligen Einrichtung zu beachten.

5

Vor Gebrauch muss jedes Fläschchen auf Anzeichen von Kontamination wie Trübung, Wölbung oder Einbeulung des Septums oder auf undichte Stellen untersucht werden. Fläschchen, die Anzeichen von Kontamination aufweisen, NICHT VERWENDEN. Kontaminierte Fläschchen können Überdruck erzeugen.

Wenn kontaminierte Fläschchen zur direkten Blutentnahme verwendet werden, können Gas oder kontaminierte Kulturmedien in die Vene des Patienten zurückgeführt werden. Die Kontamination eines Fläschchens ist nicht in allen Fällen sichtbar. Bei direkter Blutentnahme sollte der Entnahmevorgang genau

überwacht werden, um einen Rückfluss von Substanzen in die Vene des Patienten zu vermeiden.

Die Fläschchen müssen vor Gebrauch auf Anzeichen von Beschädigung oder Verfall des Inhalts untersucht werden. Fläschchen, die Sprünge, undichte Stellen,

Trübung, Kontamination oder Verfärbung (Dunkelwerden) aufweisen, dürfen nicht verwendet werden. In seltenen Fällen kann der Fläschchenhals einen Sprung haben und beim Entfernen des Abrissdeckels oder während der Handhabung des Fläschchens brechen. Auch kann es in seltenen Fällen vorkommen, dass ein

Fläschchen nicht richtig verschlossen ist. In beiden Fällen ist es möglich, dass der Fläschcheninhalt ausläuft oder verschüttet wird, besonders wenn das

Fläschchen auf den Kopf gestellt wird. Falls das betreffende Fläschchen bereits inokuliert war, muss das ausgelaufene oder verschüttete Medium mit äußerster

Vorsicht behandelt werden, da es pathogene Organismen oder Erreger enthalten kann. Vor ihrer Entsorgung müssen alle inokulierten Fläschchen im Autoklaven sterilisiert werden.

Positive Kulturfläschchen zur Subkultivierung oder Färbung usw.: Vor der Probenentnahme muss Gas abgelassen werden, das sich häufig als Folge mikrobiellen

Stoffwechsels ansammelt. Die Probenentnahme sollte möglichst in einer biologischen Sicherheitswerkbank durchgeführt werden, und Schutzkleidung, einschließlich Handschuhe und Gesichtsmaske, sollte getragen werden. Nähere Einzelheiten zur Subkultivierung sind dem Abschnitt „Verfahren“ zu entnehmen.

Um potentiellen Sickerverlust bei der Inokulation von Proben in die Kulturfläschchen so weit wie möglich auszuschließen, sollten Spritzen mit fest eingesetzten

Kanülen oder mit Luer-Lok-Kegeln verwendet werden.

Aufbewahrung

Die BACTEC-Fläschchen werden gebrauchsfertig geliefert und erfordern keine Rekonstituierung oder Verdünnung. Kühl und trocken (2 – 25 °C) lagern und vor

direkter Lichteinstrahlung schützen.

PROBENENTNAHME

Die Proben müssen unter Anwendung steriler Verfahren entnommen werden, um das Risiko von Kontamination zu verringern. Die empfohlene Probenmenge ist

8 – 10 mL. Es wird empfohlen, die Probe am Krankenbett in die BACTEC-Fläschchen zu inokulieren. Zur Blutentnahme können eine 10-cc- oder 20-cc-Spritze mit Luer-Lok-Kegel oder ein Vacutainer-Kanülenhalter und ein Vacutainer-Blutentnahme-Set, ein Vacutainer Safety-Lok-Blutentnahme-Set oder ein anderes

Butterfly-Schlauchset verwendet werden. Beobachten Sie bei Verwendung einer Kanüle und eines Schlauchsets (direkte Blutentnahme) genau die Richtung des

Blutflusses, wenn Sie mit der Probenentnahme beginnen. Das Luftvolumen im Fläschchen beträgt i. d. R. über 10 mL. Daher sollte der Anwender die entnommene Probenmenge anhand der 5-mL-Einteilung auf dem Etikett des Fläschchens überprüfen. Ein Probenvolumen von nur 3 mL kann zwar verwendet werden, eignet sich aber nicht so gut zur Isolierung von Mikroorganismen wie größere Volumina.

Das inokulierte BACTEC-Fläschchen sollte so schnell wie

möglich zum Labor geschickt werden.

VERFAHREN

Den Abrissdeckel auf dem BACTEC-Fläschchen entfernen und das Fläschchen auf Sprünge, Kontamination, starke Trübung im Medium und Wölbung oder

Einbeulung der Septa überprüfen. Defekte Fläschchen NICHT VERWENDEN. Vor dem Inokulieren das Septum mit Alkohol abtupfen (die Verwendung von Jod wird NICHT empfohlen). Pro Fläschchen 8 – 10 mL der Probe aseptisch injizieren oder direkt entnehmen. Probenvolumina zwischen 3 und 7 mL eignen sich nicht so gut zur Isolierung von Mikroorganismen wie größere Volumina (siehe „Verfahrensbeschränkungen“).

Inokulierte aerobe Fläschchen sollten so

schnell wie möglich zur Inkubation und Überwachung in die BACTEC-Geräte der Fluoreszenz-Serie gestellt werden. Wenn ein inokuliertes Fläschchen nicht rechtzeitig in das Gerät gestellt wurde und Wachstum erkennbar ist, sollte es nicht im BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie getestet werden. Stattdessen sollte eine Subkultur angelegt, gramgefärbt und die Probe als präsumtiv positives Fläschchen behandelt werden.

Sobald Fläschchen in das Gerät gestellt werden, werden sie während der Testprotokollaufnahme-Periode automatisch alle 10 Minuten getestet. Positive

Fläschchen werden vom BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie ermittelt und als positiv identifiziert (siehe Benutzerhandbuch des entsprechenden

BACTEC-Geräts der Fluoreszenz-Serie). Bei positiven und negativen Fläschchen ist am Sensor im Fläschchen kein sichtbarer Unterschied zu erkennen. Das

BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie kann jedoch einen Unterschied bei der Fluoreszenz feststellen.

Wenn ein negatives Fläschchen nach der Testperiode bei Sichtprüfung positiv erscheint (d. h. das Blut im BACTEC Plus Aerobic/F medium schokoladenartig, lysiert und/oder stark verdunkelt bzw. das Septum gewölbt aussieht), sollte eine Subkultur angelegt, gramgefärbt und die Probe als präsumtiv positives

Fläschchen behandelt werden.

Für positive Fläschchen sollte eine Subkultur angelegt und eine Gramfärbung durchgeführt werden. In den meisten Fällen sind Organismen erkennbar, so dass dem Arzt ein vorläufiger Befund vorgelegt werden kann. Subkulturen der entsprechenden Festmedien und ein direkter antimikrobieller Empfindlichkeits-Vorabtest können mit der Flüssigkeit in den BACTEC-Fläschchen zubereitet werden.

Subkultivierung: Vor der Subkultivierung das Fläschchen aufrecht stellen und das Septum mit einem Alkoholtupfer abdecken. Zur Entlüftung des Fläschchens wird der Gebrauch einer geeigneten Entlüftungseinheit (BD-Bestell-Nr. 249560) oder einer vergleichbaren Vorrichtung empfohlen. Nach Entweichen des

Überdrucks und vor der Probenentnahme für Subkulturen sollte die Entlüftungskanüle entfernt werden. Das Einstechen und Zurückziehen der Kanüle sollte mit einer geradlinigen Bewegung ohne Drehungen ausgeführt werden.

QUALITÄTSKONTROLLE

Die Qualitätskontrollen müssen unter Einhaltung der örtlich, landesweit und/oder bundesweit geltenden Bestimmungen oder Auflagen der

Akkreditierungsorganisationen sowie der Standard-Qualitätskontrollverfahren Ihres Labors erfolgen. Anwendern wird geraten, die relevanten CLSI-Richtlinien und CLIA-Vorschriften über geeignete Maßnahmen zur Qualitätskontrolle einzusehen.

Die Kulturfläschchen dürfen NICHT nach dem Verfallsdatum VERWENDET werden.

Fläschchen, die Sprünge oder Beschädigungen aufweisen, dürfen NICHT VERWENDET werden; Fläschchen ordnungsgemäß entsorgen.

Qualitätskontrollzertifikate sind jedem Karton mit Medien beigefügt. In den Qualitätskontrollzertifikaten sind Testorganismen, einschließlich im CLSI-Standard

M22, Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media, spezifizierte ATCC-Kulturen, aufgeführt. Der Nachweiszeitraum in Stunden für jeden im Qualitätskontrollzertifikat für dieses Medium aufgeführten Organismus lag bei ≤72 Stunden.


ATCC 13090


ATCC 19418


ATCC 6305


ATCC 19615


ATCC 27853


ATCC 66032


ATCC 25923


ATCC 25922


ATCC 8750

*Vom CLSI empfohlener Stamm

Informationen bezüglich der Qualitätskontrolle für Ihr BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie finden Sie im Benutzerhandbuch des entsprechenden

BACTEC-Geräts der Fluoreszenz-Serie.

