Guía del usuario de HiSeq 2500 - Support

Guía del usuario de HiSeq 2500 - Support
Guía del usuario del
sistema HiSeq® 2500
PARA USO DE INVESTIGACIÓN SOLAMENTE
PROPIEDAD DE ILLUMINA
N.º componente 15035786 Rev. D ESP
Noviembre de 2014
N.º de catálogo SY-401-9001DOC
Personalice una breve guía de flujo de trabajo integral con
la herramienta de selección de protocolos personalizados
support.illumina.com/custom-protocol-selector.html
Este documento y su contenido son propiedad de Illumina, Inc. y sus afiliados ("Illumina"), y están previstos solamente para el uso contractual de
sus clientes con relación al uso de los productos descritos en él y no para ningún otro fin. Este documento y su contenido no se utilizarán ni
distribuirán con ningún otro fin ni tampoco se comunicarán, divulgarán ni reproducirán en ninguna otra forma sin el consentimiento previo por
escrito de Illumina. Illumina no transfiere mediante este documento ninguna licencia bajo sus derechos de patente, marca comercial, derechos de
autor ni consuetudinarios ni derechos de terceros similares.
La licencia del software se otorga bajos los términos y condiciones del Acuerdo de licencia del software de secuenciación de Illumina en un
documento separado. Si no está de acuerdo con los términos y condiciones que figuran en dicho acuerdo, Illumina no le otorgará la licencia del
software y no podrá utilizar ni instalar el software.
Para garantizar el uso correcto y seguro de los productos aquí descritos, el personal cualificado y adecuadamente capacitado debe seguir sus
instrucciones de manera rigurosa y expresa. Se debe leer y entender completamente todo el contenido de este documento antes de usar estos
productos.
SI NO SE LEEN COMPLETAMENTE NI SE SIGUEN EXPRESAMENTE TODAS LAS INSTRUCCIONES AQUÍ CONTENIDAS, PODRÍAN
PRODUCIRSE DAÑOS EN LOS PRODUCTOS, LESIONES EN PERSONAS (USUARIOS O TERCEROS) Y DAÑOS EN OTRA PROPIEDAD.
ILLUMINA NO ASUME NINGUNA RESPONSABILIDAD QUE SE DERIVE DEL USO INCORRECTO DE LOS PRODUCTOS AQUÍ DESCRITOS
(INCLUIDAS LAS PIEZAS O EL SOFTWARE) NI DEL USO DE DICHOS PRODUCTOS FUERA DEL ÁMBITO DE LAS LICENCIAS EXPRESAS
ESCRITAS O LOS PERMISOS OTORGADOS POR ILLUMINA EN RELACIÓN CON LA ADQUISICIÓN DE DICHOS PRODUCTOS POR PARTE
DE LOS CLIENTES.
PARA USO EXCLUSIVO EN INVESTIGACIÓN
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Illumina, 24sure, BaseSpace, BeadArray, BlueFish, BlueFuse, BlueGnome, cBot, CSPro, CytoChip, DesignStudio, Epicentre, GAIIx, Genetic
Energy, Genome Analyzer, GenomeStudio, GoldenGate, HiScan, HiSeq, HiSeq X, Infinium, iScan, iSelect, ForenSeq, MiSeq, MiSeqDx,
MiSeq FGx, NeoPrep, Nextera, NextBio, NextSeq, Powered by Illumina, SeqMonitor, SureMDA, TruGenome, TruSeq, TruSight, Understand
Your Genome, UYG, VeraCode, verifi, VeriSeq, el color naranja calabaza y el diseño de las bases de streaming son marcas comerciales de
Illumina, Inc. o de sus filiales en EE. UU. u otros países. Todos los demás nombres, logotipos y marcas comerciales pertenecen a sus respectivos
propietarios.
Este software contiene la biblioteca de SeqAn, cuya licencia se otorga a Illumina y se distribuye bajo la siguiente licencia:
Copyright © 2010, Knut Reinert, FU Berlin. Todos los derechos reservados. La redistribución y el uso en formatos de fuente y binarios, con o sin
modificación, se permite siempre que se cumplan las siguientes condiciones:
1
Las redistribuciones del código de fuente deben observar la nota de copyright anterior, esta lista de condiciones y la siguiente exención
2
Las redistribuciones en formato binario deben reproducir la nota de copyright anterior, esta lista de condiciones y la siguiente exención
de responsabilidad.
de responsabilidad de la documentación o de otros materiales que suministre el distribuidor.
3
Ni el nombre de FU Berlin o Knut Reinert ni los nombres de sus contribuidores puede utilizarse para divulgar o promocionar
productos derivados de este software sin permiso expreso previo y por escrito.
ESTE SOFTWARE LO SUMINISTRAN LOS PROPIETARIOS DE LOS DERECHOS DE PROPIEDAD INTELECTUAL Y SUS CONTRIBUIDORES
"TAL CUAL" Y SE RESCINDE DE CUALQUIER GARANTÍA EXPRESA O IMPLÍCITA INCLUIDAS, ENTRE OTRAS, LAS GARANTÍAS
IMPLÍCITAS DE COMERCIABILIDAD E IDONEIDAD PARA UN FIN PARTICULAR. EN NINGÚN CASO EL PROPIETARIO DE LOS
DERECHOS DE PROPIEDAD INTELECTUAL O SUS CONTRIBUIDORES SERÁN RESPONSABLES DE NINGÚN DAÑO DIRECTO, INDIRECTO,
ACCIDENTAL, ESPECIAL, EJEMPLAR O CONSECUENTE (INCLUIDO, ENTRE OTROS, LA ADQUISICIÓN DE BIENES O SERVICIOS
SUSTITUTOS, LA PÉRDIDA DE USO, DATOS O BENEFICIOS O LA INTERRUPCIÓN DE ACTIVIDAD COMERCIAL), CUALQUIERA QUE SEA
LA CAUSA Y PARTIENDO DE LA POSIBILIDAD DE RESPONSABILIDADES, YA SEA EN CONTRATO, RESPONSABILIDAD OBJETIVA O
ii
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
AGRAVIO (INCLUIDA LA NEGLIGENCIA U OTRO TIPO) QUE SURJAN DE ALGÚN MODO DEL USO DE ESTE SOFTWARE, INCLUSO SI
HUBIEREN SIDO ADVERTIDOS DE LA POSIBILIDAD DE TALES DAÑOS.
Leer antes de usar este producto
Este producto, y su uso y disposición, están sujetos a los siguientes términos y condiciones. Si el comprador no acepta estos
términos y condiciones, el comprador no contará con la autorización de Illumina para utilizar este producto, y no deberá
utilizar este producto.
1
Definiciones. "PI de aplicaciones específicas" hace referencia a los derechos de propiedad intelectual que controla o
posee Illumina que pertenecen a este producto (y al uso del mismo) solo en relación con aplicaciones específicas o
campos específicos. La PI de aplicaciones específicas excluye la propiedad intelectual que controla o posee Illumina que
cubre los aspectos o las características de este producto (o el uso del mismo) que son comunes a este producto en todas
las posibles aplicaciones y todos los posibles campos de uso (la "PI común"). La PI de aplicaciones específicas y la PI
común son subconjuntos separados y no superpuestos de todos los derechos de propiedad intelectual que controla o
posee Illumina. A modo de ejemplo, pero sin limitarse a este, los derechos de propiedad intelectual de Illumina sobre
métodos diagnósticos específicos, métodos forenses específicos o biomarcadores de ácido nucleico, secuencias o
combinaciones de biomarcadores o secuencias específicas son ejemplos de una PI de aplicaciones específicas.
"Consumibles" hacen referencia a los elementos fungibles y los reactivos de marca Illumina que ha concebido Illumina
para su uso junto con el hardware, así como para su consumo mediante el uso del hardware. "Documentación"
comprende el manual del usuario de Illumina correspondiente a este producto, incluido, entre otros, los prospectos y
cualquier otro tipo de documentación que se adjunte a este producto, al que el producto haga referencia o que se encuentre
en el embalaje vigentes en la fecha de envío de Illumina. La documentación incluye este documento. "Hardware" engloba
los instrumentos, accesorios o periféricos de marca Illumina. "Illumina" hace referencia a Illumina, Inc. o a un afiliado de
Illumina, según corresponda. "Producto" comprende el producto al que se adjunta este documento (por ejemplo,
hardware, consumibles o software). "Comprador" es la persona o entidad que adquiere de manera legal y correcta este
producto de Illumina o de un distribuidor autorizado de Illumina. "Software" hace referencia al software de marca
Illumina (por ejemplo, el software que opera el hardware o el software de análisis de datos). Todo el software se concede
mediante licencia y no se vende, al tiempo que puede estar sujeto a términos adicionales que figuren en el acuerdo de
licencia del usuario final del software. "Especificaciones" incluye las especificaciones escritas de Illumina con respecto a
este producto vigentes en la fecha de envío del producto por parte de Illumina.
2
Derechos para uso exclusivo en investigación. De conformidad con estos términos y condiciones y, a menos que se
acuerde lo contrario por escrito con un directivo de Illumina, al comprador solo se le concede un derecho no exclusivo,
no transferible, personal y sin posibilidad de sublicencia de acuerdo con la PI común de Illumina, en vigor en la fecha de
envío de este producto por parte de Illumina, con el único fin de utilizar este producto en las instalaciones del comprador
para los fines de investigación interna de este (que incluye los servicios de investigación prestados a terceros) y solo
conforme a la documentación de este producto, pero queda excluido de manera específica cualquier uso que (a)
requiriera derechos o una licencia por parte de Illumina sobre una PI de aplicaciones específicas, (b) constituya un nuevo
uso de un consumible utilizado previamente, (c) constituya el desmontaje, la ingeniería inversa, la compilación inversa o el
montaje inverso de este producto, (d) constituya la separación, la extracción o el aislamiento de los componentes de este
producto o de otros análisis no autorizados de este producto, (e) conceda acceso a los métodos de funcionamiento de
este producto o determine dichos métodos, (f) constituya el uso de consumibles o reactivos que no sean de Illumina con
el hardware de Illumina (no se aplica si las especificaciones o la documentación disponen lo contrario), o bien (g)
constituya la transferencia a un tercero, o la sublicencia, del software o cualquier software de terceros. Todo el software,
ya se proporcione por separado, se instale o se incorpore en un producto, se otorga en forma de licencia al comprador y
no se vende. Salvo que se estipule de manera expresa en esta sección, ningún derecho ni ninguna licencia de los derechos
de propiedad intelectual de Illumina se otorgan de manera expresa, implícita o por impedimento legal (doctrina de los
actos propios).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
iii
El comprador solo será responsable de determinar si el comprador posee todos los derechos de propiedad
intelectual necesarios para los usos previstos de este producto por parte del comprador, incluidos entre otros,
cualquier derecho de terceros o derechos en relación con la PI de aplicaciones específicas. Illumina no garantiza
que los usos previstos específicos del comprador no infrinjan los derechos de propiedad intelectual de un
tercero o de una PI de aplicaciones específicas.
3
Cumplimiento normativo. Este producto no se ha aprobado, autorizado ni se le ha otorgado licencia alguna por parte de
la Food and Drug Administration (FDA) de EE. UU. o de cualquier otra entidad regulatoria, ya sea extranjera o nacional,
para ningún uso previsto específico, bien para su uso en investigación, uso comercial, uso diagnóstico o de cualquier otro
tipo. Este producto contiene la etiqueta Para uso exclusivo en investigación. El comprador debe asegurarse de que cuenta
con todas las aprobaciones regulatorias pertinentes para los usos previstos de este producto por parte del comprador.
4
Usos no autorizados. El comprador acepta: (a) utilizar cada consumible solo una vez, y (b) utilizar solo consumibles o
reactivos de Illumina con el hardware de Illumina. Las limitaciones en (a) y (b) no se aplican si la documentación o las
especificaciones de este producto disponen lo contrario. El comprador acepta no involucrarse en ninguna de las
siguientes actividades, ni tampoco autoriza a ningún tercero a involucrarse en ninguna de las mismas: (i) desmontar,
llevar a cabo actos de ingeniería inversa, compilación inversa o montaje inverso del producto, (ii) separar, extraer o aislar
componentes de este producto, o bien someter a este producto o a sus componentes a cualquier análisis que no se haya
autorizado expresamente en la documentación de este producto, (iii) otorgar acceso a los métodos de funcionamiento de
este producto o intentar determinarlos, o bien (iv) transferir a un tercero, o conceder una sublicencia, en relación con
cualquier software o cualquier software de terceros. Además, el comprador acepta que el contenido y los métodos de
funcionamiento de este producto son propiedad de Illumina y que este producto contiene o incluye secretos de mercado
de Illumina. Las condiciones y restricciones que figuran en estos términos y condiciones se negocian como condiciones
de venta y, por tanto, controlan la venta de este producto, así como su uso por parte del comprador.
5
Limitación de responsabilidades. EN LA MEDIDA EN QUE LO PERMITA LA LEY, EN NINGÚN CASO SE
CONSIDERARÁ RESPONSABLE A ILLUMINA NI A SUS PROVEEDORES EN RELACIÓN CON EL
COMPRADOR O CUALQUIER TERCERO DE LOS COSTES DE GESTIÓN DE SUSTITUCIÓN DE
PRODUCTOS O SERVICIOS, DE LA PÉRDIDA DE BENEFICIOS, DATOS U OPERACIONES COMERCIALES,
NI DE NINGÚN DAÑO INDIRECTO, ESPECIAL, ACCIDENTAL, EJEMPLAR, CONSECUENTE O PUNITIVO DE
NINGÚN TIPO DERIVADO DE O RELACIONADO CON, ENTRE OTROS, LA VENTA DE ESTE PRODUCTO,
SU USO, EL CUMPLIMIENTO DE ILLUMINA DE LA PRESENTE NI DE CUALQUIERA DE ESTOS TÉRMINOS
Y CONDICIONES, YA SE DERIVEN O PROCEDAN DE CUALQUIER PRINCIPIO DE RESPONSABILIDAD
(BIEN POR CONTRATO, DELITO [INCLUIDA LA NEGLIGENCIA], RESPONSABILIDAD ESTRICTA O
CUALQUIER OTRO TIPO DE RESPONSABILIDAD).
6
LA RESPONSABILIDAD TOTAL Y ACUMULATIVA DE ILLUMINA CON RESPECTO AL COMPRADOR O
CUALQUIER TERCERO DERIVADA DE, O EN RELACIÓN CON, ESTOS TÉRMINOS Y CONDICIONES,
INCLUIDOS, ENTRE OTROS, ESTE PRODUCTO (INCLUIDO EL USO DEL MISMO) Y EL CUMPLIMIENTO
DE ILLUMINA CONFORME A LA PRESENTE, YA SEA POR CONTRATO, DELITO (INCLUIDA LA
NEGLIGENCIA), RESPONSABILIDAD ESTRICTA O CUALQUIER OTRO TIPO DE RESPONSABILIDAD, NO
SUPERARÁ EN NINGÚN CASO LA CANTIDAD PAGADA A ILLUMINA POR ESTE PRODUCTO.