ERGEBNISSE

Positive Proben werden vom BACTEC-Gerät der Fluoreszenz-Serie ermittelt. Ein positiver Befund zeigt die präsumtive Anwesenheit von lebensfähigen

Mikroorganismen im Fläschchen an.

VERFAHRENSBESCHRÄNKUNGEN

Kontamination

Eine Kontamination der Probe während der Probenentnahme oder der Inokulation in das BACTEC-Fläschchen muss vermieden werden. Eine kontaminierte

Probe ergibt einen positiven Wert ohne klinische Relevanz. Eine entsprechende Beurteilung muss vom Anwender auf der Basis von Faktoren, wie z. B. der Art des isolierten Organismus, dem Vorkommen desselben Organismus in mehreren Kulturen, der Anamnese des Patienten usw., vorgenommen werden.

6

Isolierung NPS-empfindlicher Organismen aus Blutproben

Weil Blut die Toxizität von NPS gegenüber NPS-empfindlichen Organismen neutralisieren kann, können maximale Blutmengen (8 – 10 mL) dazu beitragen, die

Isolierung dieser Organismen zu optimieren. Wenn weniger als 8 mL Blut inokuliert worden sind, kann zur Wachstumsverbesserung NPS-empfindlicher

Organismen Human-Vollblut zugegeben werden.

Einige anspruchsvolle Organismen (darunter bestimmte Haemophilus-Spezies) benötigen Wachstumsfaktoren wie NAD oder den Faktor V, die von der Blutprobe geliefert werden. Bei einer Blutprobenmenge von 3,0 mL oder weniger muss die Probe zur Isolierung dieser Organismen ggf. entsprechend angereichert werden. Zur Anreicherung der Wachstumsmedien eignet sich BACTEC FOS Fastidious Organism Supplement (Anreicherung für anspruchsvolle Organismen) oder humanes Vollblut.

Nicht lebensfähige Organismen

Ein gramgefärbter Ausstrich von einem Kulturmedium kann eine geringe Anzahl nicht lebensfähiger Organismen aus Medienbestandteilen, Färbereagenzien,

Immersionsöl, Glasobjektträgern und den zur Inokulation verwendeten Proben enthalten. Darüber hinaus kann die Patientenprobe Organismen enthalten, die in dem Kulturmedium bzw. in dem für die Subkultivierung verwendeten Medium nicht wachstumsfähig sind. Subkulturen aus solchen Proben sollten unter

Verwendung geeigneter Spezialmedien angelegt werden.

Antimikrobielle Aktivität

Der Grad der Neutralisierung antimikrobieller Aktivität durch Kunstharze variiert und hängt von der Dosierung und dem Zeitpunkt der Probenentnahme ab. Die

Verwendung ergänzender Additive sollte in entsprechenden Situationen erwogen werden; so kann z.B. in Fällen, in denen β-lactam-Therapie angewandt wird,

Penizillinase hinzugefügt werden.

Isolierung von Streptococcus pneumoniae

In aeroben Medien ergeben die Sichtprobe und die Instrumentenanalyse für S. pneumoniae i. d. R. einen positiven Befund. In manchen Fällen kann jedoch kein

Organismus durch Gramfärbung erkannt bzw. durch übliche Subkultivierung isoliert werden. Wenn auch ein anaerobes Fläschchen inokuliert wurde, kann der

Organismus meist durch Anlegen einer aeroben Subkultur aus dem anaeroben Fläschchen isoliert werden, da dieser Organismus Berichten zufolge in anaeroben Umgebungen ein gutes Wachstum zeigt.

11

Allgemeine Erwägungen

Eine optimale Gewinnung von Organismen kann erzielt werden, indem die maximale Menge Blut beigefügt wird. Veröffentlichte klinische Studien haben gezeigt, dass eine geringere Blutmenge die Isolierung und/oder die Nachweiszeiten von Organismen negativ beeinflussen kann.

oder andere Inhibitoren enthalten, die das Wachstum von Mikroorganismen verlangsamen oder verhindern können. Wenn bestimmte Organismen vorhanden sind, die nicht genug CO

2

12 Blut kann antimikrobielle Substanzen

produzieren, um vom Gerät festgestellt zu werden oder wenn das Fläschchen sichtbares Wachstum aufweist, bevor es in das Gerät gestellt wird, können sich falsch-negative Werte ergeben. In analytischen Studien, diese Testvorrichtung isolierte 17 von 18 getesteten Leuconostoc spp. Falschpositive Resultate können bei einer hohen Leukozytenzahl zu Stande kommen. Fuer alle analytischen Tests mit dieser Testvorrichtung wurde das Standard

5-Tage-Protokoll angewendet. Protokolldauern von mehr als 5 Tagen wurden nicht untersucht.

Der Anwender sollte sich bewusst sein, dass unterschiedliche Ergebnisse beim Nachweis bestimmter Keime auftreten können. Dies ist auf die Natur der in

Kulturmedien enthaltenen biologischen Stoffe und auf die natürliche Variabilität von Mikroorganismen zurückzuführen.

ZU ERWARTENDE WERTE UND SPEZIFISCHE LEISTUNGSMERKMALE

Die Leistungsfähigkeit des BD BACTEC Plus Aerobic/F-Mediums in Glasfläschchen wurde in einer Reihe externer klinischer Studien ermittelt.

1-3,8,9 Laborstudien von BD mit beimpften Proben haben ergeben, dass das BD BACTEC Plus Aerobic/F-Medium in Plastikfläschchen ist genauso leistungsstark wie das

BD BACTEC Plus Aerobic/F-Medium in Glasfläschchen.

analytischen Tests dieser Vorrichtung analysiert.

10 Die Hefen Candida albicans, C. glabrata, und Cryptococcus neoformans wurden im Rahmen der

LIEFERBARE PRODUKTE

Best.- Nr. Beschreibung

442023 BD BACTEC Plus Aerobic/F Medium

LITERATUR: S. "References" im englischen Text.

BD Diagnostics Technischer Kundendienst: setzen Sie sich mit Ihrer zuständigen BD-Vertretung.

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Brodo digerito di soia-caseina in flacone di plastica

Italiano

USO PREVISTO

Il terreno BD BACTEC Plus Aerobic/F è usato in una procedura qualitativa per la coltura in aerobiosi e l'isolamento di microrganismi (batteri e lieviti ) dal sangue. Questo terreno è principalmente usato con gli strumenti BD BACTEC della serie fluorescente.

SOMMARIO E SPIEGAZIONE

Il campione da testare è inoculato in uno o più flaconi, che vengono inseriti nello strumento BACTEC della serie fluorescente per l’incubazione e la lettura periodica. Ogni flacone contiene un sensore chimico in grado di rilevare aumenti nella CO

2

prodotta dalla crescita dei microrganismi. Ogni dieci minuti, lo strumento monitora il sensore al fine di rilevare ogni aumento di fluorescenza, che è proporzionale alla quantità di CO

2

presente. Una lettura positiva indica la presenza presuntiva di microrganismi vitali nel flacone. La rilevazione si limita ai microrganismi che crescono in un particolare tipo di terreno.

L’utilizzo di resine è stato descritto per il trattamento di campioni di sangue prima e dopo l'inoculo nei terreni di coltura. Le resine sono state incorporate nei terreni di coltura BACTEC per migliorare l'isolamento di microrganismi senza necessità di trattamenti speciali.

1-3

PRINCIPI DELLA PROCEDURA

Se nel campione inoculato nel flacone BACTEC sono presenti microrganismi, questi metabolizzano i substrati presenti nel flacone, producendo così CO

2

. Gli aumenti nella fluorescenza del sensore del flacone, causati dalla maggiore quantità di CO fluorescente. L’analisi delle velocità e dell’entità dell’aumento di CO positivo, ossia che il campione contiene microrganismi vitali.

2

2

, vengono monitorati dallo strumento BACTEC della serie

consente allo strumento BACTEC della serie fluorescente di determinare se il flacone è

REAGENTI

Prima del trattamento, i flaconi di coltura BACTEC contengono i reagenti seguenti:

Elenco degli ingredienti

Acqua purificata


30 mL

peso/vol

Brodo digerito di soia-caseina

Estratto di lievito

3,0%

0,25%

Aminoacidi 0,05%

Zucchero 0,2%

Sodio polianetolsulfonato (SPS) 0,05%

Vitamine 0,025%

Antiossidanti/riducenti 0,005%

Resina adsorbente anionica

Resina a scambio cationico

13,4%

0,9%

Tutti i terreni di coltura BACTEC sono dispensati con CO

2

addizionata.

7

Avvertenze e precauzioni:

I flaconi di coltura preparati sono destinati a uso diagnostico in vitro.

Questo prodotto contiene gomma naturale secca.