7
Limitaciones sobre las garantías concedidas por Illumina. EN LA MEDIDA QUE LO PERMITA LA LEY Y
SUJETO A LA GARANTÍA EXPRESA DEL PRODUCTO QUE FIGURA EN ESTOS TÉRMINOS Y
CONDICIONES, ILLUMINA NO OTORGA NINGUNA GARANTÍA (Y RENUNCIA DE MANERA EXPRESA A
CUALQUIER GARANTÍA), YA SEA EXPRESA, IMPLÍCITA O LEGAL, EN RELACIÓN CON ESTE PRODUCTO,
INCLUIDAS ENTRE OTRAS, CUALQUIER GARANTÍA IMPLÍCITA DE COMERCIALIZACIÓN, IDONEIDAD
PARA UN PROPÓSITO PARTICULAR, DE NO INFRACCIÓN O DERIVADA DE UN RENDIMIENTO,
ACUERDO, USO O TRANSACCIÓN COMERCIAL. SIN LIMITAR LA GENERALIDAD DE LO DISPUESTO
iv
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
ANTERIORMENTE, ILLUMINA NO AFIRMA, REPRESENTA NI GARANTIZA DE NINGUNA MANERA LA
UTILIDAD DE ESTE PRODUCTO PARA LOS USOS PREVISTOS DEL COMPRADOR.
8
Garantía del producto. Todas las garantías son personales en relación con el comprador y no se pueden transferir ni
asignar a un tercero, incluido un afiliado del comprador. Todas las garantías son específicas de las instalaciones y no se
transfieren si el producto se traslada a otra instalación del comprador, a menos que Illumina efectúe dicho traslado.
a
Garantía de los consumibles. Illumina garantiza que los consumibles, que no sean consumibles personalizados,
cumplirán sus especificaciones hasta un período de (i) 3 meses a partir de la fecha de envío por parte de Illumina, y
(ii) cualquier fecha de caducidad o el final de su vida útil impresa previamente en dicho consumible por parte de
Illumina, pero en ningún caso será superior a un período de 12 meses a partir de la fecha de envío. En relación con
los consumibles personalizados (esto es, consumibles fabricados de acuerdo con las especificaciones o los diseños
elaborados por el comprador o que el comprador, o alguna entidad en su nombre, proporciona a Illumina), Illumina
solo garantiza que los consumibles personalizados se fabricarán y probarán de acuerdo con los procesos de control
de calidad y fabricación estándar de Illumina. Illumina no garantiza que los consumibles personalizados funcionen
de manera prevista por el comprador o para los usos previstos del comprador.
b
Garantía del hardware. Illumina garantiza que el hardware, siempre que no se trate de componentes actualizados,
cumplirá sus especificaciones durante un período de 12 meses tras la fecha de envío por parte de Illumina, a menos
que el hardware incluya la instalación ofrecida por Illumina, en cuyo caso el período de garantía comienza en la
fecha de instalación o 30 días después de la fecha de envío, lo que ocurra primero ("Garantía básica del hardware").
El término "componentes actualizados" hace referencia a los componentes, las modificaciones o las mejoras de
Illumina en el hardware que el comprador haya adquirido previamente. Illumina garantiza que los componentes
actualizados cumplirán sus especificaciones durante un período de 90 días a partir de la fecha de instalación de
dichos componentes actualizados. Los componentes actualizados no amplían el período de garantía del hardware a
menos que la actualización la haya llevado a cabo Illumina en las instalaciones de Illumina, en cuyo caso el hardware
actualizado enviado al comprador incorporará una garantía básica del hardware.
c
Exclusiones de la cobertura de la garantía. Las anteriores garantías no se aplican en la medida en que un
incumplimiento se deba a (i) un abuso, uso indebido, abandono, negligencia, accidente, almacenamiento inadecuado
o un uso contrario a las disposiciones de la documentación o las especificaciones, (ii) una manipulación, instalación,
mantenimiento o reparación indebidas (que no sean realizadas por el personal de Illumina), (iii) alteraciones no
autorizadas, (iv) sucesos de fuerza mayor, o bien (v) su uso con un producto de terceros no suministrado por
Illumina (a menos que la documentación o las especificaciones del producto dispongan de manera expresa que
dicho producto de tercero es para su uso con el producto).
d
Procedimiento para la cobertura de la garantía. Con el objeto de ser apto para cualquier servicio de reparación o
sustitución conforme a esta garantía, el comprador debe (i) ponerse en contacto con la mayor brevedad posible con
el departamento de asistencia de Illumina para informarle del incumplimiento, (ii) cooperar con Illumina en la
confirmación o el diagnóstico del incumplimiento y (iii) devolver este producto, con pago previo de los costes de
transporte a Illumina de acuerdo con las instrucciones de Illumina o, si se acuerda entre Illumina y el comprador,
conceder acceso a este producto al personal de reparación autorizado de Illumina con el objeto de confirmar el
incumplimiento y realizar las reparaciones pertinentes.
e
Único recurso legal conforme a la garantía. Según su criterio, Illumina reparará o sustituirá el producto no
conforme a las especificaciones que se confirme que está cubierto por esta garantía. Los consumibles reparados o
sustituidos ofrecen una garantía de 30 días. El hardware se puede reparar o sustituir por un hardware o componentes
funcionalmente equivalentes, reacondicionados o nuevos (solo si un componente del hardware no cumple las
especificaciones). Si el hardware se sustituye en su totalidad, el período de garantía correspondiente a la sustitución
es de 90 días a partir de la fecha de envío o el período restante de la garantía del hardware original, lo que sea más
breve. Si solo se repara o sustituye un componente, el período de garantía de dicho componente será de 90 días a
partir de la fecha de envío o el período restante de la garantía del hardware original, lo que finalice antes. Las
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
v
f
9
anteriores disposiciones establecen la única solución del comprador y las únicas obligaciones de Illumina conforme
a la garantía que se otorga por la presente.
Productos de terceros y garantía. Illumina no tiene ninguna obligación de garantía en relación con ningún producto
procedente de un tercero y que se suministre al comprador de acuerdo con los presentes términos y condiciones.
Los productos de terceros son aquellos que están etiquetados o se comercializan con el nombre de un tercero. La
garantía de los productos de terceros, si la hubiera, la proporciona el fabricante original. Mediante una solicitud por
escrito, Illumina intentará transferir dicha garantía al comprador.
Indemnización.
a
Indemnización por infracción por parte de Illumina. Conforme a estos términos y condiciones, incluidas entre
otras, las exclusiones de las obligaciones de indemnización de Illumina (sección 9[b] más adelante) y las
condiciones de obligación de indemnización (sección 9[d] a continuación), Illumina (i) defenderá, indemnizará y
eximirá al comprador frente a cualquier reclamación o demanda de terceros en la que se alegue que este producto, al
utilizarse con fines de investigación, de acuerdo con estos términos y condiciones y de acuerdo con la
documentación y las especificaciones de este producto, infringe los derechos de propiedad intelectual válidos y
ejecutables de un tercero, y (ii) pagará todas las liquidaciones derivadas, y todos los costes y juicios finales
(incluidos los honorarios razonables de los abogados) que se le imputen al comprador en relación con dicha
reclamación de infracción. Si este producto, o alguna de sus partes, pasa a ser, o según la opinión de Illumina puede
ser, el objeto de una reclamación por infracción, Illumina tendrá derecho, según su propio criterio, a (A) procurar al
comprador el derecho a continuar utilizando este producto, (B) modificar o sustituir este producto con una
sustitución no infractora sustancialmente equivalente, o bien (C) solicitar la devolución de este producto y finalizar
los derechos, la licencia y cualquier otro permiso otorgado al comprador en relación con este producto, así como a
reembolsar al comprador el valor depreciado (tal como se muestra en los registros oficiales del comprador) del
producto devuelto en el momento de dicha devolución, siempre que no se otorgue ningún tipo de reembolso para
consumibles utilizados o caducados. Esta sección establece la responsabilidad total de Illumina por cualquier
infracción de derechos de propiedad intelectual de terceros.
b
Exclusiones de obligaciones de indemnización por parte de Illumina. Illumina no tiene la obligación de
defender, indemnizar ni eximir al comprador frente a ninguna reclamación por infracción de Illumina en la medida
en que dicha infracción se deba a los siguientes casos: (i) el uso de este producto en una manera o para un propósito
que se encuentre fuera del ámbito de la finalidad de uso para investigación, (ii) el uso de este producto en una
manera que no sea conforme a sus especificaciones, su documentación, los derechos concedidos de manera expresa
al comprador conforme estos términos y condiciones, o cualquier infracción por parte del comprador de estos
términos y condiciones, (iii) el uso de este producto junto con cualquier otro producto, material o servicio no
prestados por Illumina, (iv) el uso de este producto para realizar un ensayo u otro proceso no proporcionado por
Illumina, o bien (v) el cumplimiento de las especificaciones o instrucciones por parte de Illumina para este producto
que ha proporcionado el comprador, o que se han proporcionado en su nombre (las condiciones de [i] a [v] se
denominan "reclamación excluida").
c
Indemnización por parte del comprador. El comprador defenderá, indemnizará y mantendrá indemnes a Illumina,
sus afiliados, sus colaboradores no afiliados y los socios de desarrollo que contribuyeron al desarrollo de este
producto, así como a sus directivos, directores, representantes y empleados correspondientes frente a cualquier
reclamación, responsabilidad, daño, multa, pena, demanda y pérdida de cualquier tipo, incluidas, a modo
enunciativo pero no taxativo, las reclamaciones por daños personales o muerte y la infracción de los derechos de
propiedad intelectual de terceros, que se deriven, estén relacionados o procedan de (i) una infracción por parte del
comprador de cualquiera de estos términos y condiciones, (ii) el uso del comprador de este producto fuera del
ámbito de su uso para investigación, (iii) cualquier uso de este producto que no sea conforme a las especificaciones
o la documentación de este documento, o bien (iv) cualquier reclamación excluida.
d
Condiciones para obligaciones de indemnización. Las obligaciones de indemnización de las partes estarán
condicionadas por las siguientes acciones de la parte que solicita la indemnización: (i) notificación inmediata a la otra
parte por escrito de dicha reclamación o demanda, (ii) concesión de autorización y control exclusivo a la otra parte
vi
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
e
sobre la defensa y arreglo de cualquier reclamación o demanda, (iii) no admisión de la infracción de ningún derecho
de propiedad intelectual sin el consentimiento previo por escrito de la otra parte, (iv) la no negociación de ningún
acuerdo o compromiso en relación con dicha reclamación o demanda sin el consentimiento previo por escrito de la
otra parte y (v) la prestación de asistencia razonable a la otra parte en la defensa de la reclamación o demanda,
siempre que la parte reembolse a la parte indemnizada los gastos razonables complementarios que se deriven de la
prestación de dicha asistencia.
Productos de terceros e indemnización. Illumina no tiene ninguna obligación de indemnización en relación con
ningún producto procedente de un tercero y que se suministre al comprador. Los productos de terceros son aquellos
que están etiquetados o se comercializan con el nombre de un tercero. Los derechos de indemnización del
comprador, si los hubiera, en relación con los productos de terceros serán conforme a la indemnización del
propietario de la patente o del fabricante original. Mediante una solicitud por escrito, Illumina intentará transferir
dicha indemnización, si la hubiera, al comprador.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
vii
viii
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Historial de revisiones
N.º de
referencia
Rev.
Fecha
15035786_ESP
D
Noviembre
de 2014
15035786_ESP
C
Abril de
2014
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Descripción del cambio
Actualización del flujo de trabajo del modo de experimento rápido
para incluir la compatibilidad con el análisis químico de HiSeq Rapid
v2.
Sustitución de lavado de mantenimiento con NaOH por el lavado de
mantenimiento con Tween 20 y ProClin 300 incluida la información
sobre la preparación, el almacenamiento y el desecho de la solución
de lavado de mantenimiento.
Actualización de las descripciones del lavado de mantenimiento y
del lavado con agua para especificar que se debe realizar un lavado
con agua tras cada experimento.
Adición de descripciones sobre el flujo de trabajo, los archivos de
entrada y salida, la solución de errores y la puntuación de calidad en
el capítulo Análisis en tiempo real.
Actualización del número de catálogo de VWR para las toallitas con
alcohol a 95041-714.
Actualización de la URL de las hojas de datos de seguridad (SDS) a
support.illumina.com/sds.html.
Actualización de descripciones del software de control de HiSeq
v2.2, que incluye el modo de rendimiento elevado de HiSeq v4, la
eliminación de la opción de carril de control, la agrupación de
puntuaciones Q predeterminada y la opción de utilización de
diferentes esquemas de indexación en cada carril.
Adición del flujo de trabajo de HiSeq v4 para su utilización con
química de HiSeq v4.
Adición del cálculo del volumen de cebado de SBS total.
ix
N.º de
referencia
Rev.
Fecha
15035786_ESP
B
Noviembre
de 2013
Eliminación de las instrucciones de preparación de reactivos. Para
obtener las instrucciones de preparación de reactivos, incluida la
información acerca de los diversos cebadores de secuenciación,
consulte la documentación del kit correspondiente.
Sustitución de los siguientes reactivos:
• RMR para RMX
15035786_ESP
A
Octubre de
2012
Publicación inicial.
x
Descripción del cambio
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Índice
Historial de revisiones
Índice
Capítulo 1 Descripción general
Introducción
Componentes de HiSeq 2500
Inicio de HiSeq 2500
Software de HiSeq 2500
Espacio disponible en el disco
Descripción de hoja de muestras
Consumibles para secuenciación
Recursos adicionales
Capítulo 2 Realización de un experimento de HiSeq v4
Introducción
Flujo de trabajo de secuenciación de HiSeq v4
Tipos de experimentos para química de HiSeq v4
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Capítulo 3 Realización de un experimento de TruSeq v3
Introducción
Flujo de trabajo de la secuenciación de TruSeq v3
Tipos de experimentos para química de TruSeq v3
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Preparación de reactivos para la Lectura 2
Carga de reactivos para la Lectura 2
Capítulo 4 Realización de un experimento rápido
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
ix
xi
1
2
3
7
9
15
16
17
19
21
22
23
24
25
30
41
47
49
50
52
54
55
61
71
77
79
80
83
xi
Introducción
Flujo de trabajo de la secuenciación de experimento rápido
Tipos de experimento para química de experimento rápido
Comprobación del volumen previa al experimento
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Capítulo 5 Procedimientos posteriores al experimento
Introducción
Descarga y cálculo del peso de los reactivos
Realización de un lavado de mantenimiento
Realización de un lavado con agua
Cambio de modos de secuenciación
Inactividad del instrumento
Apagado del instrumento
84
86
87
89
90
96
106
112
115
116
117
118
122
124
126
127
Capítulo 6 Análisis en tiempo real
129
Introducción
Descripción de análisis en tiempo real
Supervisión de criterios de medición de experimento
Flujo de trabajo del análisis en tiempo real
Archivos de salida de secuenciación
Estructura de carpetas de salida
Numeración de placas
Imágenes en miniatura
130
131
134
136
141
143
145
146
147
Capítulo 7 Solución de problemas
Introducción
Posibles problemas de configuración de experimentos
Escalonamiento de experimentos en la celda de flujo A y la celda de flujo B
Realización de una comprobación de fluídica
BaseSpace no está disponible
Detención y reanudación de un experimento
Pausa de un experimento
Rehibridación del cebador
148
149
151
152
153
154
158
160
Índice alfabético
163
Asistencia técnica
167
xii
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 1 Descripción general
Introducción
Componentes de HiSeq 2500
Inicio de HiSeq 2500
Software de HiSeq 2500
Espacio disponible en el disco
Descripción de hoja de muestras
Consumibles para secuenciación
Recursos adicionales
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
2
3
7
9
15
16
17
19
1
Capítulo 1
Descripción general
Descripción general
Introducción
El sistema HiSeq® combina la tecnología más avanzada con tecnología SBS probada para
establecer nuevos estándares de resultados, sencillez y rentabilidad.