I campioni clinici possono contenere microrganismi patogeni, inclusi i virus dell’epatite e dell’immunodeficienza umana. Manipolare tutti i materiali e gli articoli contaminati con sangue in conformità alle linee guida dell’istituto e alle “Precauzioni standard”.

4-7

Prima dell’uso, esaminare ogni flacone per escludere evidenze di contaminazione quali torpidità, rigonfiamento o schiacciamento del setto oppure perdite. NON

USARE un flacone se presenta evidenza di contaminazione. Un flacone contaminato può avere pressione positiva. In caso di utilizzo di un flacone contaminato per prelievo diretto, il gas o il terreno di coltura contaminato potrebbe rifluire nella vena del paziente. La contaminazione del flacone può non essere immediatamente visibile. In caso di adozione della procedura di prelievo diretto, controllare il processo con estrema attenzione allo scopo di evirare il reflusso dei materiali nel paziente.

Prima dell’uso, esaminare i flaconi per escludere evidenza di danni o deterioramento. Non usare flaconi che presentano incrinature o perdite, torbidità, contaminazione, alterazione di colore (assunzione di una colorazione più scura). In rare occasioni, il collo del flacone potrebbe essere incrinato e rompersi durante la rimozione del tappo o la manipolazione. Altrettanto raramente, è inoltre possibile che un flacone non sia stato sigillato in maniera sufficiente. In entrambe le eventualità, possono esservi perdite o fuoriuscite di contenuto, soprattutto in caso di capovolgimento del flacone. Se il flacone è stato inoculato, trattare la perdita o la fuoriuscita con cautela data la potenziale presenza di agenti/microrganismi patogeni. Prima di gettare i flaconi inoculati, sterilizzarli tutti mediante autoclavaggio.

Flaconi positivi usati per subcoltura o colorazione, ecc.: prima del campionamento, è necessario lasciare fuoriuscire il gas che spesso di accumula a causa del metabolismo microbico. Se possibile, eseguire il campionamento in camera biologica di sicurezza, indossando indumenti protettivi appropriati, inclusi maschere e guanti. Per ulteriori informazioni sulla procedura di subcoltura, vedere la sezione Procedura.

Per ridurre al minimo potenziali fuoriuscite durante l’inoculo dei campioni nei flaconi di coltura, usare siringhe con aghi fissi o punte con raccordo Luer-Lok.

Istruzioni per la Conservazione

Al ricevimento, i flaconi BACTEC sono pronti per l’uso e non richiedono alcuna ricostituzione o diluizione. Conservare in luogo fresco e asciutto (2° – 25 °C), al

riparo da luce diretta.

RACCOLTA DEI CAMPIONI

Prelevare il campione adottando tecniche sterili al fine di ridurre le possibilità di contaminazione. Il volume di campione raccomandato è 8 – 10 mL. Si raccomanda di inoculare i campioni nei flaconi BACTEC direttamente al letto del paziente. Per prelevare il campione, è possibile usare una siringa da 10 cc o

20 cc con puntale Luer-Lok oppure un porta-aghi Vacutainer e un set per prelievo ematico Vacutainer, un set per prelievo ematico Vacutainer Safety-Lok o altro set di tipo “butterfly” con cannula. In caso di utilizzo di un set ago-cannula (prelievo diretto), osservare attentamente la direzione del flusso ematico allorché si inizia la raccolta del campione. Il vuoto nella fiala supera di norma 10 mL; l’utente deve pertanto controllare il volume raccolto osservando le tacche di 5 mL sull’etichetta del flacone. È possibile usare campioni di volumi pari a soli 3 mL; il recupero non sarà tuttavia così consistente come nel caso di volumi più elevati.

I flaconi BACTEC inoculati devono essere inviati al laboratorio non appena possibile.

PROCEDURA

Togliere il tappo dal flacone BACTEC e verificare che il flacone non presenti incrinature, contaminazione, eccessiva torbidità del terreno e intaccature o rigonfiamento del setto. NON USARE il flacone in presenza di un eventuale difetto. Prima di inoculare, disinfettare il setto con alcol (NON si raccomanda l'uso di iodio). Iniettare asetticamente o prelevare direttamente 8 – 10 mL di campione per flacone. In caso di impiego di campioni aventi volumi di 3 – 7 mL, il recupero non sarà così consistente come nel caso di volumi più elevati (vedere Limitazioni della procedura).

Non appena possibile, collocare i flaconi aerobi inoculati

nello strumento BACTEC della serie fluorescente per l’incubazione e il monitoraggio. Se un flacone inoculato è collocato nello strumento in ritardo e presenta crescita già visibile, non deve essere testato nello strumento BACTEC della serie fluorescente, ma posto in subcultura, sottoposto a colorazione di Gram e trattato come un flacone presuntivamente positivo.

I flaconi collocati nello strumento vengono automaticamente testati ogni dieci minuti per la durata del periodo del protocollo di test. I flaconi positivi vengono identificati dallo strumento BACTEC della serie fluorescente e determinati come tali (vedere il manuale d’uso dello strumento BACTEC della serie fluorescente appropriato). Il sensore all’interno del flacone non appare visibilmente diverso nei flaconi positivi e negativi; tuttavia lo strumento BACTEC della serie fluorescente è in grado di determinare ogni differenza di fluorescenza.

Se al termine del periodo di test, un flacone negativo appare visivamente positivo (vale a dire sangue dall’aspetto di cioccolato, rigonfiamento del setto, sangue lisato e/o molto scuro nel terreno BACTEC Plus Aerobic/F), allestire una subcultura e sottoporre il flacone a colorazione di Gram, trattandolo come presuntivamente positivo.

I flaconi positivi devono essere posti in subcultura e sottoposti a colorazione di Gram. Nella stragrande maggioranza dei casi, vengono osservati microrganismi ed è possibile stilare un referto preliminare per il medico. La subcoltura su terreno di coltura solido e un test preliminare diretto di sensibilità agli antibiotici possono essere preparati utilizzando liquido prelevato dai flaconi BACTEC.

Subcoltura: prima della subcoltura, porre il flacone in posizione verticale e collocare un tampone imbevuto d’alcol sul setto. Per ridurre la pressione all’interno del flacone, usare un dispositivo di sfiato appropriato (n. di cat. BD 249560) o strumento equivalente. Una volta scaricata la pressione e prima della raccolta del campione per la subcultura, rimuovere l’ago. Inserire e retrarre l’ago con un movimento lineare, evitando torsioni.

CONTROLLO DI QUALITÀ

Le procedure prescritte per il controllo di qualità devono essere effettuate in conformità alle norme vigenti o ai requisiti di accreditazione e alla prassi di controllo di qualità del laboratorio specifico. Consultare le linee guida CLSI e le norme CLIA in materia, per una corretta esecuzione delle procedure relative al controllo di qualità.

NON USARE i flaconi di coltura oltre la rispettiva data di scadenza.

NON USARE flaconi di coltura che presentano incrinature o difetti; eliminare il flacone in modo appropriato.

Certificati di controllo qualità sono forniti con ciascuna confezione di terreni. I certificati di controllo qualità riportano i microrganismi di controllo, incluse le colture

ATCC specificate nella norma CLSI M22 Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media. L'intervallo di tempo per la rilevazione in ore

è stato ≤72 ore per ciascuno dei microrganismi elencati nel certificato di controllo di qualità per questo terreno:


ATCC 13090


ATCC 19418


ATCC 6305


ATCC 19615


ATCC 27853


ATCC 66032


ATCC 25923


ATCC 25922


ATCC 8750

*Ceppo raccomandato CLSI

Per informazioni sul controllo di qualità per lo strumento BACTEC della serie fluorescente, consultare il manuale d’uso dello strumento BACTEC della serie fluorescente appropriato.

RISULTATI

Un campione positivo, determinato come tale dallo strumento BACTEC della serie fluorescente, indica la presenza presuntiva di microrganismi vitali nel flacone.

8

LIMITI DELLA PROCEDURA

Contaminazione

Prestare attenzione a non contaminare il campione durante il prelievo e l’inoculo nel flacone BACTEC. Un campione contaminato fornisce una lettura positiva, ma non indica un campione clinico rilevante. Tale determinazione deve essere effettuata dall’utente sulla base di fattori quali il tipo di microrganismo recuperato, la presenza dello stesso microrganismo in più colture, l’anamnesi del paziente, ecc.

Isolamento di organismi sensibili all'SPS da campioni ematici

Poiché il sangue può neutralizzare la tossicità dell'SPS nei riguardi degli organismi sensibili all'SPS, la presenza di volumi di sangue massimi (8 – 10 mL) può aiutare ad ottimizzare il recupero di tali organismi. Per favorire la crescita di organismi sensibili all'SPS, quando si inoculano meno di 8 mL, si può aggiungere ulteriore sangue umano intero.

Alcuni microrganismi esigenti, come determinate specie di Haemophilus, richiedono fattori di crescita quali NAD o il fattore V, forniti dal campione ematico. Se il volume del campione è pari o inferiore a 3,0 mL, è possibile che per il recupero di questi microrganismi sia necessario un supplemento appropriato. Come supplementi nutritivi, è possibile usare BACTEC FOS Fastidious Organism Supplement o sangue umano intero.