HiSeq 2500 incluye las siguientes características:
} Adquisición de imágenes de las dos superficies: HiSeq 2500 utiliza un sistema de
epifluorescencia de cuatro cámaras con una tecnología de adquisición de imágenes
innovadora que permite la adquisición de imágenes de las dos superficies.
} Dobles celdas de flujo: HiSeq 2500 es un sistema de doble celda de flujo, que permite
la secuenciación simultánea de una celda de flujo o de dos celdas de flujo con
diferentes longitudes de lectura.
} Generación de grupos integrada en el instrumento: HiSeq 2500 ofrece la opción de un
modo de experimento rápido que incluye la generación de grupos integrada en el
instrumento.
} Refrigerador de reactivos de alta capacidad: El compartimento de reactivos es un
refrigerador de alta capacidad que alberga la cantidad de reactivos suficiente para todo
el experimento de secuenciación.
} Fluídica integrada para experimentos "paired-end": La fluídica integrada para
experimentos "paired-end" suministra reactivos del compartimento de reactivos a la
celda de flujo para la resíntesis de la Lectura 2 y para la secuenciación indexada.
} Opciones de control de la interfaz: La interfaz del software del instrumento
proporciona opciones para la configuración de un experimento y la utilización del
instrumento con el monitor táctil o el teclado integrado.
} Llamada de bases en tiempo real: El software del instrumento extrae las intensidades
de las imágenes y realiza la llamada de bases clasificada por calidad en el ordenador
del instrumento, lo que permite la supervisión de los criterios de medición de calidad y
ahorra tiempo en los posteriores análisis de datos.
Los análisis sucesivos de datos de secuenciación se pueden realizar con el software de
análisis de Illumina u otros proveedores en IlluminaCompute, en BaseSpace de
Illumina o en una infraestructura personalizada.
} Conectividad de BaseSpace: HiSeq 2500 incluye una opción para enviar datos de
estado y secuenciación del instrumento a la solución genómica en la nube BaseSpace
en tiempo real para simplificar el control de calidad y el análisis del instrumento.
2
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
El sistema HiSeq 2500 incluye el instrumento, el monitor, el ordenador de control del
instrumento y los accesorios, como el teclado, el ratón y el lector de códigos de barras.
El instrumento incluye cuatro compartimentos principales: el módulo óptico, el
compartimento de la celda de flujo, el compartimento de fluídica y el compartimento de
reactivos. El estado de funcionamiento del instrumento se indica en una barra de estado
luminosa.
Figura 1 Componentes externos
A
B
C
D
Módulo óptico: Contiene componentes ópticos que permiten la adquisición de
imágenes de las dos superficies de la celda de flujo, digitalizando A, C, G y T al mismo
tiempo mediante epifluorescencia. El haz láser de excitación pasa a través del objetivo,
que capta también la fluorescencia.
Compartimento de la celda de flujo y estación de carga de bibliotecas: Contiene la
platina de la celda de flujo controlada por vacío, que mantiene las celdas de flujo en su
sitio durante experimentos de secuenciación. Mediante el uso del modo de experimento
rápido, la estación de carga transfiere bibliotecas a la celda de flujo para la generación de
grupos integrada en el instrumento.
Compartimento de fluídica: Contiene bombas de fluídica que suministran reactivos a la
celda de flujo y, a continuación, al contenedor de residuos.
Barra de estado: Utiliza tres colores para indicar el estado del instrumento. El azul indica
que el instrumento está en funcionamiento, el naranja indica que el instrumento necesita
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
3
Componentes de HiSeq 2500
Componentes de HiSeq 2500
Descripción general
E
atención y el verde indica que el instrumento está listo para empezar el siguiente
experimento.
Compartimento de reactivos: Contiene gradillas de reactivos que contienen a su vez los
reactivos necesarios para los experimentos de secuenciación y soluciones de lavado para
el lavado del instrumento.
Compartimento de reactivos
El compartimento de reactivos es un refrigerador de reactivos de alta capacidad que
contiene tres gradillas de reactivos: dos para reactivos SBS y una para reactivos de
agrupación, indexación y "paired-end". Los mangos de los dispensadores bajan los
dispensadores y los introducen en las botellas de reactivo.
} Gradillas de reactivos SBS: Albergan botellas cónicas de 250 ml. La gradilla de
reactivos de la celda de flujo A se encuentra en la posición central y la gradilla de la
celda de flujo B se encuentra en la posición más a la derecha. Cada gradilla de
reactivos tiene posiciones numeradas que se corresponden con las conexiones en una
válvula selectora de reactivos interna.
} Gradilla de reactivos de agrupación, indexación y "paired-end": La gradilla de
reactivos, situada a la izquierda de las gradillas A y B, tiene dos filas de posiciones
numeradas que albergan tubos cónicos de 15 ml que contienen los reactivos "pairedend", de agrupación y de indexación. La fila izquierda es para la celda de flujo A,
mientras que la fila derecha es para la celda de flujo B.
} Refrigerador de reactivos: El refrigerador de reactivos aloja las gradillas de reactivos y
mantiene una temperatura interna de entre 2 °C y 8 °C.
4
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Componentes de HiSeq 2500
Figura 2 Compartimento de reactivos
A
B
C
D
Mangos del dispensador
Gradilla de reactivos para reactivos de agrupación, indexación y "paired-end"
Gradilla de reactivos para reactivos SBS de la celda de flujo A
Gradilla de reactivos para reactivos SBS de la celda de flujo B
Compartimento de la celda de flujo
El compartimento de la celda de flujo contiene la platina de la celda de flujo, las estaciones
térmicas, el sistema de vacío y las conexiones del sistema de fluídica para la celda de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
5
Descripción general
Figura 3 Platina de la celda de flujo con dos celdas de flujo
A
B
C
D
Celda de flujo A
Celda de flujo B
Palanca de la celda de flujo A
Palanca de la celda de flujo B
La celda de flujo a la izquierda es la celda de flujo A y la celda de flujo a la derecha es la
celda de flujo B.
Cada celda de flujo se encuentra en la platina de la celda de flujo, que entra y sale del
módulo óptico según indique el software de control. La platina de la celda de flujo debe
encontrarse en la posición más avanzada para abrir la puerta del compartimento de la
celda de flujo y cargar o extraer una celda de flujo.
La celda de flujo está colocada en el soporte de la celda de flujo con los orificios de entrada
y salida mirando hacia abajo, y fijada en su sitio mediante vacío bajo cada soporte de celda
de flujo. La palanca de la celda de flujo iluminada delante de cada soporte de la celda de
flujo controla el vacío. La palanca de la celda de flujo cambia a verde cuando la junta de
vacío está asegurada.
6
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Inicio de HiSeq 2500
Inicio de HiSeq 2500
1
Inicie el ordenador de control del instrumento.
2
Inicie sesión en el sistema operativo con el nombre de usuario y la contraseña
predeterminados.
• Nombre de usuario: sbsuser
• Contraseña: sbs123
Espere hasta que se haya cargado por completo. Si los valores predeterminados no
funcionan, pida al administrador de las instalaciones el nombre de usuario y la
contraseña específicos de su centro.
3
Coloque el interruptor de alimentación principal en la posición ON (Encendido). Al
mirar la parte delantera del instrumento, el interruptor de alimentación está situado en
el lado izquierdo.
4
Espere al menos un minuto a que los dispositivos del instrumento se hayan
configurado correctamente y a que se inicialice la unidad del instrumento llamada
DoNotEject. Se abre una ventana cuando se inicia la unidad. Cierre la ventana. Si la
ventana no se abre, utilice MyComputer para comprobar la unidad DoNotEject.
NOTA
No extraiga nunca la unidad flash DoNotEject ubicada dentro del chasis del instrumento ni
modifique los archivos dentro de dicha unidad. Esta unidad contiene archivos de
configuración del hardware y se inicia cada vez que el instrumento está encendido.
5
Para asegurarse de que queda espacio suficiente en el disco, archive en una ubicación
de red los datos de experimentos anteriores guardados en el ordenador.
6
Abra el Software de control de HiSeq (HCS) con el icono de acceso directo situado en el
escritorio del ordenador. El software de control tarda unos minutos en inicializarse.
Cuando se inicializa el software, se abre la pantalla Mode Select (Selección de modo) y
aparece el icono de inicialización
en la esquina inferior derecha de la pantalla.
Prácticas recomendadas del instrumento y el ordenador de control
} No encienda el ordenador mientras el instrumento está en funcionamiento. Encienda
siempre el ordenador antes de encender el instrumento.
} No apague nunca el instrumento mientras se esté ejecutando el software de control del
instrumento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
7
Descripción general
} Espere un minuto tras apagar el instrumento y antes de volver a encenderlo.
} Conecte los cables USB del instrumento, el monitor y el teclado en la parte posterior del
ordenador antes de encender el ordenador.
} Conecte el lector de códigos de barras y el ratón en los puertos USB de la parte
delantera del ordenador.
8
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Hay tres aplicaciones de software instaladas en el ordenador del instrumento:
} Software de control de HiSeq 2500: La interfaz de Software de control de HiSeq (HCS)
le guía por los pasos de configuración de un experimento de secuenciación. Durante el
experimento, el software de control opera el hardware del instrumento, controla la
fluídica, establece las temperaturas y proporciona un resumen visual de las
estadísticas de calidad.
} Software de análisis en tiempo real: Integrado con el software de control, el análisis en
tiempo real (RTA) realiza la llamada de bases y asigna una puntuación de calidad a
cada base de cada ciclo. Para obtener más información, consulte Análisis en tiempo real
en la página 129.
} Software del visor del análisis de secuenciación: El visor del análisis de secuenciación
(SAV) proporciona estadísticas de calidad detalladas.
Interfaz del software de control de HiSeq 2500
La pantalla Mode Select (Selección de modo) incluye opciones de modos de experimentos.
Los modos incluyen TruSeq v3, HiSeq v4 y el modo de experimento rápido. Seleccione un
modo de experimento para continuar con la pantalla Welcome (Bienvenida). Dado que solo
pueden realizarse de manera simultánea experimentos del mismo modo, el modo
seleccionado se aplica a las celdas de flujo A y B.
La pantalla Welcome (Bienvenida) se divide en dos paneles, uno para cada celda de flujo.
Puede configurar un experimento para la celda de flujo A y la celda de flujo B en paralelo
con ayuda de la interfaz del software. Los experimentos también se pueden configurar de
manera independiente con la interfaz del software.
La pantalla Welcome (Bienvenida) ofrece comandos para iniciar un experimento de
secuenciación, lavar el instrumento, ejecutar una comprobación del sistema y modificar los
modos. El modo actual aparece en la parte superior de la pantalla. Cuando el experimento
haya finalizado, el software le solicita lavar el instrumento. Tras el lavado, el software
vuelve a la pantalla Welcome (Bienvenida).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
9
Software de HiSeq 2500
Software de HiSeq 2500
Descripción general
Figura 4 Pantalla de bienvenida
A
B
C
D
Botón del menú de la pantalla de bienvenida
Panel de la interfaz para la celda de flujo A
Panel de la interfaz para la celda de flujo B
Indicadores de actividad
Comandos de la pantalla de bienvenida
Los comandos de la pantalla Welcome (Bienvenida) incluyen Sequence (Secuenciar), Wash
(Lavado), Check (Comprobar) y Mode Select (Selección de modo).
} Sequence (Secuenciar): Seleccione Sequence (Secuenciar) para comenzar los pasos de
configuración de un nuevo experimento de secuenciación o reanudar un experimento
existente.
Figura 5 Opciones del comando Sequence (Secuenciar)
• New Run (Nuevo experimento): El software le guiará por los pasos de
especificación de los parámetros del experimento, la carga y el cebado de los
reactivos, la carga de la celda de flujo, la comprobación de la fluídica y el inicio del
experimento.
10
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Figura 6 Opciones del comando Wash (Lavado)
• Water Wash (Lavado con agua): El lavado con agua inyecta agua en el sistema.
Este lavado debe realizarse tras un experimento de secuenciación o después de que
el instrumento haya estado inactivo durante 1 día o más. Consulte Realización de un
lavado con agua en la página 122.
• Maintenance Wash (Lavado de mantenimiento): El lavado de mantenimiento
inyecta Tween 20 y ProClin 300 en el sistema. Este lavado se debe realizar antes de
cambiar de modo o cada diez días y se recomienda tras un experimento de
rendimiento elevado. Consulte Realización de un lavado de mantenimiento en la
página 118.
} Check (Comprobar): Seleccione Check (Comprobar) para abrir la pantalla de
comprobación de la fluídica y confirmar un flujo adecuado durante la instalación del
instrumento o la solución de problemas relacionados con la fluídica.
} Mode Select (Selección de modo): Seleccione Mode Select (Selección de modo) para
cambiar los modos de experimento. Los modos de experimento incluyen TruSeq v3,
HiSeq v4 y el modo de experimento rápido.
Indicadores de actividad y del sensor
La pantalla de bienvenida contiene una serie de iconos en la esquina inferior derecha de la
pantalla que indican la actividad del instrumento y el estado de sus componentes
específicos en función de sensores del instrumento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
11
Software de HiSeq 2500
• Resume Run (Reanudar experimento): El software le guía por los pasos de
selección de la carpeta del experimento existente y de los parámetros de
configuración para la reanudación del experimento.
• Rehyb Run (Experimento de rehibridación): El software le guía a través de los
pasos para realizar una rehibridación de cebadores integrada en el instrumento.
Esta función solo está disponible en HiSeq v4 y en el modo de experimento rápido.
} Wash (Lavado): Seleccione Wash (Lavado) para iniciar un lavado con agua o de
mantenimiento en el instrumento.
Descripción general
Figura 7 Indicadores de actividad
De izquierda a derecha, los indicadores de actividad representan los motores X, Y y Z, la
funcionalidad de los componentes electrónicos, la cámara, el sistema de fluídica y las
funciones de procesamiento.
Figura 8 Indicadores del sensor
De izquierda a derecha, los indicadores del sensor representan la temperatura de la celda
de flujo A, la temperatura del refrigerador de reactivos, el estado de BaseSpace en la nube y
la temperatura de la celda de flujo B.