Microrganismi non vitali

Uno striscio sottoposto a colorazione di Gram prelevato da un terreno di coltura, può contenere piccole quantità di microrganismi non vitali derivanti dai componenti del terreno, reagenti di colorazione, olio di immersione, vetrini e gli stessi campioni usati per l’inoculo. Il campione clinico può inoltre contenere microrganismi che non crescono nel terreno di coltura o nel terreno usato per la subcultura. Porre tali campioni in subcultura in terreno speciale, come appropriato.

Attività antimicrobica

La neutralizzazione dell’attività antimicrobica da parte delle resine varia a seconda del dosaggio e l’orario della raccolta del campione. Se opportuno, considerare l’uso di additivi supplementari, come ad esempio l’aggiunta di penicillinase quando si usa la terapia β-lattamica.

Isolamento di Streptococcus pneumoniae

Nei terreni aerobi, S. pneumoniae è di norma positivo sia visivamente che secondo la strumento, ma in alcuni casi né la colorazione Gram né la subcultura di routine portano all’osservazione o al recupero di alcun microrganismo. Se è stato inoculato anche un flacone anaerobio, il microrganismo può generalmente essere recuperato eseguendo una subcultura aerobia del flacone anaerobio, in quanto si è riscontrato che tale microrganismo cresce bene in condizioni di anaerobiosi.

11

Considerazioni di carattere generale

Il recupero ottimale di microrganismi si ottiene aggiungendo le quantità massime di sangue. Studi clinici pubblicati hanno dimostrato che l’uso di volumi ridotti può influenzare negativamente il recupero e/o i tempi di rilevazione dei microrganismi.

12 Il sangue può contenere antimicrobici o altri inibitori che possono rallentare o prevenire la crescita dei microrganismi. Si possono ottenere risultati falsi negativi in presenza di certi organismi che non producono CO

2

in quantità sufficiente alla rivelazione da parte del sistema o quando si sia prodotta una crescita notevole prima dell’introduzione del flacone nel sistema. In studi analitici, questo dispositivo ha consentito il recupero di 17 su 18 ceppi di Leuconostoc spp. testati. In caso di conta leucocitaria elevata, si può avere falsa positività. Per tutti i test analitici condotti con questo dispositivo è stato utilizzato il protocollo predefinito di 5 giorni, mentre non sono state valutate durate di protocollo >5 giorni.

Data la natura dei materiali biologici nei prodotti dei terreni e della variabilità intrinseca dei microrganismi, l’utente deve essere consapevole della possibilità di risultati variabili nel recupero di alcuni microrganismi.

VALORI ATTESI E CARATTERISTICHE PRESTAZIONALI SPECIFICHE

Le prestazioni del terreno BD BACTEC Plus Aerobic/F in flaconi di vetro sono state stabilite da svariati studi clinici esterni.

1-3,8,9 Studi di semina condotti in laboratorio da BD hanno dimostrato prestazioni equivalenti per il terreno BD BACTEC Plus Aerobic/F in flaconi di plastica e il terreno BD BACTEC Plus

Aerobic/F in flaconi di vetro.

10 I lieviti Candida albicans, C. glabrata e Cryptococcus neoformans sono stati inclusi nei test analitici di questo dispositivo.

DISPONIBILITÀ

N. di cat.

442023

Descrizione


BIBLIOGRAFIA: Vedere "References" nel testo inglese.

Assistenza e supporto tecnico BD Diagnostics: rivolgersi al rappresentante locale BD.

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Caldo digerido de soja-caseína en frasco de plástico

Español

USO PREVISTO

El medio BD BACTEC Plus Aerobic/F se utiliza en un procedimiento cualitativo para el cultivo aerobio y la recuperación de microorganismos (bacterias y levaduras) en la sangre. Este medio se utiliza principalmente con los instrumentos BD BACTEC de la serie fluorescente.

RESUMEN Y EXPLICACIÓN

La muestra que se va a analizar se inocula en uno o más frascos que se introducen en el instrumento BACTEC de la serie fluorescente para su incubación y lectura periódica. Cada frasco contiene un sensor químico que puede detectar incrementos de CO

2

producidos por el crecimiento de microorganismos. El instrumento controla el sensor cada 10 minutos para detectar un aumento de la fluorescencia que es proporcional a la cantidad de CO presente. Una lectura positiva indica la presencia de presuntos microorganismos viables dentro del frasco. La detección se limita a los microorganismos capaces de crecer en un tipo de medio determinado.

Se ha comprobado que las resinas sirven para el tratamiento de las muestras de sangre tanto antes como después de su inoculación en el medio de cultivo. Las resinas se han incorporado a los medios de cultivo BACTEC para mejorar la recuperación de microorganismos sin necesidad de un procesamiento especial.

1-3

PRINCIPIOS DEL PROCEDIMIENTO

Si existen microorganismos en la muestra inoculada en el frasco BACTEC, se producirá CO fluorescente. El análisis de la tasa y la cantidad del aumento de CO es decir, que la muestra contiene microorganismos viables.

2

cuando los microorganismos metabolizan los sustratos presentes en el vial. Los aumentos de fluorescencia del sensor del vial ocasionados por la mayor cantidad de CO

2

se monitorizan por el instrumento BACTEC de la serie

permite al instrumento BACTEC de la serie fluorescente determinar si el vial es positivo,

9

REACTIVOS

Antes del procesamiento, los frascos de cultivo BACTEC contienen los siguientes ingredientes reactivos:

Lista de ingredientes

Agua tratada


30 mL

p/v

Caldo digerido de soja-caseína

Extracto de levadura

3,0%

0,25%

Aminoácidos 0,05%

Azúcar 0,2%

Polianetolsulfonato de sodio (SPS) 0,05%

Vitaminas 0,025%

Antioxidantes/reductores 0,005%

Resina adsorbente no iónica

Resina de intercambio catiónico

13,4%

0,9%

Todos los medios BACTEC se suministran con CO

2

añadido.

Advertencias y precauciones:

Los frascos de cultivo preparados son para diagnóstico in vitro.

Este producto contiene goma natural seca.

En las muestras clínicas puede haber microorganismos patógenos, como los virus de la hepatitis y el virus de la inmunodeficiencia humana. Para la manipulación de todos los elementos contaminados con sangre, deben seguirse las “Precauciones estándar” 4-7 y las directivas del centro.

Se debe examinar cada frasco antes de usarlo para ver si presenta indicios de contaminación, por ejemplo, turbidez, membrana hinchada o hundida, o fugas.

NO UTILIZAR ningún frasco que presente indicios de contaminación. Un frasco contaminado podría contener presión positiva. Si se utiliza un frasco para la toma directa, el gas o los medios de cultivo contaminados podrían penetrar por reflujo en la vena del paciente. Es posible que la contaminación de un frasco no se note fácilmente. Si se utiliza un método de toma directa, vigile bien el proceso para evitar el reflujo de materiales al paciente.

El usuario debe examinar los frascos antes de usarlos para ver si presentan indicios de daños o deterioro. Los frascos que muestran muestren agrietamientos, fugas, turbidez, contaminación, decoloración (oscurecimiento) no deben utilizarse. En raras ocasiones, el cuello del frasco puede estar rajado y puede romperse al quitar la tapa a presión o al manipular el frasco. También, en raras ocasiones, es posible que un frasco no esté bien precintado. En ambos casos, el contenido de los frascos puede gotear o derramarse, especialmente si se invierte el frasco. Si se ha inoculado el frasco, se extremarán las precauciones al tratar la fuga o el derrame, ya que pueden existir organismos o agentes patógenos. Todos los frascos inoculados deben esterilizarse en autoclave antes de desecharse.

Frascos de cultivo positivo para subcultivo o para tinción, etc.: Antes de tomar las muestras es necesario liberar el gas que frecuentemente se acumula debido al metabolismo microbiano. La toma de muestras debe realizarse en lo posible en una cabina de seguridad biológica utilizando la indumentaria protectora adecuada, incluidos guantes y mascarilla. Consultar la sección de Procedimiento para mayor información acerca de los subcultivos.

Para reducir a un mínimo la posibilidad de pérdidas durante la inoculación de muestras en los frascos de cultivo, usar jeringas de aguja fija o puntas Luer-Lok.

Instrucciones para el Almacenamiento

Los frascos BACTEC se suministran listos para usar y no requieren reconstitución ni dilución. Almacenar en un lugar fresco y seco (2° – 25 °C) protegido de la

luz directa.

RECOGIDA DE MUESTRAS

La muestra debe recogerse empleando técnicas estériles con objeto de reducir la posibilidad de contaminación. El volumen de muestra recomendado es de

8 – 10 mL. Se recomienda inocular la muestra en los frascos BACTEC junto a la cama del paciente. Para la extracción de la muestra frecuentemente se utiliza una jeringa de 10 cc o 20 cc con punta Luer-Lok, un soporte de aguja Vacutainer y un equipo de recogida de sangre Vacutainer o Vacutainer Safety-Lok u otros tubos de tipo mariposa. Si se utiliza un conjunto de aguja y tubo (procedimiento de extracción directa), observe atentamente la dirección del flujo de la sangre cuando comience la extracción. El vacío en el vial será normalmente superior a 10 mL, de forma que el usuario debe de controlar el volumen recogido por medio de las marcas graduadas de 5 mL que aparecen en la etiqueta del vial. Se pueden utilizar volúmenes de muestra de tan solo 3 mL, aunque la recuperación no será tan buena como con volúmenes mayores.

El frasco de BACTEC inoculado debe llevarse al laboratorio tan pronto como sea posible.

PROCEDIMIENTO

Retirar el tapón a presión e inspeccionar el frasco BACTEC para detectar roturas, contaminación, turbidez excesiva del medio, hinchazón o hundimiento de la membrana. NO UTILIZAR si se observa algún defecto. Antes de la inoculación, limpiar la membrana con alcohol (NO se recomienda utilizar yodo). Inyectar asépticamente o extraer directamente hasta 8 – 10 mL de la muestra por cada frasco. Si se utilizan volúmenes de muestra de 3 – 7 mL, la recuperación no será tan buena como con volúmenes mayores (véase Limitaciones del procedimiento).

Los frascos aerobios inoculados deben colocarse en los instrumentos

BACTEC de la serie fluorescente lo antes posible para la incubación y la monitorización. Si se retrasa la colocación de un frasco inoculado en el instrumento y se observa crecimiento visible, no debería de analizarse en el instrumento BACTEC de la serie fluorescente, sino que más bien debería de realizarse un subcultivo con tinción Gram y considerarse un frasco presuntamente positivo.

Los frascos introducidos en el instrumento se analizarán automáticamente cada diez minutos durante la duración del período del protocolo de análisis. Los frascos positivos se determinarán por el instrumento BACTEC de la serie fluorescente y se identifican como tales (consulte el Manual del usuario del instrumento BACTEC de la serie fluorescente apropiado). El sensor en el interior del frasco no tendrá un aspecto visiblemente diferente en los frascos positivos y negativos, no obstante el instrumento BACTEC de la serie fluorescente puede determinar una diferencia en la fluorescencia.

Si al final del período de análisis un frasco negativo aparece visiblemente positivo (es decir, sangre chocolatizada, membrana hinchada, sangre lisada o muy oscurecida en un medio de cultivo BACTEC Plus Aerobic/F medium) debería de realizarse un subcultivo y tinción Gram y tratarse como un frasco presuntamente positivo.

Los frascos positivos deberían de subcultivarse y teñirse mediante Gram. En la gran mayoría de los casos, se observarán microorganismos y se puede realizar un informe preliminar para el médico. Pueden realizarse subcultivos en medios sólidos y una prueba de sensibilidad antimicrobiana directa preliminar a partir del líquido de los frascos BACTEC.

Subcultivos: Antes de realizar el subcultivo, ponga el frasco en posición vertical y coloque un trozo de algodón empapado en alcohol sobre la membrana. Para eliminar la presión en el frasco, utilice una unidad de ventilación adecuada (nº de catálogo BD 249560) o equivalente. La aguja debe retirarse después de haber descendido la presión y antes de tomar una muestra del frasco para efectuar un subcultivo. La inserción y retirada de la aguja deben realizarse moviendo la mano en línea recta, evitando movimientos giratorios.

CONTROL DE CALIDAD

El control de calidad se debe llevar a cabo conforme a la normativa local y/o nacional, a los requisitos de los organismos de acreditación y a los procedimientos estándar de control de calidad del laboratorio. Se recomienda consultar las instrucciones pertinentes del CLSI y la normativa de la CLIA para obtener información acerca de las prácticas adecuadas de control de calidad.

NO UTILIZAR los frascos después de la fecha de caducidad.

NO UTILIZAR los frascos que muestran indicios de agrietamientos o defectos; desechar el frasco de la forma apropiada.

Los certificados de control de calidad se incluyen con cada caja de medios. En los certificados de control de calidad aparecen los organismos de prueba, incluidos los cultivos ATCC especificados en los estándares del CLSI, Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media. El intervalo de tiempo para la detección en horas era de ≤ 72 para cada uno de los microorganismos enumerados en el Certificado de control de calidad para este medio de cultivo:

10


ATCC 13090


ATCC 19418


ATCC 6305


ATCC 19615


ATCC 27853


ATCC 66032


ATCC 25923


ATCC 25922


ATCC 8750

*Cepa recomendada por el CLSI

Para obtener información sobre el control de calidad del instrumento BACTEC de la serie fluorescente, consulte el Manual del usuario de dicho instrumento.

RESULTADOS

Una muestra positiva es determinada por el instrumento BACTEC de la serie fluorescente e indica la presunta presencia de microorganismos viables en el vial.

LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO

Contaminación

Se deben extremar las precauciones para evitar contaminar la muestra durante la obtención e inoculación en el frasco BACTEC. Una muestra contaminada dará una lectura positiva pero no indicará una muestra clínicamente relevante. El usuario debe tomar tal determinación teniendo en cuenta factores tales como el tipo de organismo aislado, la presencia del mismo organismo en varios cultivos, la historia clínica del paciente, etc.

Aislamiento de organismos sensibles a PSS a partir de muestras sanguíneas

Dado que la sangre puede neutralizar la toxicidad de PSS hacia organismos sensibles al mismo, la presencia del máximo volumen posible de sangre

(8 a 10 mL) puede contribuir a optimizar el aislamiento de dichos organismos. Con el fin de mejorar el crecimiento de organismos sensibles al PSS en los casos en que se inocula menos de 8 mL, se puede añadir más sangre humana entera

Algunos microorganismos exigentes como determinadas especies de Haemophilus requieren factores de crecimiento tales como NAD o factor V que se proporcionan por la muestra de sangre. Si el volumen de la muestra de sangre es de 3,0 mL o inferior, puede ser necesario añadir un suplemento para la recuperación de estos microorganismos. Como suplementos nutricionales puede utilizarse BACTEC FOS Fastidious Organism Supplement o sangre humana completa.

Organismos no viables

Un frotis con tinción Gram procedente de un medio de cultivo puede contener pequeñas cantidades de microorganismos no viables procedentes de componentes del medio, reactivos de tinción, aceite de inmersión, portaobjetos de vidrio y muestras utilizadas para la inoculación. Además, la muestra del paciente puede contener microorganismos que no crecen en el medio de cultivo o en los medios utilizados para el subcultivo. Este tipo de muestras deben subcultivarse en medios apropiados como se precise.

Actividad antimicrobiana

La neutralización de la actividad antimicrobiana por resinas varía en función de la dosis y el momento en que se realiza la extracción de la muestra. Si procede, se considerará el empleo de aditivos complementarios, como por ejemplo la incorporación de penicilinasa si se trata de terapia con β-lactámicos.

Aislamiento de Streptococcus pneumoniae

En medios anaerobios, S. pneumoniae será positivo, tanto visualmente y como por lo registrado por el instrumento, pero en algunos casos no se observarán microorganismos en subcultivos con tinción Gram o recuperados en subcultivos de rutina. Si se ha inoculado también un frasco anaerobio, el microorganismo puede recuperarse normalmente mediante la realización de un subcultivo aerobio del frasco anaerobio, debido a que se sabe que este microorganismo crece bien en condiciones anaerobias.

11

Consideraciones generales

La recuperación óptima de los microorganismos se conseguirá añadiendo cantidades máximas de sangre. Estudios clínicos publicados han mostrado que el uso de volúmenes inferiores puede afectar negativamente a la recuperación y/o tiempos de detección de los microorganismos.

sustancias anti-microbianas u otros inhibidores que pueden retrasar o impedir el crecimiento de microorganismos. Se pueden obtener resultados falsamente negativos cuando se encuentran presentes ciertos organismos cuya producción de CO

2

12 La sangre puede contener

no es suficiente para que el sistema lo detecte o si hubo crecimiento apreciable antes de haberse colocado el frasco en el sistema. En los estudios analíticos, este dispositivo recuperó 17 de 18 cepas de Leuconostoc spp. analizadas. Pueden producirse falsos negativos cuando el recuento de glóbulos blancos es alto. Se utilizó el protocolo predeterminado de 5 días para todas las pruebas analíticas con este dispositivo e no se ha evaluado ninguna duración de protocolo >5 días.

Debido a la naturaleza de los materiales biológicos contenidos en los medios y a la variabilidad inherente de los organismos, el usuario debe tener en cuenta que podrían obtenerse resultados variables en la recuperación de ciertos microorganismos.

VALORES PREVISTOS Y CARACTERÍSTICAS DE RENDIMIENTO ESPECIFICAS

El rendimiento del medio de cultivo BD BACTEC Plus Aerobic/F en frascos de vidrio ha sido establecido por varios estudios clínicos externos.