Iconos de estado
Los iconos de estado se encuentran ubicados en la esquina superior derecha de cada
pantalla y le notifican cualquier cambio en las condiciones, errores o advertencias durante
la configuración de un experimento o durante el experimento.
Icono de
estado
12
Nombre de estado
Descripción
Estado OK
Sin cambios. El sistema está normal.
Información
Solo información. No se requiere ninguna acción.
Atención
Información que puede requerir atención.
Advertencia
Las advertencias no detienen un experimento, pero pueden
requerir una acción antes de continuar.
Error
Los errores suelen detener un experimento y normalmente
requieren una acción antes de continuar con el experimento.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Menú de pantalla de bienvenida
El botón del menú de la pantalla Welcome (Bienvenida), ubicado en la esquina superior
izquierda de esta pantalla, proporciona las siguientes opciones:
} View (Ver): Proporciona las opciones para ver la interfaz en pantalla completa o en
una ventana, o permite minimizar la interfaz.
} Tools (Herramientas): Proporciona acceso a la ventana Options (Opciones) y Show Log
file (Mostrar archivo de registro):
• Options (Opciones): En la ventana Options (Opciones), defina los parámetros
predeterminados del experimento. Consulte Ventana del menú de opciones en la
página 13.
• Show Log File (Mostrar archivo de registro): Enumera los errores que se han
producido en el software de control. El archivo está vacío a menos que se produzca
un error. Utilice este archivo de registro para solucionar posibles problemas.
} Scanner (Lector): Activa el comando para inicializar manualmente el software.
} About (Acerca de): Proporciona información sobre el hardware del instrumento, las
versiones del software y la información de contacto del servicio de asistencia técnica.
} Exit (Salir): Cierra la interfaz del software de control.
Ventana del menú de opciones
La ventana del menú de opciones permite configurar parámetros para definir el modelo de
ID del experimento, las ubicaciones de carpeta predeterminadas, un servidor LIMS, el
nombre de usuario y la contraseña, así como la posibilidad de enviar información de
estado del instrumento a Illumina.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
13
Software de HiSeq 2500
Cuando se produce un cambio en las condiciones, el icono asociado parpadea para
alertarle. Para resolver la alerta, seleccione el icono para abrir el cuadro de diálogo de
estado, que contiene una descripción general del estado. Seleccione Acknowledge (Aceptar)
para aceptar el mensaje y Close (Cerrar) para cerrar el cuadro de diálogo.
Descripción general
Figura 9 Ventana del menú de opciones
} Run ID Template (Modelo de ID del experimento): La convención de nomenclatura
utilizada para generar los nombres de las carpetas del experimento.
} Default Output Folder (Carpeta de salida predeterminada): La carpeta de salida
predeterminada para los experimentos de la celda de flujo A. Esta ubicación se puede
cambiar para cada experimento.
} Default Output Folder2 (Carpeta de salida predeterminada 2): La carpeta de salida
predeterminada para los experimentos de la celda de flujo B. Esta opción se puede
cambiar para cada experimento.
} Default Temp Folder1 (Carpeta temporal predeterminada 1): La ubicación en la que se
pueden escribir los archivos temporales durante un experimento.
} Run Setup Folder (Carpeta de configuración del experimento): La ubicación de los
formularios de muestra de LIMS.
} LIMS Server (Servidor LIMS): El nombre del servidor para interacciones con LIMS de
Illumina compatibles.
} LIMS User Name (Nombre de usuario de LIMS): El nombre de usuario utilizado para
la autenticación a LIMS de Illumina.
} LIMS Password (Contraseña de LIMS): La contraseña utilizada para la autenticación a
LIMS de Illumina.
} Send instrument health information to Illumina to aid technical support (Enviar la
información de estado del sistema a Illumina para ayudar al servicio de asistencia
técnica): Permite al instrumento enviar información a BaseSpace para cada
experimento. Toda la información será confidencial. Illumina recomienda activar esta
función.
14
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
El ordenador del instrumento HiSeq cuenta con una capacidad de almacenamiento
superior a 2,7 TB por cada celda de flujo. Los datos de la celda de flujo A se almacenan en
la unidad D:, mientras que los datos de la celda de flujo B se almacenan en la unidad E:.
Al final de cada ciclo de adquisición de imágenes de cada carril, el software comprueba el
espacio disponible en disco de las unidades D: y E: locales. El software no comprueba la
ubicación de la red durante el experimento. Si el espacio en disco es inferior al umbral de
seguridad, el software pone en pausa el experimento y coloca la celda de flujo en un estado
seguro.
Si hay poco espacio en el disco, auméntelo para continuar el experimento. Cuando haya
suficiente espacio en el disco, se reanudará automáticamente el experimento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
15
Espacio disponible en el disco
Espacio disponible en el disco
Descripción general
Descripción de hoja de muestras
La hoja de muestras es un archivo generado por el usuario en formato *.csv que almacena
información sobre el experimento de secuenciación. Cuando comienza el experimento, el
software copia la hoja de muestras en la carpeta del experimento que posteriormente se
utiliza para su análisis.
Las hojas de muestras son opcionales salvo si utiliza BaseSpace para realizar análisis de
datos, ejecutar un experimento de indexación o prevé supervisar el rendimiento de la
demultiplexación con el visor del análisis de secuenciación. Utilice Illumina Experiment
Manager (IEM) para crear una hoja de muestras antes de comenzar el experimento.
16
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
La secuenciación en el HiSeq 2500 requiere los reactivos y demás consumibles incluidos en
los kits de Illumina. Los kits necesarios varían en función del tipo de experimento que
vaya a realizar.
} Para los experimentos de rendimiento elevado de HiSeq v4, consulte Consumibles para
secuenciación de HiSeq v4 en la página 22.
} Para los experimentos de rendimiento elevado de TruSeq v3, consulte Consumibles para
secuenciación de TruSeq v3 en la página 50.
} Para los experimentos rápidos, consulte Consumibles para secuenciación del experimento
rápido en la página 84.
Consumibles proporcionados por el usuario
Consumible
Tween 20, líquido viscoso, 100 ml
ProClin 300, 50 ml
Paño humedecido
en alcohol isopropílico al 70 %
o
Etanol al 70 %
Tubos de centrifugado, 250 ml
Tubos cónicos, 15 ml
Tubos cónicos, 50 ml,
autónomos (opcional)
Bidón, 6 litros mínimo
Guantes desechables sin polvo
Toallitas para laboratorio sin
pelusa
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Proveedor
Sigma-Aldrich, n.º de catálogo
P7949
Sigma-Aldrich, n.º de catálogo
48912-U
VWR, n.º de catálogo 95041-714
Proveedor de laboratorio general
Finalidad
Lavado de mantenimiento
del instrumento.
Lavado de mantenimiento
del instrumento.
Limpieza de la celda de flujo
y de la platina de la celda de
flujo.
Corning, n.º de catálogo 430776
Lavado de mantenimiento y
con agua del instrumento.
Corning, n.º de catálogo 430052
Recogida y medición de
volúmenes de residuos.
Lavado de mantenimiento y
con agua del instrumento.
Corning, n.º de catálogo 430921
Almacenamiento de celdas
de flujo.
Proveedor de laboratorio general Solución de lavado de
mantenimiento.
Proveedor de laboratorio general Uso general.
VWR, n.º de catálogo 21905-026
Limpieza del soporte de la
celda de flujo.
17
Consumibles para secuenciación
Consumibles para secuenciación
Descripción general
Consumible
Papel para lentes, 4 × 6 pulg.
Puntas de pipeta, 200 µl
Puntas de pipeta, 1000 µl
Pinzas de plástico con punta
cuadrada
Agua de laboratorio, 18 MOhm
Proveedor
Finalidad
VWR, n.º de catálogo 52846-001
Limpieza de la celda de flujo.
Proveedor de laboratorio general División de los volúmenes
del kit de reactivos.
Proveedor de laboratorio general División de los volúmenes
del kit de reactivos.
McMaster-Carr, n.º de
Eliminación de las juntas de
catálogo 7003A22
celda de flujo.
Millipore
Gradilla de reactivos SBS,
posición 2.
Lavado del instrumento.
Tubos de microcentrífuga para el modo de experimento rápido
Consumible
Tubo de microcentrífuga,
1,5 ml
Tubo de microcentrífuga,
1,7 ml
18
Proveedor
VWR, n.º de catálogo 20170-038, n.º de catálogo 20170-650 o n.º de
catálogo 89000-028
Axygen, n.º de catálogo MCT-150-C
VWR, n.º de catálogo 20170-575
Axygen, n.º de catálogo MCT-175-C
Sorenson BioScience, n.º de catálogo 16070
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Puede descargar la siguiente documentación en el sitio web de Illumina.
Recurso
Descripción
Guía de preparación del centro de
HiSeq 2500, 1500 y 2000 (n.º de
referencia 15006407_ESP)
Proporciona especificaciones para el espacio del laboratorio,
los requisitos eléctricos y las cuestiones medioambientales.
Guía de cumplimiento y seguridad
de HiSeq (n.º de referencia
15012614)
Proporciona información sobre el etiquetado del instrumento,
las certificaciones de conformidad y las cuestiones de
seguridad.
HiSeq Cluster Kit v4 Reagent
Prep Guide (Guía de preparación
de reactivos de HiSeq Cluster Kit
v4), n.º de referencia 15050104
Proporciona una descripción del contenido del kit de
generación de grupos e instrucciones para preparar los
consumibles antes de un experimento de secuenciación.
HiSeq Rapid Cluster Kit v2
Reagent Prep Guide (Guía de
preparación de reactivos de HiSeq
Rapid Cluster Kit v2), n.º de
referencia 15059131
Proporciona una descripción del contenido del kit de grupos
rápido e instrucciones para preparar los consumibles antes de
un experimento de secuenciación rápido.
HiSeq SBS Kit v4 Reagent Prep
Guide (Guía de preparación de
reactivos de HiSeq SBS Kit v4),
n.º de referencia 15050108
Proporciona una descripción del contenido del kit de SBS e
instrucciones para preparar los consumibles antes de un
experimento de secuenciación.
HiSeq Rapid SBS Kit v2 Reagent
Prep Guide (Guía de preparación
de reactivos de HiSeq Rapid
SBS Kit v2), n.º de referencia
15058772
Proporciona una descripción del contenido del kit de SBS
rápido e instrucciones para preparar los consumibles antes de
un experimento de secuenciación rápido.
Desnaturalización y dilución de
bibliotecas para HiSeq y GAIIx
(n.º de referencia 15050107)
Proporciona instrucciones para la desnaturalización y dilución
de bibliotecas preparadas para un experimento de
secuenciación, y la preparación de un control PhiX. Este paso
se aplica a la mayoría de los tipos de bibliotecas.
Visite la página de asistencia de HiSeq 2500 en el sitio web de Illumina para acceder a la
documentación, las descargas de software, la formación en línea y las preguntas frecuentes.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
19
Recursos adicionales
Recursos adicionales
20
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 2 Realización de un experimento de HiSeq v4
Introducción
Flujo de trabajo de secuenciación de HiSeq v4
Tipos de experimentos para química de HiSeq v4
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Capítulo 2
Realización de un
experimento de HiSeq v4
22
23
24
25
30
41
47
21
Realización de un experimento de HiSeq v4
Introducción
Para realizar un experimento de HiSeq v4 en el HiSeq 2500, prepare todos los reactivos del
experimento y, a continuación, el software le solicitará que configure el experimento. Los
pasos para la configuración del experimento incluyen la introducción de los parámetros
del experimento, la carga y el cebado de reactivos, la carga de la celda de flujo y la
realización de una comprobación de fluídica.
Visite la página de especificaciones de HiSeq 2500 en el sitio web de Illumina para obtener
más información acerca de la duración y otras especificaciones de rendimiento.
Consumibles para secuenciación de HiSeq v4
Nombre del kit
HiSeq v4
Descripción
HiSeq SBS Kit v4
Contiene reactivos SBS que se utilizan en el HiSeq 2500.
HiSeq PE Cluster Kit v4
o
HiSeq SR Cluster Kit v4
Contiene reactivos de agrupación que se utilizan en el cBot y
reactivos de indexación que se utilizan en el HiSeq 2500.
La versión PE del kit de generación de grupos incluye reactivos
"paired-end" que se utilizan en el HiSeq 2500.
Cada kit de generación de grupos incluye un kit de accesorios
que contiene repuestos de la junta de celda de flujo y tapas de
embudo para las botellas de reactivo SBS.
Pasos de preparación de los reactivos
Antes de configurar el experimento, prepare los reactivos SBS, los reactivos de indexación y
los reactivos "paired-end" si procede.
} Para la preparación de los reactivos SBS, consulte la HiSeq SBS Kit v4 Reference Guide
(Guía de referencia de HiSeq SBS Kit v4), n.º de referencia 15050108.
} Para la preparación de reactivos "paired-end" y de indexación, consulte la HiSeq Cluster
Kit v4 Reference Guide (Guía de referencia de HiSeq Cluster Kit v4), n.º de referencia
15050104.
Antes de configurar el experimento, prepare todos los reactivos. Cuando se lo solicite el
software de control, cargue todos los reactivos. Si utiliza la química de HiSeq v4, no tendrá
que volver al instrumento durante el experimento para cargar los reactivos.
22
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Prepare los reactivos para el experimento. Tras su preparación, pese los
reactivos.
Para obtener información sobre la preparación de los reactivos, consulte
Pasos de preparación de los reactivos en la página 22.
Con el software de control, introduzca los parámetros del experimento.
Cuando se le solicite, cargue todos los reactivos para el experimento:
• Cargue los reactivos SBS para la Lectura 1 y la Lectura 2.
• Para los experimentos indexados, cargue los reactivos de indexación.
• Para los experimentos "paired-end", cargue los reactivos "paired-end".
Con una celda de flujo usada en el instrumento, confirme el flujo correcto.
Cebe los reactivos SBS y mida los residuos de cebado.
Cargue la celda de flujo agrupada para secuenciación. Confirme el flujo
correcto.
Inicie el experimento de secuenciación.
[Opcional] Después del ciclo 1, revise el informe de primera base y,
después, continúe con la Lectura 1.
El experimento continúa como se ha especificado en los parámetros del
experimento.
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos.
Lave el instrumento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
23
Flujo de trabajo de secuenciación de HiSeq v4
Flujo de trabajo de secuenciación de HiSeq v4
Realización de un experimento de HiSeq v4
Tipos de experimentos para química de HiSeq v4
En la siguiente tabla se muestran los tipos de experimentos de secuenciación y el número
de ciclos posibles para cada lectura cuando se utiliza la química de HiSeq v4. Utilice esta
información a modo de referencia a la hora de configurar el experimento.
Tipo de experimento
Lectura individual,
no indexada
Lectura individual,
un solo índice
Ciclos
de
Lectura 1
≤ 126
≤ 126
Ciclos de
lectura
Ciclos de
lectura
Ciclos
de índice 1 (i7)
--
de índice 2 (i5)
--
de
Lectura 2
--
Total
de
--
--
8
--
≤ 133 ¹
≤ 134 ²
≤ 142
ciclos
≤ 126
Lectura individual,
doble índice
"Paired-end",
no indexada
"Paired-end",
un solo índice
≤ 126
6o7¹
8²
8
≤ 126
--
--
≤ 126
≤ 252
≤ 126
--
≤ 126
"Paired-end",
doble índice
≤ 126
7¹
8²
8
7+8³
≤ 126
≤ 259 ¹
≤ 260 ²
≤ 275
¹ Número de ciclos para bibliotecas de un solo índice.
² Número de ciclos para bibliotecas de doble índice.
³ La lectura de índice 2 de un experimento de doble índice "paired-end" incluye siete ciclos de solo
química adicionales.
24
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
En la pantalla de bienvenida, seleccione Sequence | New Run (Secuenciar | Nuevo
experimento).
La interfaz del software de control le guía por los pasos de configuración del experimento.
Los pasos de configuración del experimento se organizan en tres pestañas: Run
Configuration (Configuración del experimento), Pre-Run Setup (Configuración previa al
experimento) e Initiate Run (Iniciar experimento).
} Las pantallas de configuración del experimento contienen listas desplegables, casillas
de verificación o campos de texto para los parámetros del experimento. Utilice el lector
de códigos de barras portátil para leer el ID del kit de reactivos o de la celda de flujo, o
introduzca el ID con ayuda del teclado táctil. El icono de teclado
se encuentra a la
derecha de los campos de texto.
} Seleccione Next (Siguiente) para pasar a la siguiente pantalla o seleccione Back (Atrás)
para volver a la pantalla anterior.
} En cualquier momento durante los pasos de configuración del experimento, puede
seleccionar Cancel (Cancelar) para abandonar la configuración del experimento y
volver a la pantalla Welcome (Bienvenida).
Pantalla de integración
La pantalla de integración permite conectar el experimento a BaseSpace.
Para conectarlo a BaseSpace, realice lo siguiente:
1
Seleccione BaseSpace.
2
Seleccione una de las siguientes opciones de BaseSpace:
• Storage and Analysis (Almacenamiento y análisis): Envía los datos del
experimento a BaseSpace para la supervisión remota y el análisis de los datos. Con
esta opción, se precisa una hoja de muestras.
• Run Monitoring Only (Solo supervisión del experimento): Envía solamente los
archivos InterOp a BaseSpace, lo que le permite supervisar el experimento de
forma remota.
3
Inicie sesión en BaseSpace con su correo electrónico y la contraseña de la cuenta de
MyIllumina.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
25
Introducción de parámetros del experimento
Introducción de parámetros del experimento
Realización de un experimento de HiSeq v4
Para continuar sin conexión a BaseSpace, realice lo siguiente:
1
Seleccione None (Ninguno).
2
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de almacenamiento
1
Seleccione la casilla de verificación Save to an output folder (Guardar en una carpeta
de salida) y seleccione Browse (Examinar) para ir a la ubicación de red deseada. Si el
experimento está conectado a BaseSpace para almacenamiento y análisis, este campo
es opcional.
2
Seleccione Zip BCL files (Comprimir archivos BCL) para reducir el espacio de
almacenamiento necesario. Si el experimento está conectado a BaseSpace, la opción Zip
BCL files (Comprimir archivos BCL) está seleccionada de forma predeterminada.
NOTA
El parámetro Bin Q-Scores (Agrupar puntuaciones Q) está activado de forma
predeterminada para reducir el espacio de almacenamiento necesario. Este parámetro
agrupa las puntuaciones de calidad de un rango de valores más amplio sin repercutir en la
precisión ni el rendimiento.
3
Seleccione una de las siguientes opciones de Save Auxiliary Files (Guardar archivos
auxiliares):
• Save All Thumbnails (Guardar todas las vistas en miniatura): Guarda todas las
imágenes en miniatura. Una imagen en miniatura es una muestra de imágenes de
muchas placas en cada columna de placas, o sector, combinada en una imagen en
miniatura.
• Save Tile Thumbnails (Guardar vistas en miniatura de placa): Guarda las vistas
en miniatura de las placas. Las vistas en miniatura de las placas representan una
única placa en lugar de una muestra de placas en un sector.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración de la celda de flujo
La pantalla Flow Cell Setup (Configuración de la celda de flujo) registra información acerca
de la celda de flujo utilizada en el experimento. Todos los campos son obligatorios.
1
26
Realice la lectura del código de barras de la celda de flujo o introduzca el ID (número
del código de barras) de la celda de flujo que desea secuenciar. El ID de la celda de
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
2
Confirme que el tipo de la celda de flujo sea la celda de flujo de HiSeq v4. El tipo de
celda de flujo se selecciona de forma automática en función del ID de la celda de flujo.
3
Introduzca un nombre para el experimento. El nombre del experimento aparece en
cada pantalla para ayudar a identificar el experimento en curso.
4
Introduzca un nombre de usuario.
5
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración avanzada
1
[Opcional] Seleccione la casilla de verificación Confirm First Base (Confirmar primera
base).
Se genera un informe de primera base automáticamente para cada experimento. Al
seleccionar esta opción se abre el informe de primera base antes de continuar con el
experimento.
2
[Opcional] En las casillas de verificación de Align to PhiX (Alinear a PhiX), anule la
selección de la casilla de verificación de los carriles que no contienen PhiX.
De forma predeterminada, se seleccionan todos los carriles para la alineación mediante
el software de análisis en tiempo real.
También puede optar por seleccionar los carriles de la imagen de la celda de flujo para
añadir o eliminar carriles para la alineación de PhiX.
NOTA
No se requiere ningún carril de control específico con HCS v2.2 ni RTA v1.18. Por lo tanto, la
opción para asignar un carril de control no está disponible con esta configuración de
software.
3
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de fórmulas
1
Seleccione de las siguientes opciones de Index Type (Tipo de índice):
• No Index (No indexado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) no indexado.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
27
Introducción de parámetros del experimento
flujo se utiliza para determinar el tipo de celda de flujo y la compatibilidad de los
reactivos.
Realización de un experimento de HiSeq v4
• Single Index (Un solo índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read"
(de lectura individual) con una lectura de indexación.
• Dual Index (Doble índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con dos lecturas de indexación.
• Custom (Personalizado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con un número de ciclos personalizado de lecturas del índice.
2
Si especifica la opción Dual Index (Doble índice) o Custom (Personalizado), seleccione
un formato de celda de flujo: bien Single Read (Lectura única) o bien Paired End.
3
Introduzca el número de ciclos para la Lectura 1 y la Lectura 2, según sea necesario.
NOTA
El número de ciclos realizados en una lectura es de un ciclo más que el número de ciclos
analizados. Por ejemplo, para realizar 125 ciclos para la Lectura 1, introduzca 126.
Para la opción de indexación Custom (Personalizado), introduzca el número de ciclos
para las lecturas del índice. Las longitudes de lectura no tienen por qué ser idénticas.
4
Confirme los siguientes parámetros de química predeterminados. Estos campos se
completan automáticamente en función de la opción de tipo de índice seleccionada.
a SBS: HiSeq SBS Kit v4
b Index (Índice): HiSeq v4 Single Index (Un solo índice de HiSeq v4) o HiSeq v4
Dual Index (Doble índice de HiSeq v4)
c PE turnaround (Respuesta PE): HiSeq PE Cluster Kit v4
5
[Opcional] Seleccione la casilla de verificación Use Existing Recipe (Usar fórmula
existente) para utilizar una fórmula personalizada. También puede dejar que el
software cree la fórmula a partir de los parámetros del experimento introducidos.
Pantalla de hoja de muestras
Las hojas de muestras son opcionales, a menos que utilice BaseSpace para realizar análisis
de datos o ejecutar un experimento indexado.
1
Seleccione Browse (Examinar) para navegar hasta la ubicación de la hoja de muestras.
2
Seleccione Next (Siguiente).
NOTA
El software de control de HiSeq v2.2 permite un esquema de indexación diferente en cada
carril.
28
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
La pantalla Reagents (Reactivos) registra información sobre los kits de reactivos utilizados
para el experimento. El ID del kit de reactivos (el número de código de barras comienza por
RGT) se utiliza para determinar el tipo del kit de reactivos y la compatibilidad con los
modos de experimento.
1
Realice una lectura o introduzca el ID del kit de reactivos SBS.
2
En el caso de los experimentos "paired-end", lea o introduzca el ID del kit de reactivos
del kit de generación de grupos "paired-end".
3
Seleccione el kit de reactivos SBS para el experimento:
• Seleccione 250 Cycles (250 ciclos) para un kit de 250 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 275 de forma predeterminada.
• Seleccione 50 Cycles (50 ciclos) para un kit de 50 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 74 de forma predeterminada.
• Seleccione Custom (Personalizar) para un kit parcial o varios kits de 50 ciclos. En
el campo Cycles Remaining (Ciclos restantes), introduzca el número de ciclos SBS
que se espera que duren los reactivos.
NOTA
En el caso de los kits parciales, el software cuenta el número de ciclos introducidos.
Cuando los ciclos están en un nivel bajo, el software le solicita cargar reactivos nuevos.
4
Seleccione Prime SBS Reagents (Cebar reactivos SBS) para cebar los reactivos antes de
comenzar un experimento. Cebe siempre los reactivos antes de cargar una nueva celda
de flujo.
5
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de revisión
1
Revise los parámetros del experimento en la pantalla Review (Revisión).
2
Seleccione Next (Siguiente) para continuar o seleccione Back (Atrás) para modificar los
parámetros.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
29
Introducción de parámetros del experimento
Pantalla de reactivos
Realización de un experimento de HiSeq v4
Carga y cebado de reactivos
Tras introducir los parámetros del experimento, cargue los reactivos SBS, "paired-end" y de
indexación para el experimento. A continuación, cebe los reactivos con el sistema de
fluídica. El software le guía a través de estos pasos mediante una serie de pantallas en la
pestaña Pre-Run Setup (Configuración previa al experimento).
Consumibles proporcionados por Illumina
} 8 tapas de embudo
Consumibles proporcionados por el usuario
} Botella de 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
} Tubos cónicos de 15 ml (Corning, n.º de catálogo 430052)
} Agua de laboratorio
NOTA
Para preparar el enjuague posterior al experimento al final del experimento de secuenciación,
cargue 25 ml de PW1 o agua de laboratorio en la posición 2.
El enjuague posterior al experimento no sustituye al lavado del instrumento posterior al
experimento.
Carga de reactivos SBS
1
Invierta cada botella varias veces para asegurarse de que los reactivos se mezclan bien.
2
Retire la tapa de cada botella de reactivo y sustitúyala por una tapa de embudo.
PRECAUCIÓN
Después de manipular la botella de CRM, asegúrese de desechar sus guantes y sustituirlos
por un par nuevo.
3
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
NOTA
Pesar los reactivos antes y después de un experimento de secuenciación sirve para confirmar
la administración correcta de los reactivos.
30
4
Abra la puerta del compartimento de reactivos.
5
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos de secuenciación con el siguiente
movimiento:
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo superior del canal.
Asegúrese de que el mango del dispensador se encuentre colocado de forma segura
en la ranura.
6
Deslice la gradilla de reactivos para extraerla del compartimento de reactivos.
7
Coloque cada una de las botellas de reactivo en la gradilla, en la posición numerada
correspondiente. Asegúrese de que el extremo cónico de la botella esté apoyado en la
muesca de la base de la gradilla.
Tabla 1 Posiciones de los reactivos
Posición Reactivo
1
2
3
4
5
6
7
8
IRM
PW1
USM
Tampón de SBS 1 (SB1)
Tampón de SBS 2 (SB2)
Tampón de SBS 2 (SB2)
CRM
Tampón de SBS 3 (SB3)
Descripción
Reactivo de mezcla maestra para incorporación
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
Mezcla de lectura universal
Tampón de alto contenido en sal
Tampón de lavado de incorporación
Tampón de lavado de incorporación
Mezcla de reactivo para clivaje
Tampón de clivaje
8
Añada 25 ml de PW1 o agua de laboratorio a la botella de la posición 2.
9
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
10 Baje los dispensadores e introdúzcalos en las botellas de reactivos de secuenciación
como se indica a continuación:
a Tire del mango del dispensador hacia usted y, a continuación, bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en las tapas de embudo.
c Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo inferior del canal.
11 Seleccione la casilla de verificación PW1 (25 ml) loaded (PW1 [25 ml] cargada).
Carga de reactivos de indexación
1
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
31
Carga y cebado de reactivos
a
b
Realización de un experimento de HiSeq v4
2
Asegúrese de que la gradilla "paired-end" no se esté utilizando en la celda de flujo
contigua. Los pasos que utilizan la gradilla "paired-end" incluyen la resíntesis de la
Lectura 2, la preparación de la lectura del Índice 1 (i7) y la preparación de la lectura
del Índice 2 (i5).
3
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos "paired-end" con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
b Suelte el mango en la ranura del extremo superior del canal. Asegúrese de que el
mango se encuentra colocado de forma segura en la ranura.
4
Deslice la gradilla de reactivos hacia el exterior del compartimento de reactivos con el
mango de la gradilla.
5
Retire las tapas de todos los tubos de reactivos y coloque el tubo en la gradilla en la
posición numerada asociada o el color de la etiqueta correspondiente.
Tabla 2 Celdas de flujo de lectura individual
Posición
Reactivo
Descripción
15
16
17
FDR
HP9*
HP12
Reactivo de desnaturalización rápida (contiene formamida)
Cebador para secuenciación del índice i5
Cebador de secuenciación del índice i7
* Se requiere HP9 solamente para experimentos de doble índice. Si no se utiliza HP9, cargue un tubo
cónico de 15 ml con 10 ml de agua de laboratorio en la posición 16.
Tabla 3 Celdas de flujo "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
10
15
17
FRM *
FDR
HP12
Mezcla para resíntesis rápida
Reactivo de desnaturalización rápida (contiene formamida)
Cebador de secuenciación del índice i7
* Prepare el FMR en la posición 10 para experimentos de doble índice en una celda de flujo "paired-end".
Se debe colocar FRM en la posición 10 para todos los experimentos "paired-end" independientemente
de las opciones de indexación.
32
6
Si está realizando un experimento "single-read" (de lectura individual), continúe con
los siguientes pasos para devolver la gradilla al compartimento de reactivos. De lo
contrario, continúe con la carga de los reactivos "paired-end".
7
Coloque tubos cónicos de 15 ml con 10 ml de agua de laboratorio en posiciones que no
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
8
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
9
Si va a realizar un experimento "single-read" (de lectura individual), baje los
dispensadores e introdúzcalos en los tubos de reactivos "paired-end" de la siguiente
manera:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en los tubos.
c Suelte el mango en la ranura del extremo inferior del canal.
10 Seleccione Next (Siguiente).
Carga de reactivos "paired-end"
1
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
2
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos "paired-end" con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
b Suelte el mango en la ranura del extremo superior del canal. Asegúrese de que el
mango se encuentra colocado de forma segura en la ranura.