1-3,8,9 Los estudios laboratoriales de siembra realizados por BD han mostrado un rendimiento equivalente del medio de cultivo BD BACTEC Plus Aerobic/F en frascos de plástico en comparación con el medio de cultivo BD BACTEC Plus Aerobic/F en frascos de vidrio.

Cryptococcus neoformans se incluyeron en las pruebas analíticas de este dispositivo.

10 Las levaduras Candida albicans, C. glabrata y

DISPONIBILIDAD

Nº de cat. Descripción

442023


REFERENCIAS: Ver "References" en el texto en inglés.

Servicio técnico de BD Diagnostics: póngase en contacto con el representante local de BD.




Meio Líquido de Soja-Caseína Digerida em frasco de plástico

Portugués

UTILIZAÇÃO PREVISTA

O meio BD BACTEC Plus Aerobic/F é utilizado num procedimento qualitativo para a cultura aeróbia e o isolamento de microrganismos (bactérias e leveduras) do sangue. A utilização principal deste meio é aplicável a instrumentos BD BACTEC da série fluorescente.

RESUMO E EXPLICAÇÃO

A amostra a ser testada é inoculada dentro de um ou mais frascos, os quais são introduzidos dentro do instrumento BACTEC da série fluorescente, para incubação e leituras periódicas. Cada frasco contém um sensor químico que consegue detectar aumentos no CO microrganismos. O sensor é monitorizado pelo instrumento a cada dez minutos relativamente ao aumento da respectiva fluorescência, proporcional à quantidade de CO

2

produzido pelo crescimento dos

2

presente. Uma leitura positiva indica a presença presumida de microrganismos viáveis no frasco. A detecção está limitada aos microrganismos que crescerão num tipo de meio específico.

As resinas foram descritas para o tratamento de amostras de sangue antes e após da respectiva inoculação nos meios de cultura. As resinas foram incorporadas nos meios de cultura BACTEC para potenciar o isolamento de organismos sem exigir de um processamento especial.

1-3

11

PRINCÍPIOS DO PROCEDIMENTO

Se existirem microrganismos na amostra de teste inoculada dentro do frasco

BACTEC, ocorrerá a produção de CO

quando os organismos metabolizarem os substratos presentes no frasco. Os aumentos na fluorescência do sensor do frasco provocados pelo aumento na quantidade de CO instrumento

BACTEC da série fluorescente. A análise da velocidade e da quantificação do aumento do CO

2

2

são monitorizados pelo

permite ao instrumento

BACTEC da série fluorescente determinar se a leitura do frasco é positiva, ou seja, se a amostra testada contém organismos viáveis.

REAGENTES

Antes do processamento, os frascos de cultura BACTEC contêm os seguintes ingredientes reactivos:

Lista de Ingredientes

Água Processada


30 mL

p/v

Meio Líquido de Soja-Caseína Digerida

Extracto de levedura

3,0%

0,25%

Aminoácidos 0,05%

Açúcar 0,2%

Polianetolsulfonato de Sódio (SPS) 0,05%

Vitaminas 0,025%

Antioxidantes/Redutores 0,005%

Resina Adsorvente Não iónica

Resina de Permuta Catiónica

13,4%

0,9%

Todos os meios BACTEC são distribuídos com CO

2

adicionado.

Advertências e Precauções:

Os frascos de cultura preparados destinam-se a ser utilizados no diagnóstico in vitro.

Este produto contém borracha natural desidratada.

Nas amostras podem existir microorganismos patogénicos, incluindo os vírus das hepatites e o vírus da imunodeficiência humana. Na manipulação de todos os itens contaminados com sangue, devem ser seguidas as "Precauções Padrão" 4-7 e as directrizes da instituição.

Antes de ser utilizado, cada frasco deve ser examinado relativamente a sinais de contaminação, tais como turvação, abaulamento ou depressão do septo, ou fugas. NÃO UTILIZE nenhum frasco que apresente sinais de contaminação. Um frasco contaminado pode conter uma pressão positiva. Se for utilizado um frasco contaminado para colheita directa, poderá ocorrer um refluxo de gás ou do meio de cultura contaminado para a veia do doente. A contaminação do frasco pode não ser imediatamente aparente. Se for utilizado um procedimento de colheita directa, monitorize cuidadosamente o processo de forma a evitar o refluxo de materiais para o doente.

Antes de ser utilizado, o utilizador deve examinar cada frasco relativamente a danos ou deterioração. Os frascos que apresentem rachas, fugas, turvação, contaminação ou descoloração (escurecimento) não devem ser utilizados. Em raras ocasiões, o gargalo do frasco poderá estar rachado e partir-se durante a remoção da tampa de encaixe, ou durante a manipulação. Igualmente, em ocasiões raras, um frasco poderá não estar suficientemente selado. Em ambos os casos, poderá ocorrer uma fuga ou o derrame do conteúdo do frasco, especialmente se o frasco for invertido. Se o frasco tiver sido inoculado, trate a fuga ou o derrame com cuidado pois podem existir organismos/agentes patogénicos. Antes da eliminação, esterilize todos os frascos inoculados em autoclave.

Frascos de cultura positivos para repicagem ou coloração, etc.: antes da colheita de amostras, é necessário libertar o gás frequentemente produzido devido ao metabolismo microbiano. Se possível, a colheita de amostras deverá ser efectuada numa câmara de segurança biológica e utilizando vestuário protector, incluindo luvas e máscaras. Consulte a secção Procedimento para obter mais informações sobre a repicagem.

Para minimizar a possibilidade de fugas durante a inoculação da amostra dentro dos frascos de cultura, utilize seringas com agulhas fixas ou pontas Luer-Lok.

Instruções de Armazenamento

Os frascos BACTEC encontram-se prontos a serem utilizados tal como são recebidos e não necessitam de reconstituição ou diluição. Armazene num local fresco e seco (2° – 25 °C), sem luz directa.

COLHEITA DE AMOSTRAS

A colheita de amostras deve ser efectuada utilizando técnicas estéreis, de forma a diminuir a possibilidade de contaminação. O volume de amostra recomendado é de 8 – 10 mL. Recomenda-se que a inoculação da amostra nos frascos BACTEC seja efectuada na cabeceira do doente. É utilizada uma seringa de 10cc ou 20cc com uma ponta de marca Luer-Lok para colheita de amostra, em alternativa, pode ser utilizado um Suporte de Agulha Vacutainer e um Conjunto de Colheita de Sangue Vacutainer, um Conjunto de Colheita de Sangue Vacutainer Safety-Lok ou outro conjunto de tubagem tipo “borboleta”.

Se utilizar uma agulha e um conjunto com tubagem (colheita directa), observe cuidadosamente a direcção do fluxo do sangue quando iniciar a colheita da amostra. O vácuo no frasco excederá habitualmente os 10 mL, devendo por isso o utilizador monitorizar o volume colhido através das marcas da graduação de

5 mL existentes no rótulo do frasco. Podem ser utilizadas amostras com um volume inferior a 3 mL, no entanto, o isolamento será menor do que aquele conseguido com volumes superiores.

O frasco BACTEC inoculado deverá ser transportado para o laboratório o mais rapidamente possível.

PROCEDIMENTO

Retire a tampa de encaixe do topo do frasco BACTEC e inspeccione-o relativamente à existência de fendas, contaminação, turvação excessiva do meio e abaulamento ou irregularidades do septo. Se for detectado algum defeito, NÃO UTILIZAR. Antes de inocular, limpe o septo com álcool (o iodo NÃO é recomendado). Efectue a injecção asséptica ou a colheita directa de 8 – 10 mL de amostra por frasco. Se forem utilizados volumes de amostras de 3 – 7 mL, o isolamento será menor do que aquele conseguido com volumes superiores (consulte Limitações do Procedimento).

Os frascos aeróbios inoculados devem ser

colocados, o mais rapidamente possível, no instrumento BACTEC da série fluorescente para a incubação e monitorização. Se ocorrer algum atraso na colocação do frasco inoculado dentro do instrumento e existir crescimento visível, o frasco não deverá ser testado no instrumento BACTEC da série fluorescente; em vez disso, deverá ser efectuada uma repicagem e a coloração Gram, devendo o frasco ser manipulado como um frasco presumidamente positivo.

Os frascos introduzidos dentro do instrumento serão automaticamente testados a cada dez minutos durante o período de duração do protocolo do teste. O instrumento BACTEC da série fluorescente determinará e identificará os frascos positivos (consulte o Manual do Utilizador do Instrumento BACTEC da Série

Fluorescente apropriado). O sensor no interior do frasco não apresentará diferenças visíveis entre os frascos positivos e os negativos; no entanto, o instrumento BACTEC da série fluorescente consegue detectar diferenças de fluorescência.

Se, no fim do período de teste, um frasco negativo apresentar sinais visíveis de positividade (isto é, sangue com cor de chocolate, abaulamento do septo, sangue lisado e/ou sangue com cor muito escura no meio BACTEC Plus Aerobic/F), deverá ser efectuada uma repicagem e coloração Gram, devendo o frasco ser manipulado como um frasco presumidamente positivo.

Deverá ser efectuada uma repicagem e coloração Gram dos frascos de cultura positivos. Na grande maioria dos casos, os organismos serão observados e poderá ser efectuado um relatório preliminar para o médico. A partir do líquido nos frascos BACTEC, podem ser preparadas repicagens em meios sólidos, bem como um teste de susceptibilidade antimicrobiana directa preliminar.

Repicagem: Antes de efectuar a repicagem, coloque o frasco na posição vertical e coloque uma compressa com álcool sobre o septo. Para soltar a pressão no frasco, utilize uma unidade de ventilação apropriada (nº. de catálogo BD 249560) ou equivalente. A agulha deverá ser retirada após a libertação da pressão e antes da recolha da amostra do frasco para repicagem. A introdução e a remoção da agulha devem ser efectuadas com um movimento em linha recta, evitando quaisquer movimentos de torção.

CONTROLO DE QUALIDADE

Os requisitos de controlo da qualidade têm de ser realizados de acordo com os regulamentos ou as exigências de acreditação aplicáveis locais, estatais e/ou federais [EUA] e os procedimentos de Controlo da Qualidade em vigor no laboratório. É recomendado que o utilizador consulte as orientações do CLSI e os regulamentos da CLIA pertinentes sobre as práticas de controlo de qualidade apropriadas.

NÃO UTILIZE os frascos de cultura que tenham ultrapassado o prazo de validade.

NÃO UTILIZE frascos de cultura que apresentem fendas ou defeitos; elimine o frasco de forma apropriada.

12

Em cada caixa de meios de cultura, são fornecidos Certificados do Controlo de Qualidade. Os Certificados do Controlo de Qualidade contêm uma lista dos organismos para teste, incluindo as culturas ATCC especificadas na Norma CLSI M22, Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media

(Controlo de Qualidade para os Meios de Cultura Preparados Comercialmente). O intervalo de tempo em horas até à detecção foi ≤ 72 h, para cada um dos organismos referidos no Certificado do Controlo de Qualidade para este meio:


ATCC 13090


ATCC 19418


ATCC 6305


ATCC 19615


ATCC 27853


ATCC 66032


ATCC 25923


ATCC 25922


ATCC 8750

*Estirpe com recomendação CLSI

Para obter informações sobre o Controlo de Qualidade para o instrumento BACTEC da série fluorescente, consulte o Manual do Utilizador do Instrumento

BACTEC da Série Fluorescente apropriado.

RESULTADOS

Uma amostra positiva é determinada pelo instrumento BACTEC da série fluorescente e indica a presença presumida de microrganismos viáveis no frasco.

LIMITAÇÕES DO PROCEDIMENTO

Contaminação

Deverá tomar precauções para evitar a contaminação da amostra durante a colheita e a inoculação dentro do frasco BACTEC. Uma amostra contaminada apresentará uma leitura positiva, mas não indicará uma amostra clinicamente relevante. Tal determinação deverá ser efectuada pelo utilizador com base em factores tais como o tipo de organismos isolados, a ocorrência do mesmo organismo em várias culturas, a história do doente, etc.

Isolamento de Organismos Sensíveis ao SPS a partir de Amostras de Sangue

Uma vez que o sangue pode neutralizar a toxicidade do SPS para os organismos sensíveis ao SPS, a presença de volumes máximos de sangue (8 – 10 mL) constitui uma vantagem para o isolamento destes organismos. Para aumentar o crescimento de organismos sensíveis ao SPS quando são inoculados volumes de sangue inferiores a 8 mL, poderá ser adicionado sangue total humano.

Alguns organismos de crescimento lento, tais como certas espécies de Haemophilus, necessitam de factores de crescimento, tais como o NAD ou factor V, os quais são fornecidos pela amostra de sangue. Se o volume da amostra de sangue for de 3,0 mL ou inferior, poderá ser necessário um suplemento adequado para o isolamento destes organismos. O BACTEC FOS Fastidious Organism Supplement (Suplemento para Organismos de Crescimento Lento), ou o sangue total humano, podem ser utilizados como suplementos nutritivos.

Organismos Não Viáveis

Um esfregaço com a coloração Gram, obtido a partir de um meio de cultura, pode conter números reduzidos de organismos não viáveis derivados dos constituintes dos meios, dos reagentes da coloração, do óleo de imersão, das lâminas de vidro e das amostras utilizadas para a inoculação. Além disso, a amostra do doente pode conter organismos que não crescerão no meio de cultura ou no meio utilizado para a repicagem. Se for apropriado, pode ser efectuada uma repicagem dessas amostras num meio especial.

Actividade Antimicrobiana

A neutralização da actividade antimicrobiana pelas resinas varia dependendo do nível de dosagem e do momento da colheita da amostra. A utilização de aditivos suplementares deve ser considerada em situações apropriadas; como exemplo, a adição de penicilinase quando está a ser utilizada uma terapêutica com β-lactâmicos.

Isolamento de Streptococcus pneumoniae

Tipicamente, em meios aeróbios o S. pneumoniae será positivo, quer visualmente, quer no instrumento, mas em alguns casos não será observado nenhum organismo na coloração Gram nem será isolado na repicagem de rotina. Se também tiver sido inoculado um frasco anaeróbio, o organismo pode geralmente ser isolado efectuando uma repicagem em meio aeróbio do frasco anaeróbio, uma vez que tem sido referido que este organismo apresenta um bom crescimento sob condições anaeróbias.

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Considerações Gerais

A detecção óptima de organismos será obtida adicionando as quantidades máximas de sangue. Os estudos clínicos publicados demonstraram que a utilização de volumes inferiores pode afectar de forma adversa os períodos de tempo de isolamento e/ou a detecção dos organismos.

antimicrobianos ou outros inibidores, os quais podem atrasar ou impedir o crescimento de microorganismos. Poderão ocorrer leituras falsas negativas quando estiverem presentes certos organismos que não produzam CO

12 O sangue pode conter

2

suficiente para ser detectado pelo sistema, ou se tiver ocorrido um crescimento significativo antes da colocação do frasco dentro do sistema. Em estudos analíticos, este dispositivo recuperou 17 das 18 estirpes de Leuconostoc spp. testadas. A falsa positividade pode ocorrer quando a contagem de glóbulos brancos é elevada. Para todos os testes analíticos com este dispositivo, foi utilizado o protocolo predefinido de 5 dias; não foi avaliada outra duração de protocolo >5 dias.

Devido à natureza dos materiais biológicos existentes nos produtos dos meios e à variabilidade inerente ao organismo, o utilizador deverá estar informado da potencial variação de resultados no isolamento de certos microorganismos.

VALORES ESPERADOS E CARACTERÍSTICAS DO DESEMPENHO ESPECÍFICAS

O desempenho do meio BD BACTEC Plus Aerobic/F em frascos de vidro foi estabelecido numa série de estudos clínicos externos.

1-3,8,9 Estudos laboratoriais de culturas semeadas efectuados pela BD demonstraram um desempenho equivalente do meio BD BACTEC Plus Aerobic/F em frascos de plástico com o meio

BD BACTEC Plus Aerobic/F em frascos de vidro.

deste dispositivo.

10 As leveduras Candida albicans, C. glabrata e Cryptococcus neoformans foram testadas nos testes analíticos

APRESENTAÇÃO

Nº. de cat. Descrição

442023


BIBLIOGRAFIA: Consulte "References" no texto em Inglês.

Assistência Técnica e Suporte da BD Diagnostics: contacte o representante local da BD.

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

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Manufacturer / Производител / Výrobce / Fabrikant / Hersteller / Κατασκευαστής / Fabricante / Tootja / Fabricant / Proizvođać / Gyártó /

Fabbricante / Атқарушы / Gamintojas / Ražotājs / Tilvirker / Producent / Producător / Производитель / Výrobca / Proizvođač / Tillverkare

/ Üretici / Виробник

Use by / Използвайте до / Spotřebujte do / Brug før / Verwendbar bis / Χρήση έως / Usar antes de / Kasutada enne / Date de péremption / Upotrijebiti do / Felhasználhatóság dátuma / Usare entro / Дейін пайдалануға / Naudokite iki / Izlietot līdz / Houdbaar tot / Brukes for / Stosować do / Prazo de validade / A se utiliza până la / Использовать до / Použite do / Upotrebiti do / Använd före /

Son kullanma tarihi / Використати до\line

YYYY-MM-DD / YYYY-MM (MM = end of month)

ГГГГ-ММ-ДД / ГГГГ-ММ (ММ = края на месеца)

RRRR-MM-DD / RRRR-MM (MM = konec měsíce)

ÅÅÅÅ-MM-DD / ÅÅÅÅ-MM (MM = slutning af måned)

JJJJ-MM-TT / JJJJ-MM (MM = Monatsende)

ΕΕΕΕ-MM-HH / ΕΕΕΕ-MM (MM = τέλος του μήνα)

AAAA-MM-DD / AAAA-MM (MM = fin del mes)