3
Deslice la gradilla de reactivos hacia el exterior del compartimento de reactivos con el
mango de la gradilla.
4
Retire las tapas de todos los tubos de reactivos y coloque el tubo en la gradilla en la
posición numerada asociada o el color de la etiqueta correspondiente.
Tabla 4 Celdas de flujo "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
10
11
13
14
15
16
FRM *
FLM2
AMS
FPM
FDR *
HP11
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Mezcla para resíntesis rápida
Mezcla para linealización 2
Mezcla para amplificación rápida
Premezcla de amplificación rápida
Reactivo de desnaturalización rápida (contiene formamida)
Cebador de secuenciación de la Lectura 2
33
Carga y cebado de reactivos
se estén utilizando de la gradilla "paired-end".
Realización de un experimento de HiSeq v4
* Si ha cargado reactivos de indexado para un experimento de un solo índice, FDR ya se encuentra
cargada en la posición 10. Si ha cargado los reactivos de indexado para un experimento de doble
índice, FRM y FDR ya se encuentran cargadas en las posiciones 10 y 15, respectivamente.
5
Coloque tubos cónicos de 15 ml con 10 ml de agua de laboratorio en posiciones que no
se estén utilizando de la gradilla "paired-end".
6
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
7
Baje los dispensadores e introdúzcalos en los tubos de reactivos "paired-end" del
siguiente modo:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en los tubos.
c Suelte el mango en la ranura del extremo inferior del canal.
8
Seleccione Next (Siguiente).
Cebado de reactivos
Entre los pasos para cebar reactivos se incluyen los siguientes: limpieza del soporte de la
celda de flujo, carga de una celda de flujo para el cebado, confirmación de flujo correcto e
inicio del cebado.
Limpieza del soporte de la celda de flujo
1
Abra la puerta del compartimento de la celda de flujo.
PRECAUCIÓN
No coloque líquidos sobre la puerta del compartimento de la celda de flujo o en la platina de
la celda de flujo cuando la puerta esté abierta. Los derrames en esta zona pueden dañar el
instrumento.
2
34
Compruebe que la palanca de la celda de flujo está en posición OFF (Desactivada).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
3
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
4
En caso de presencia de la celda de flujo de un experimento anterior, retírela y
resérvela en un tubo de tampón de almacenamiento o agua de laboratorio para evitar
que se seque. Se puede utilizar para confirmar un flujo adecuado antes de cargar la
celda de flujo agrupada.
5
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
6
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
Figura 11 Ubicaciones de los orificios de vacío
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
35
Carga y cebado de reactivos
Figura 10 Palanca de la celda de flujo en posición 0
Realización de un experimento de HiSeq v4
Carga de una celda de flujo para el cebado
En la pantalla Load Prime Flow Cell (Cargar celda de flujo para el cebado), cargue la celda
de flujo usada para el cebado. Tras cargar la celda de flujo usada, compruebe que la
función de vacío esté activada.
NOTA
Illumina recomienda utilizar la celda de flujo de un experimento anterior para el cebado de
reactivos en un experimento posterior o para un lavado posterior a un experimento.
1
Enjuague la celda de flujo usada con agua de laboratorio. Seque la celda de flujo con
una toallita para limpiar lentes o una toallita sin pelusa.
2
Limpie la celda de flujo con paños humedecidos en alcohol y una toallita para limpiar
lentes.
NOTA
No extraiga ni sustituya las juntas de la celda de flujo durante este paso.
3
Coloque la celda de flujo usada en el soporte de la celda de flujo con los puertos de
entrada y salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que
la flecha del extremo izquierdo de la celda de flujo, que indica la dirección del flujo,
apunta hacia el instrumento.
4
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
36
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
A
B
5
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1, lo que activará el
vacío y fijará la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo
parpadee emitiendo una luz verde, significa que el vacío está activado. Si la palanca
no muestra luz verde, consulte Posibles problemas de configuración de experimentos en la
página 149.
Figura 13 Palanca de la celda de flujo en posición 1
6
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2 (extremo derecho). Cuando el color de la palanca de la
celda de flujo sea verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está
lista para usarse.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
37
Carga y cebado de reactivos
Figura 12 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
Realización de un experimento de HiSeq v4
Figura 14 Palanca de la celda de flujo en posición 2
7
Asegúrese de marcar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) en la
pantalla de carga de la celda de flujo para el cebado y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
Confirmación de flujo correcto
Un flujo correcto confirma que la celda de flujo y las juntas están bien instaladas y el
distribuidor está acoplado.
1
Seleccione la solución 2 (agua de laboratorio) de la lista desplegable.
PRECAUCIÓN
Utilice agua para confirmar que el flujo es correcto solo en una celda de flujo usada. No use
nunca agua para confirmar que el flujo es correcto en una celda de flujo agrupada.
38
2
Confirme los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 125
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 250
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Seleccione Pump (Dispensar).
4
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
Si detecta una presencia excesiva de burbujas, compruebe si las juntas están
obstruidas, reduzca la velocidad de aspiración a 100 y bombee otros 125 µl de agua a
la celda de flujo. Si el problema persiste, retire la celda de flujo, repita los pasos de
limpieza y vuelva a cargarla.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Retire los ocho tubos de residuos de la celda de flujo apropiada del contenedor de
residuos.
No incluya los ocho tubos de la celda de flujo opuesta ni el tubo de la bomba de
condensación.
Figura 15 Colocación de los tubos
A
B
Tubos de residuos de la celda de flujo para las posiciones de los reactivos 1–8
Tubo de la bomba de condensación (no retirar)
2
Coloque los tubos de residuos en un tubo de 15 ml vacío, es decir, un tubo de residuos
por cada tubo de 15 ml. El residuo de cebado se recoge y se mide después del paso de
cebado.
3
Seleccione Start Prime (Iniciar cebado). Se abre la pantalla de cebado y se inicia el paso
de cebado. Supervise el progreso del cebado en la pantalla de cebado.
4
Al finalizar el paso de cebado, mida el residuo obtenido y compruebe que el volumen
en cada tubo sea de 1,75 ml para un total de 14 ml. El total se calcula de la siguiente
forma:
• 250 µl para cada posición SBS salvo la posición 2 (250 x 7 = 1,75 ml)
• 1,75 ml para cada carril (1,75 x 8 = 14 ml)
5
Registre los resultados en el formulario de seguimiento del laboratorio.
6
Antes de continuar, vuelva a colocar los tubos de residuos en el contenedor de
residuos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
39
Carga y cebado de reactivos
Colocación de los tubos e inicio del cebado
Realización de un experimento de HiSeq v4
7
40
Seleccione Next (Siguiente).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Entre los pasos para cargar la celda de flujo agrupada se incluyen los siguientes: la
extracción de la celda de flujo para el cebado, la limpieza del soporte de la celda de flujo, la
limpieza de la celda de flujo, la carga de la celda de flujo y la confirmación del flujo
correcto.
Consumibles proporcionados por el usuario
}
}
}
}
Toallita para limpiar lentes
Paños humedecidos en alcohol o etanol al 70 %
Toallita de laboratorio sin pelusa
Un par de pinzas hemostáticas de plástico
Retirada de la celda de flujo usada
1
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 1 para desacoplar los
distribuidores.
Figura 16 Palanca de la celda de flujo en posición 1
2
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 0 para desacoplar la
junta de vacío y desbloquear la celda de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
41
Carga de una celda de flujo
Carga de una celda de flujo
Realización de un experimento de HiSeq v4
Figura 17 Palanca de la celda de flujo en posición 0
3
Levante la celda de flujo usada del soporte de la celda de flujo.
Limpieza del soporte de la celda de flujo
1
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
2
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
Figura 18 Inspección de los orificios de vacío
3
42
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Extraiga la celda de flujo del contenedor de la celda de flujo con un par de pinzas
hemostáticas de plástico.
2
Enjuague la celda de flujo con agua de laboratorio y séquela con una toallita para
limpiar lentes.
3
Doble un paño humedecido en alcohol hasta que tenga el tamaño aproximado de la
celda de flujo.
4
Sujete con dos dedos los extremos de la celda de flujo agrupada. Asegúrese de que los
puertos de entrada y salida están boca arriba.
5
Limpie cada lado de la celda de flujo con un solo movimiento de arrastre. Repita,
doblando el paño después de cada pasada, hasta que la celda de flujo quede limpia.
6
Seque la celda de flujo con una toallita para limpiar lentes seca.
7
Proteja la celda de flujo del polvo hasta que vaya a cargarla en el instrumento.
Carga de la celda de flujo de secuenciación
NOTA
No sustituya las juntas del distribuidor. Sustituya las juntas del distribuidor cuando el
experimento de secuenciación haya finalizado y antes del lavado de mantenimiento.
1
Coloque la celda de flujo en el soporte de la celda de flujo con los puertos de entrada y
salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que la flecha
del extremo izquierdo de la celda de flujo señale al instrumento.
2
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
43
Carga de una celda de flujo
Limpieza de la celda de flujo
Realización de un experimento de HiSeq v4
Figura 19 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
A
B
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
3
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1, lo que activará el
vacío y fijará la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo
parpadee emitiendo una luz verde, significa que el vacío está activado. Si la palanca
no muestra luz verde, consulte Posibles problemas de configuración de experimentos en la
página 149.
Figura 20 Palanca de la celda de flujo en posición 1
44
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2. Cuando el color de la palanca de la celda de flujo sea
verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está lista para usarse.
Figura 21 Palanca de la celda de flujo en posición 2
5
Asegúrese de seleccionar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado)
en la pantalla Load Sequencing Flow Cell (Cargar celda de flujo de secuenciación).
Confirmación de flujo correcto
Un flujo correcto confirma que la celda de flujo y las juntas están bien instaladas y el
distribuidor está acoplado.
1
Seleccione la solución 5 en la lista desplegable.
2
Introduzca los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 250
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 250
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Seleccione Pump (Dispensar).
4
Inspeccione visualmente la celda de flujo para detectar burbujas en los carriles o fugas
cerca de los distribuidores.
Si detecta un exceso de burbujas, compruebe las juntas del distribuidor para detectar
obstrucciones y repita el proceso con la solución 6 para evitar la eliminación de la
posición 5. Reduzca la velocidad de aspiración a 100 y dispense otros 250 µl a la celda
de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
45
Carga de una celda de flujo
4
Realización de un experimento de HiSeq v4
46
5
Seleccione Next (Siguiente). Asegúrese de que la palanca de la celda de flujo está de
color verde y, a continuación, cierre la puerta del compartimento de la celda de flujo.
6
Confirme que las casillas de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) y Door
Closed (Puerta cerrada) están seleccionadas y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
7
Seleccione Start (Iniciar) para comenzar el experimento de secuenciación.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Monitorización del experimento
Monitorización del experimento
Supervise los criterios de medición del experimento que aparecen en la pantalla de
resumen del experimento, la fluídica y la adquisición de imágenes.
Figura 22 Pantalla de resumen del experimento
A
B
C
D
E
Barra de progreso: Utilice la barra de progreso para supervisar el número de ciclos que
han finalizado.
Gráfico de fluídica: Amplíe la sección de fluídica para supervisar los pasos de análisis
químico.
Configuración del experimento: Consulte los parámetros del experimento actual.
Gráfico de análisis: Utilice el gráfico de análisis para supervisar las puntuaciones de
calidad por ciclo.
Gráfico de imágenes: Utilice el gráfico de imágenes para supervisar las intensidades por
ciclo.
Informe de primera base
Si ha seleccionado la opción Confirm First Base (Confirmar primera base) durante la
configuración del experimento, se abrirá el cuadro de diálogo de confirmación de primera
base automáticamente tras finalizar la adquisición de imágenes del primer ciclo. El
experimento se pone en pausa en este paso.
1
Revise el informe de primera base del cuadro de diálogo de confirmación.
2
Si los resultados son satisfactorios, seleccione Continue (Continuar).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
47
Realización de un experimento de HiSeq v4
Procedimientos posteriores al experimento
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos y, a continuación, lave el
instrumento. Si desea obtener más información, consulte Procedimientos posteriores al
experimento en la página 115.
48
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 3 Realización de un experimento de TruSeq v3
Introducción
Flujo de trabajo de la secuenciación de TruSeq v3
Tipos de experimentos para química de TruSeq v3
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Preparación de reactivos para la Lectura 2
Carga de reactivos para la Lectura 2
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Capítulo 3
Realización de un
experimento de TruSeq v3
50
52
54
55
61
71
77
79
80
49
Realización de un experimento de TruSeq v3
Introducción
Para realizar un experimento de TruSeq v3 en el HiSeq 2500, prepare reactivos SBS para la
Lectura 1 y reactivos de indexación antes de configurar el experimento. Siga las
indicaciones del software para configurar el experimento. Entre ellas, se incluyen la
introducción de los parámetros del experimento, la carga y el cebado de los reactivos, la
carga de la celda de flujo y la realización de una comprobación de fluídica.
Prepare y cargue reactivos "paired-end" y reactivos SBS para la Lectura 2 una vez
finalizada la Lectura 1 y las lecturas del índice.
Visite la página de especificaciones de HiSeq 2500 en el sitio web de Illumina para obtener
más información acerca de la duración y otras especificaciones de rendimiento.
Consumibles para secuenciación de TruSeq v3
Nombre del kit TruSeq v3
Descripción
TruSeq SBS Kit v3 (200 ciclos)
o
TruSeq SBS Kit v3 (50 ciclos)
Contiene reactivos SBS que se utilizan en el HiSeq 2500.
TruSeq PE Cluster Kit v3
o
TruSeq SR Cluster Kit v3
Contiene reactivos de agrupación que se utilizan en el cBot y
reactivos de indexación que se utilizan en el HiSeq 2500.
La versión PE del kit de generación de grupos incluye reactivos
"paired-end" que se utilizan en el HiSeq 2500.
Cada kit de generación de grupos incluye un kit de accesorios
que contiene repuestos de la junta de celda de flujo y tapas de
embudo para las botellas de reactivo SBS.
Pasos de preparación de los reactivos
} Para la preparación de reactivos SBS, consulte la guía correspondiente:
• TruSeq SBS Kit v3 Reagent Prep Guide (200 Cycles) (Guía de preparación de reactivos de
TruSeq SBS Kit v3 [200 ciclos]), n.º de referencia 15023333
• TruSeq SBS Kit v3 Reagent Prep Guide (50 Cycles) (Guía de preparación de reactivos de
TruSeq SBS Kit v3 [50 ciclos]), n.º de referencia 15023334
} Para la preparación de reactivos "paired-end" y de indexación, consulte la guía
correspondiente:
50
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
51
Introducción
• TruSeq PE Cluster Kit v3 Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de TruSeq
PE Cluster Kit v3), n.º de referencia 15023336
• TruSeq SR Cluster Kit v3 Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de TruSeq
SR Cluster Kit v3), n.º de referencia 15023335
Estas guías incluyen instrucciones para preparar los cebadores de secuenciación
incluidos en la caja TruSeq Dual Index Sequencing Primer Box.
Realización de un experimento de TruSeq v3
Flujo de trabajo de la secuenciación de TruSeq v3
Prepare los reactivos SBS para los reactivos de indexación y la Lectura 1.
Tras su preparación, pese los reactivos.
Para obtener información sobre la preparación de los reactivos, consulte
Pasos de preparación de los reactivos en la página 50.
Con el software de control, introduzca los parámetros del experimento.
Cuando se le solicite, cargue todos los reactivos SBS para la Lectura 1.
Cargue los reactivos SBS para la Lectura 2, excepto ICB.
Cargue los reactivos de indexación.
Con una celda de flujo usada en el instrumento, confirme el flujo correcto.
Cebe los reactivos SBS y mida los residuos de cebado.
Cargue la celda de flujo agrupada para secuenciación. Confirme el flujo
correcto.
Inicie el experimento de secuenciación.
[Opcional] Después del ciclo 1, revise el informe de primera base y,
después, continúe con la Lectura 1.
El experimento continúa como se ha especificado en los parámetros del
experimento.
Prepare los reactivos "paired-end" y el ICB nuevo para la Lectura 2. Pese los
reactivos tras la preparación.
Para obtener información sobre la preparación de los reactivos, consulte
Pasos de preparación de los reactivos en la página 50.
52
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Continúe el experimento. El software ceba automáticamente los reactivos
"paired-end" y realiza la resíntesis de la Lectura 2 y la Lectura 2.
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos.
Lave el instrumento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
53
Flujo de trabajo de la secuenciación de TruSeq v3
Cargue los reactivos "paired-end" y el ICB nuevo para la Lectura 2.
Realización de un experimento de TruSeq v3
Tipos de experimentos para química de TruSeq v3
En la siguiente tabla se muestran los tipos de experimentos de secuenciación y el número
de ciclos posibles para cada lectura cuando se utiliza la química de TruSeq v3. Utilice esta
información a modo de referencia a la hora de configurar el experimento.
Tipo de experimento
Lectura individual,
no indexada
Lectura individual,
un solo índice
Ciclos
de
Lectura 1
≤ 101
≤ 101
Ciclos de
lectura
Ciclos de
lectura
Ciclos
de índice 1 (i7)
--
de índice 2 (i5)
--
de
Lectura 2
--
Total
de
--
--
8
--
≤ 108 ¹
≤ 109 ²
≤ 117
ciclos
≤ 101
Lectura individual,
doble índice
"Paired-end",
no indexada
"Paired-end",
un solo índice
≤ 101
6o7¹
8²
8
≤ 101
--
--
≤ 101
≤ 202
≤ 101
--
≤ 101
"Paired-end",
doble índice
≤ 101
7¹
8²
8
7+8³
≤ 101
≤ 209 ¹
≤ 210 ²
≤ 225
¹ Número de ciclos para bibliotecas de un solo índice.
² Número de ciclos para bibliotecas de doble índice.
³ La lectura de índice 2 de un experimento de doble índice "paired-end" incluye siete ciclos de solo
química adicionales.
54
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
En la pantalla de bienvenida, seleccione Sequence | New Run (Secuenciar | Nuevo
experimento).
La interfaz del software de control le guía por los pasos de configuración del experimento.
Los pasos de configuración del experimento se organizan en tres pestañas: Run
Configuration (Configuración del experimento), Pre-Run Setup (Configuración previa al
experimento) e Initiate Run (Iniciar experimento).
} Las pantallas de configuración del experimento contienen listas desplegables, casillas
de verificación o campos de texto para los parámetros del experimento. Utilice el lector
de códigos de barras portátil para leer el ID del kit de reactivos o de la celda de flujo, o
introduzca el ID con ayuda del teclado táctil. El icono de teclado
se encuentra a la
derecha de los campos de texto.
} Seleccione Next (Siguiente) para pasar a la siguiente pantalla o seleccione Back (Atrás)
para volver a la pantalla anterior.
} En cualquier momento durante los pasos de configuración del experimento, puede
seleccionar Cancel (Cancelar) para abandonar la configuración del experimento y
volver a la pantalla Welcome (Bienvenida).
Pantalla de integración
La pantalla de integración permite conectar el experimento a BaseSpace.
Para conectarlo a BaseSpace, realice lo siguiente:
1
Seleccione BaseSpace.
2
Seleccione una de las siguientes opciones de BaseSpace:
• Storage and Analysis (Almacenamiento y análisis): Envía los datos del
experimento a BaseSpace para la supervisión remota y el análisis de los datos. Con
esta opción, se precisa una hoja de muestras.
• Run Monitoring Only (Solo supervisión del experimento): Envía solamente los
archivos InterOp a BaseSpace, lo que le permite supervisar el experimento de
forma remota.
3
Inicie sesión en BaseSpace con su correo electrónico y la contraseña de la cuenta de
MyIllumina.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
55
Introducción de parámetros del experimento
Introducción de parámetros del experimento
Realización de un experimento de TruSeq v3
Para continuar sin conexión a BaseSpace, realice lo siguiente:
1
Seleccione None (Ninguno).
2
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de almacenamiento
1
Seleccione la casilla de verificación Save to an output folder (Guardar en una carpeta
de salida) y seleccione Browse (Examinar) para ir a la ubicación de red deseada. Si el
experimento está conectado a BaseSpace para almacenamiento y análisis, este campo
es opcional.
2
Seleccione Zip BCL files (Comprimir archivos BCL) para reducir el espacio de
almacenamiento necesario. Si el experimento está conectado a BaseSpace, la opción Zip
BCL files (Comprimir archivos BCL) está seleccionada de forma predeterminada.
NOTA
El parámetro Bin Q-Scores (Agrupar puntuaciones Q) está activado de forma
predeterminada para reducir el espacio de almacenamiento necesario. Este parámetro
agrupa las puntuaciones de calidad de un rango de valores más amplio sin repercutir en la
precisión ni el rendimiento.
3
Seleccione una de las siguientes opciones de Save Auxiliary Files (Guardar archivos
auxiliares):
• Save All Thumbnails (Guardar todas las vistas en miniatura): Guarda todas las
imágenes en miniatura. Una imagen en miniatura es una muestra de imágenes de
muchas placas en cada columna de placas, o sector, combinada en una imagen en
miniatura.
• Save Tile Thumbnails (Guardar vistas en miniatura de placa): Guarda las vistas
en miniatura de las placas. Las vistas en miniatura de las placas representan una
única placa en lugar de una muestra de placas en un sector.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración de la celda de flujo
La pantalla Flow Cell Setup (Configuración de la celda de flujo) registra información acerca
de la celda de flujo utilizada en el experimento.
1
56
Realice la lectura del código de barras de la celda de flujo o introduzca el ID (número
del código de barras) de la celda de flujo que desea secuenciar. El ID de la celda de
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
2
Confirme que el tipo de celda de flujo sea la celda de flujo de HiSeq v3, que se
selecciona automáticamente según el ID de la celda de flujo.
3
Introduzca un nombre para el experimento. El nombre del experimento aparece en
cada pantalla para ayudar a identificar el experimento en curso.
4
Introduzca un nombre de usuario.
5
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración avanzada
1
[Opcional] Seleccione la casilla de verificación Confirm First Base (Confirmar primera
base).
Se genera un informe de primera base automáticamente para cada experimento. Al
seleccionar esta opción se abre el informe de primera base antes de continuar con el
experimento.
2
[Opcional] En las casillas de verificación de Align to PhiX (Alinear a PhiX), anule la
selección de la casilla de verificación de los carriles que no contienen PhiX.
De forma predeterminada, se seleccionan todos los carriles para la alineación mediante
Análisis en tiempo real (RTA).
También puede optar por seleccionar los carriles de la imagen de la celda de flujo para
añadir o eliminar carriles para la alineación de PhiX.
NOTA
No se requiere ningún carril de control específico con HCS v2.2 ni RTA v1.18. Por lo
tanto, la opción para asignar un carril de control no está disponible con esta
configuración de software.
3
[Opcional] Seleccione Keep Intensity Files (Conservar archivos de intensidad) para
volver a realizar análisis con posterioridad o personalizar el procesamiento.
De forma predeterminada, esta opción no está seleccionada. No es necesario guardar
archivos de intensidad para el análisis integrado en el instrumento. Si activa esta
opción, aumenta de forma considerable el tamaño de la carpeta de salida de datos.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
57
Introducción de parámetros del experimento
flujo se utiliza para determinar el tipo de celda de flujo y la compatibilidad de los
reactivos.
Realización de un experimento de TruSeq v3
Pantalla de fórmulas
En la pantalla Recipe (Fórmula) se genera automáticamente una fórmula a partir de la
información introducida.
1
Seleccione una de las siguientes opciones de Index Type (Tipo de índice):
• No Index (No indexado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) no indexado.
• Single Index (Un solo índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read"
(de lectura individual) con una lectura de indexación.
• Dual Index (Doble índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con dos lecturas de indexación.
• Custom (Personalizado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con un número de ciclos personalizado de lecturas del índice.
2
Si especifica la opción Dual Index (Doble índice) o Custom (Personalizado), seleccione
un formato de celda de flujo: bien Single Read (Lectura única) o bien Paired End.
3
Introduzca el número de ciclos para la Lectura 1 y la Lectura 2, según sea necesario.
NOTA
El número de ciclos realizados en una lectura es de un ciclo más que el número de ciclos
analizados. Por ejemplo, para realizar 125 ciclos para la Lectura 1, introduzca 126.
Para la opción de indexación Custom (Personalizado), introduzca el número de ciclos
para las lecturas del índice. Las longitudes de lectura no tienen por qué ser idénticas.
58
4
Confirme los siguientes parámetros de química predeterminados. Estos campos se
completan automáticamente en función de la opción de tipo de índice seleccionada.
a SBS: TruSeq SBS Kit v3
b Index (Índice): TruSeq Multiplex Sequencing Primer Box o TruSeq Dual Index
Sequencing Primer Box
c PE turnaround (Respuesta PE): TruSeq PE Cluster Kit v3
5
[Opcional] Seleccione la opción Use Existing Recipe (Usar fórmula existente) para
utilizar una fórmula personalizada. También puede dejar que el software cree la
fórmula a partir de los parámetros del experimento introducidos.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Las hojas de muestras son opcionales, a menos que utilice BaseSpace para realizar análisis
de datos o ejecutar un experimento indexado.
1
Seleccione Browse (Examinar) para navegar hasta la ubicación de la hoja de muestras.
2
Seleccione Next (Siguiente).
NOTA
El software de control de HiSeq v2.2 permite un esquema de indexación diferente en cada
carril.
Pantalla de reactivos
La pantalla Reagents (Reactivos) registra información sobre los kits de reactivos utilizados
para el experimento. El ID del kit de reactivos (el número de código de barras comienza por
RGT) se utiliza para determinar el tipo del kit de reactivos y la compatibilidad con los
modos de experimento.
1
Realice una lectura o introduzca el ID del kit de reactivos SBS.
2
En el caso de los experimentos "paired-end", lea o introduzca el ID del kit de reactivos
del kit de generación de grupos "paired-end".
3
Seleccione el kit de reactivos SBS para el experimento:
• Seleccione 200 Cycles (200 ciclos) para un kit de 200 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 209 de forma predeterminada.
• Seleccione 50 Cycles (50 ciclos) para un kit de 50 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 59 de forma predeterminada.
• Seleccione Custom (Personalizar) para un kit parcial o varios kits de 50 ciclos. En
el campo Cycles Remaining (Ciclos restantes), introduzca el número de ciclos SBS
que se espera que duren los reactivos.
NOTA
En el caso de los kits parciales, el software cuenta el número de ciclos introducidos.
Cuando los ciclos están en un nivel bajo, el software le solicita cargar reactivos nuevos.
4
Seleccione Prime SBS Reagents (Cebar reactivos SBS) para cebar los reactivos antes de
comenzar un experimento. Cebe siempre los reactivos antes de cargar una nueva celda
de flujo.
5
Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
59
Introducción de parámetros del experimento
Pantalla de hoja de muestras
Realización de un experimento de TruSeq v3
Pantalla de revisión
60
1
Revise los parámetros del experimento en la pantalla Review (Revisión).
2
Seleccione Next (Siguiente) para continuar o seleccione Back (Atrás) para modificar los
parámetros.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Tras introducir los parámetros del experimento, cargue los reactivos SBS y de indexación
para el experimento. A continuación, cebe los reactivos con el sistema de fluídica. El
software le guiará a través de estos pasos mediante una serie de pantallas en la pestaña
Pre-Run Setup (Configuración previa al experimento).
Consumibles proporcionados por Illumina
} Ocho tapas de embudo
Consumibles proporcionados por el usuario
} Botella de 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
} Tubos cónicos de 15 ml (Corning, n.º de catálogo 430052)
} Agua de laboratorio
NOTA
Para preparar el enjuague posterior al experimento al final del experimento de secuenciación,
cargue 25 ml de PW1 o agua de laboratorio en la posición 2.
El enjuague posterior al experimento no sustituye al lavado del instrumento posterior al
experimento.
Carga de reactivos SBS
1
Retire la tapa de cada botella de reactivo y sustitúyala por una tapa de embudo.
PRECAUCIÓN
Después de manipular la botella de CMR, asegúrese de desechar sus guantes y sustituirlos
por un par nuevo.
2
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
NOTA
Pesar los reactivos antes y después de un experimento de secuenciación sirve para confirmar
la administración correcta de los reactivos.
3
Abra la puerta del compartimento de reactivos.
4
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos de secuenciación con el siguiente
movimiento:
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
61
Carga y cebado de reactivos
Carga y cebado de reactivos
Realización de un experimento de TruSeq v3
a
b
Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo superior del canal.
Asegúrese de que el mango del dispensador se encuentre colocado de forma segura
en la ranura.
5
Deslice la gradilla de reactivos para extraerla del compartimento de reactivos.
6
Coloque cada una de las botellas de reactivo en la gradilla, en la posición numerada
correspondiente. Asegúrese de que el extremo cónico de la botella esté apoyado en la
muesca de la base de la gradilla.
Tabla 5 Posiciones de los reactivos SBS
Posición
Reactivo
1
2
3
4
5
6
7
8
ICB
PW1 (25 ml)
SRE
Tampón de SBS 1 (SB1)
Tampón de SBS 2 (SB2)
Tampón de SBS 2 (SB2)
CMR
Tampón de SBS 3 (SB3)
Descripción
Mezcla para incorporación
Tampón de lavado
Reactivo de mezcla para lectura
Tampón de alto contenido en sal
Tampón de lavado de incorporación
Tampón de lavado de incorporación
Reactivo de mezcla para clivaje
Tampón de clivaje
7
Añada 25 ml de PW1 o agua de laboratorio a la botella de la posición 2.
8
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
9
Baje los dispensadores e introdúzcalos en las botellas de reactivos de secuenciación
como se indica a continuación:
a Tire del mango del dispensador hacia usted y, a continuación, bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en las tapas de embudo.
c Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo inferior del canal.