AAAA-KK-PP / AAAA-KK (KK = kuu lõpp)

AAAA-MM-JJ / AAAA-MM (MM = fin du mois)

GGGG-MM-DD / GGGG-MM (MM = kraj mjeseca)

ÉÉÉÉ-HH-NN / ÉÉÉÉ-HH (HH = hónap utolsó napja)

AAAA-MM-GG / AAAA-MM (MM = fine mese)

ЖЖЖЖ-АА-КК / ЖЖЖЖ-АА / (АА = айдың соңы)

MMMM-MM-DD / MMMM-MM (MM = mėnesio pabaiga)

GGGG-MM-DD/GGGG-MM (MM = mēneša beigas)

JJJJ-MM-DD / JJJJ-MM (MM = einde maand)

ÅÅÅÅ-MM-DD / ÅÅÅÅ-MM (MM = slutten av måneden)

RRRR-MM-DD / RRRR-MM (MM = koniec miesiąca)

AAAA-MM-DD / AAAA-MM (MM = fim do mês)

AAAA-LL-ZZ / AAAA-LL (LL = sfârşitul lunii)

ГГГГ-ММ-ДД / ГГГГ-ММ (ММ = конец месяца)

RRRR-MM-DD / RRRR-MM (MM = koniec mesiaca)

GGGG-MM-DD / GGGG-MM (MM = kraj meseca)

ÅÅÅÅ-MM-DD / ÅÅÅÅ-MM (MM = slutet av månaden)

YYYY-AA-GG / YYYY-AA (AA = ayın sonu)

РРРР-MM-ДД / РРРР-MM (MM = кінець місяця)

Catalog number / Каталожен номер / Katalogové číslo / Katalognummer / Αριθμός καταλόγου / Número de catálogo /

Katalooginumber / Numéro catalogue / Kataloški broj / Katalógusszám / Numero di catalogo / Каталог нөмірі / Katalogo numeris /

Kataloga numurs / Catalogus nummer / Numer katalogowy / Număr de catalog / Номер по каталогу / Katalógové číslo / Kataloški broj /

Katalog numarası / Номер за каталогом

Authorized Representative in the European Community / Оторизиран представител в Европейската общност / Autorizovaný zástupce pro Evropském společenství / Autoriseret repræsentant i De Europæiske Fællesskaber / Autorisierter Vertreter in der

Europäischen Gemeinschaft / Εξουσιοδοτημένος αντιπρόσωπος στην Ευρωπαϊκή Κοινότητα / Representante autorizado en la

Comunidad Europea / Volitatud esindaja Euroopa Nõukogus / Représentant autorisé pour la Communauté européenne / Autorizuirani predstavnik u Europskoj uniji / Meghatalmazott képviselő az Európai Közösségben / Rappresentante autorizzato nella Comunità

Europea / Европа қауымдастығындағы уәкілетті өкіл / Įgaliotasis atstovas Europos Bendrijoje / Pilnvarotais pārstāvis Eiropas Kopienā /

Bevoegde vertegenwoordiger in de Europese Gemeenschap / Autorisert representant i EU / Autoryzowane przedstawicielstwo we Wspólnocie

Europejskiej / Representante autorizado na Comunidade Europeia / Reprezentantul autorizat pentru Comunitatea Europeană /

Уполномоченный представитель в Европейском сообществе / Autorizovaný zástupca v Európskom spoločenstve / Autorizovano predstavništvo u Evropskoj uniji / Auktoriserad representant i Europeiska gemenskapen / Avrupa Topluluğu Yetkili Temsilcisi / Уповноважений представник у країнах ЄС

In Vitro Diagnostic Medical Device / Медицински уред за диагностика ин витро / Lékařské zařízení určené pro diagnostiku in vitro / In vitro diagnostisk medicinsk anordning / Medizinisches In-vitro-Diagnostikum / In vitro διαγνωστική ιατρική συσκευή / Dispositivo médico para diagnóstico in vitro / In vitro diagnostika meditsiiniaparatuur / Dispositif médical de diagnostic in vitro / Medicinska pomagala za In

Vitro Dijagnostiku / In vitro diagnosztikai orvosi eszköz / Dispositivo medicale per diagnostica in vitro / Жасанды жағдайда жүргізетін медициналық диагностика аспабы / In vitro diagnostikos prietaisas / Medicīnas ierīces, ko lieto in vitro diagnostikā / Medisch hulpmiddel voor in-vitro diagnostiek / In vitro diagnostisk medisinsk utstyr / Urządzenie medyczne do diagnostyki in vitro / Dispositivo médico para diagnóstico in vitro / Dispozitiv medical pentru diagnostic in vitro / Медицинский прибор для диагностики in vitro /

Medicínska pomôcka na diagnostiku in vitro / Medicinski uređaj za in vitro dijagnostiku / Medicinteknisk produkt för in vitro-diagnostik /

İn Vitro Diyagnostik Tıbbi Cihaz / Медичний пристрій для діагностики in vitro

Temperature limitation / Температурни ограничения / Teplotní omezení / Temperaturbegrænsning / Temperaturbegrenzung /

Περιορισμοί θερμοκρασίας / Limitación de temperatura / Temperatuuri piirang / Limites de température / Dozvoljena temperatura /

Hőmérsékleti határ / Limiti di temperatura / Температураны шектеу / Laikymo temperatūra / Temperatūras ierobežojumi /

Temperatuurlimiet / Temperaturbegrensning / Ograniczenie temperatury / Limites de temperatura / Limite de temperatură / Ограничение температуры / Ohraničenie teploty / Ograničenje temperature / Temperaturgräns / Sıcaklık sınırlaması / Обмеження температури

Batch Code (Lot) / Код на партидата / Kód (číslo) šarže / Batch-kode (lot) / Batch-Code (Charge) / Κωδικός παρτίδας (παρτίδα) /

Código de lote (lote) / Partii kood / Numéro de lot / Lot (kod) / Tétel száma (Lot) / Codice batch (lotto) / Топтама коды / Partijos numeris (LOT) / Partijas kods (laidiens) / Lot nummer / Batch-kode (parti) / Kod partii (seria) / Código do lote / Cod de serie (Lot) / Код партии (лот) / Kód série (šarža) / Kod serije / Partinummer (Lot) / Parti Kodu (Lot) / Код партії

23





Contains sufficient for <n> tests / Съдържанието е достатъчно за <n> теста / Dostatečné množství pro <n> testů / Indeholder tilstrækkeligt til <n> tests / Ausreichend für <n> Tests / Περιέχει επαρκή ποσότητα για <n> εξετάσεις / Contenido suficiente para <n> pruebas /

Küllaldane <n> testide jaoks / Contenu suffisant pour <n> tests / Sadržaj za <n> testova / <n> teszthez elegendő / Contenuto sufficiente per

<n> test / <п> тесттері үшін жеткілікті / Pakankamas kiekis atlikti <n> testų / Satur pietiekami <n> pārbaudēm / Inhoud voldoende voor “n” testen / Innholder tilstrekkelig til <n> tester / Zawiera ilość wystarczającą do <n> testów / Conteúdo suficiente para <n> testes / Conţinut suficient pentru <n> teste / Достаточно для <n> тестов(а) / Obsah vystačí na <n> testov / Sadržaj dovoljan za <n> testova / Innehåller tillräckligt för <n> analyser / <n> test için yeterli malzeme içerir / Вистачить для аналізів: <n>

Consult Instructions for Use / Направете справка в инструкциите за употреба / Prostudujte pokyny k použití / Se brugsanvisningen

/ Gebrauchsanweisung beachten / Συμβουλευτείτε τις οδηγίες χρήσης / Consultar las instrucciones de uso / Lugeda kasutusjuhendit /

Consulter la notice d’emploi / Koristi upute za upotrebu / Olvassa el a használati utasítást / Consultare le istruzioni per l’uso /

Пайдалану нұсқаулығымен танысып алыңыз / Skaitykite naudojimo instrukcijas / Skatīt lietošanas pamācību / Raadpleeg de gebruiksaanwijzing / Se i bruksanvisningen / Zobacz instrukcja użytkowania / Consultar as instruções de utilização / Consultaţi instrucţiunile de utilizare / См. руководство по эксплуатации / Pozri Pokyny na používanie / Pogledajte uputstvo za upotrebu / Se bruksanvisningen / Kullanım Talimatları’na başvurun / Див. інструкції з використання

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BACTEC™ Plus Aerobic/F Culture Vials

™

English: pages 1 – 3

Français : pages 3 – 5

Deutsch: Seiten 5 – 7

Soybean-Casein Digest Broth in a Plastic Vial

Italiano:

Español: pagine 7 – 9 páginas 9 – 11

Português: páginas 11 – 13

Bouillon digéré de soja-caséine en flacon plastique

Casein-Soja-Pepton-Bouillon in Plastikfläschchen

Brodo digerito di soia-caseina in flacone di plastica

Caldo digerido de soja-caseína en frasco de plástico

Meio Líquido de Soja-Caseína Digerida em frasco de plástico

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