10 Seleccione la casilla de verificación PW1 (25 ml) loaded (PW1 [25 ml] cargada).
Carga de reactivos de indexación
1
62
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Asegúrese de que la gradilla "paired-end" no se esté utilizando en la celda de flujo
contigua. Los pasos que utilizan la gradilla "paired-end" incluyen la resíntesis de la
Lectura 2, la preparación de la lectura del Índice 1 (i7) y la preparación de la lectura
del Índice 2 (i5).
3
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos "paired-end" con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
b Suelte el mango en la ranura del extremo superior del canal. Asegúrese de que el
mango se encuentra colocado de forma segura en la ranura.
4
Deslice la gradilla de reactivos hacia el exterior del compartimento de reactivos con el
mango de la gradilla.
5
Retire las tapas de todos los tubos de reactivos y coloque el tubo en la gradilla en la
posición numerada asociada o el color de la etiqueta correspondiente.
Tabla 6 Experimento de un solo índice en una celda de flujo de lectura individual
o celda de flujo "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
HP8 o
Mezcla para el cebador de secuenciación del Índice 1
17
HP12
(i7)
HP3
Solución de desnaturalización
18
HT2
Tampón de lavado
19
Tabla 7 Experimento de doble índice en una celda de flujo "single-read" (de
lectura individual)
Posición
Reactivo
Descripción
HP9
Mezcla para el cebador de secuenciación del Índice 2
16
(i5) SR
HP8 o
Mezcla para el cebador de secuenciación del Índice 1
17
HP12
(i7)
HP3
Solución de desnaturalización
18
HT2
Tampón de lavado
19
Tabla 8 Experimento de doble índice en una celda de flujo "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
10
RMR
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Mezcla para resíntesis
63
Carga y cebado de reactivos
2
Realización de un experimento de TruSeq v3
Posición
17
18
19
Reactivo
HP8 o
HP12
HP3
HT2
Descripción
Mezcla para el cebador de secuenciación del Índice 1
(i7)
Solución de desnaturalización
Tampón de lavado
6
Coloque tubos cónicos de 15 ml con 10 ml de agua de laboratorio en posiciones de la
gradilla que no se estén utilizando.
7
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
8
Baje los dispensadores e introdúzcalos en los tubos de la gradilla de reactivos "pairedend" de la siguiente manera:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, bájelo sin dejar de tirar.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en los tubos.
c Suelte el mango en la ranura del extremo inferior del canal.
9
Cierre la puerta del compartimento de reactivos.
10 Seleccione Next (Siguiente).
Cebado de reactivos
Entre los pasos para cebar reactivos se incluyen los siguientes: limpieza del soporte de la
celda de flujo, carga de una celda de flujo para el cebado, confirmación de flujo correcto e
inicio del cebado.
Limpieza del soporte de la celda de flujo
1
Abra la puerta del compartimento de la celda de flujo.
PRECAUCIÓN
No coloque líquidos sobre la puerta del compartimento de la celda de flujo o en la platina de
la celda de flujo cuando la puerta esté abierta. Los derrames en esta zona pueden dañar el
instrumento.
2
64
Compruebe que la palanca de la celda de flujo está en posición OFF (Desactivada).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
3
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
4
En caso de presencia de la celda de flujo de un experimento anterior, retírela y
resérvela en un tubo de tampón de almacenamiento o agua de laboratorio para evitar
que se seque. Se puede utilizar para confirmar un flujo adecuado antes de cargar la
celda de flujo agrupada.
5
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
6
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
Figura 24 Ubicaciones de los orificios de vacío
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
65
Carga y cebado de reactivos
Figura 23 Palanca de la celda de flujo en posición 0
Realización de un experimento de TruSeq v3
Carga de una celda de flujo para el cebado
En la pantalla Load Prime Flow Cell (Cargar celda de flujo para el cebado), cargue la celda
de flujo usada para el cebado. Tras cargar la celda de flujo usada, compruebe que la
función de vacío esté activada.
NOTA
Illumina recomienda utilizar la celda de flujo de un experimento anterior para el cebado de
reactivos en un experimento posterior o para un lavado posterior a un experimento.
1
Enjuague la celda de flujo usada con agua de laboratorio. Seque la celda de flujo con
una toallita para limpiar lentes o una toallita sin pelusa.
2
Limpie la celda de flujo con paños humedecidos en alcohol y una toallita para limpiar
lentes.
NOTA
No extraiga ni sustituya las juntas de la celda de flujo durante este paso.
3
Coloque la celda de flujo usada en el soporte de la celda de flujo con los puertos de
entrada y salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que
la flecha del extremo izquierdo de la celda de flujo, que indica la dirección del flujo,
apunta hacia el instrumento.
4
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
66
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
A
B
5
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1, lo que activará el
vacío y fijará la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo
parpadee emitiendo una luz verde, significa que el vacío está activado. Si la palanca
no muestra luz verde, consulte Posibles problemas de configuración de experimentos en la
página 149.
Figura 26 Palanca de la celda de flujo en posición 1
6
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2 (extremo derecho). Cuando el color de la palanca de la
celda de flujo sea verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está
lista para usarse.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
67
Carga y cebado de reactivos
Figura 25 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
Realización de un experimento de TruSeq v3
Figura 27 Palanca de la celda de flujo en posición 2
7
Asegúrese de marcar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) en la
pantalla de carga de la celda de flujo para el cebado y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
Confirmación de flujo correcto
Un flujo correcto confirma que la celda de flujo y las juntas están bien instaladas y el
distribuidor está acoplado.
1
Seleccione la solución 2 (agua de laboratorio) de la lista desplegable.
PRECAUCIÓN
Utilice agua para confirmar que el flujo es correcto solo en una celda de flujo usada. No use
nunca agua para confirmar que el flujo es correcto en una celda de flujo agrupada.
68
2
Confirme los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 125
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 250
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Seleccione Pump (Dispensar).
4
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
Si detecta una presencia excesiva de burbujas, compruebe si las juntas están
obstruidas, reduzca la velocidad de aspiración a 100 y bombee otros 125 µl de agua a
la celda de flujo. Si el problema persiste, retire la celda de flujo, repita los pasos de
limpieza y vuelva a cargarla.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Retire los ocho tubos de residuos de la celda de flujo apropiada del contenedor de
residuos.
No incluya los ocho tubos de la celda de flujo opuesta ni el tubo de la bomba de
condensación.
Figura 28 Colocación de los tubos
A
B
Tubos de residuos de la celda de flujo para las posiciones de los reactivos 1–8
Tubo de la bomba de condensación (no retirar)
2
Coloque los tubos de residuos en un tubo de 15 ml vacío, es decir, un tubo de residuos
por cada tubo de 15 ml. El residuo de cebado se recoge y se mide después del paso de
cebado.
3
Seleccione Start Prime (Iniciar cebado). Se abre la pantalla de cebado y se inicia el paso
de cebado. Supervise el progreso del cebado en la pantalla de cebado.
4
Al finalizar el paso de cebado, mida el residuo obtenido y compruebe que el volumen
en cada tubo sea de 1,75 ml para un total de 14 ml. El total se calcula de la siguiente
forma:
• 250 µl para cada posición SBS salvo la posición 2 (250 x 7 = 1,75 ml)
• 1,75 ml para cada carril (1,75 x 8 = 14 ml)
5
Registre los resultados en el formulario de seguimiento del laboratorio.
6
Antes de continuar, vuelva a colocar los tubos de residuos en el contenedor de
residuos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
69
Carga y cebado de reactivos
Colocación de los tubos e inicio del cebado
Realización de un experimento de TruSeq v3
7
70
Seleccione Next (Siguiente).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Entre los pasos para cargar la celda de flujo agrupada se incluyen los siguientes: la
extracción de la celda de flujo para el cebado, la limpieza del soporte de la celda de flujo, la
limpieza de la celda de flujo, la carga de la celda de flujo y la confirmación del flujo
correcto.
Consumibles proporcionados por el usuario
}
}
}
}
Toallita para limpiar lentes
Paños humedecidos en alcohol o etanol al 70 %
Toallita de laboratorio sin pelusa
Un par de pinzas hemostáticas de plástico
Retirada de la celda de flujo usada
1
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 1 para desacoplar los
distribuidores.
Figura 29 Palanca de la celda de flujo en posición 1
2
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 0 para desacoplar la
junta de vacío y desbloquear la celda de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
71
Carga de una celda de flujo
Carga de una celda de flujo
Realización de un experimento de TruSeq v3
Figura 30 Palanca de la celda de flujo en posición 0
3
Levante la celda de flujo usada del soporte de la celda de flujo.
Limpieza del soporte de la celda de flujo
1
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
2
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
Figura 31 Inspección de los orificios de vacío
3
72
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Extraiga la celda de flujo del contenedor de la celda de flujo con un par de pinzas
hemostáticas de plástico.
2
Enjuague la celda de flujo con agua de laboratorio y séquela con una toallita para
limpiar lentes.
3
Doble un paño humedecido en alcohol hasta que tenga el tamaño aproximado de la
celda de flujo.
4
Sujete con dos dedos los extremos de la celda de flujo agrupada. Asegúrese de que los
puertos de entrada y salida están boca arriba.
5
Limpie cada lado de la celda de flujo con un solo movimiento de arrastre. Repita,
doblando el paño después de cada pasada, hasta que la celda de flujo quede limpia.
6
Seque la celda de flujo con una toallita para limpiar lentes seca.
7
Proteja la celda de flujo del polvo hasta que vaya a cargarla en el instrumento.
Carga de la celda de flujo de secuenciación
NOTA
No sustituya las juntas del distribuidor. Sustituya las juntas del distribuidor cuando el
experimento de secuenciación haya finalizado y antes del lavado de mantenimiento.
1
Coloque la celda de flujo en el soporte de la celda de flujo con los puertos de entrada y
salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que la flecha
del extremo izquierdo de la celda de flujo señale al instrumento.
2
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
73
Carga de una celda de flujo
Limpieza de la celda de flujo
Realización de un experimento de TruSeq v3
Figura 32 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
A
B
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
3
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1, lo que activará el
vacío y fijará la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo
parpadee emitiendo una luz verde, significa que el vacío está activado. Si la palanca
no muestra luz verde, consulte Posibles problemas de configuración de experimentos en la
página 149.
Figura 33 Palanca de la celda de flujo en posición 1
74
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2. Cuando el color de la palanca de la celda de flujo sea
verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está lista para usarse.
Figura 34 Palanca de la celda de flujo en posición 2
5
Asegúrese de seleccionar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado)
en la pantalla Load Sequencing Flow Cell (Cargar celda de flujo de secuenciación).
Confirmación de flujo correcto
Un flujo correcto confirma que la celda de flujo y las juntas están bien instaladas y el
distribuidor está acoplado.
1
Seleccione la solución 5 en la lista desplegable.
2
Introduzca los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 250
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 250
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Seleccione Pump (Dispensar).
4
Inspeccione visualmente la celda de flujo para detectar burbujas en los carriles o fugas
cerca de los distribuidores.
Si detecta un exceso de burbujas, compruebe las juntas del distribuidor para detectar
obstrucciones y repita el proceso con la solución 6 para evitar la eliminación de la
posición 5. Reduzca la velocidad de aspiración a 100 y dispense otros 250 µl a la celda
de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
75
Carga de una celda de flujo
4
Realización de un experimento de TruSeq v3
76
5
Seleccione Next (Siguiente). Asegúrese de que la palanca de la celda de flujo está de
color verde y, a continuación, cierre la puerta del compartimento de la celda de flujo.
6
Confirme que las casillas de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) y Door
Closed (Puerta cerrada) están seleccionadas y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
7
Seleccione Start (Iniciar) para comenzar el experimento de secuenciación.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Monitorización del experimento
Monitorización del experimento
Supervise los criterios de medición del experimento que aparecen en la pantalla de
resumen del experimento, la fluídica y la adquisición de imágenes.
Figura 35 Pantalla de resumen del experimento
A
B
C
D
E
Barra de progreso: Utilice la barra de progreso para supervisar el número de ciclos que
han finalizado.
Gráfico de fluídica: Amplíe la sección de fluídica para supervisar los pasos de análisis
químico.
Configuración del experimento: Consulte los parámetros del experimento actual.
Gráfico de análisis: Utilice el gráfico de análisis para supervisar las puntuaciones de
calidad por ciclo.
Gráfico de imágenes: Utilice el gráfico de imágenes para supervisar las intensidades por
ciclo.
Informe de primera base
Si ha seleccionado la opción Confirm First Base (Confirmar primera base) durante la
configuración del experimento, se abrirá el cuadro de diálogo de confirmación de primera
base automáticamente tras finalizar la adquisición de imágenes del primer ciclo. El
experimento se pone en pausa en este paso.
1
Revise el informe de primera base del cuadro de diálogo de confirmación.
2
Si los resultados son satisfactorios, seleccione Continue (Continuar).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
77
Realización de un experimento de TruSeq v3
Procedimientos posteriores al experimento
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos y, a continuación, lave el
instrumento. Si desea obtener más información, consulte Procedimientos posteriores al
experimento en la página 115.
78
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Antes de finalizar la Lectura 1 y cualquier lectura del índice, prepare los reactivos para la
resíntesis de la Lectura 2 y el ICB nuevo para la Lectura 2.
Para obtener instrucciones sobre la preparación de reactivos, consulte la TruSeq PE Cluster
Kit v3 Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de TruSeq PE Cluster Kit v3),
n.º de referencia 15023336. En esta guía se incluyen instrucciones para preparar los
reactivos de secuenciación incluidos en la caja TruSeq Dual Index Sequencing Primer Box.
NOTA
Para obtener un rendimiento óptimo, Illumina recomienda que prepare el ICB fresco (mezcla
para incorporación) para la Lectura 2.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
79
Preparación de reactivos para la Lectura 2
Preparación de reactivos para la Lectura 2
Realización de un experimento de TruSeq v3
Carga de reactivos para la Lectura 2
Tras finalizar la Lectura 1 y cualquier lectura del índice, cargue los reactivos "paired-end"
para la resíntesis de la Lectura 2 y un ICB recién preparado para la Lectura 2.
Carga de reactivos "paired-end"
1
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
2
Asegúrese de que la gradilla "paired-end" no se está utilizando en la celda de flujo
opuesta para la resíntesis de la Lectura 2, la preparación de la lectura del índice 1 (i7) o
la preparación de la lectura del índice 2 (i5).
3
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos "paired-end" con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango hacia usted y levántelo.
b Suelte el mango en la ranura del extremo superior del canal. Asegúrese de que el
mango se encuentra colocado de forma segura en la ranura.
4
Deslice la gradilla de reactivos hacia el exterior del compartimento de reactivos con el
mango de la gradilla.
5
Retire las tapas de todos los tubos de reactivos.
6
Coloque cada uno de los tubos de reactivos en la gradilla en las posiciones numeradas
asociadas.
Tabla 9 Posiciones de los reactivos "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
10
11
12
13
14
15
16
18
19
80
RMR
LMX2
BMX
AMX2
APM2
AT2
HP7 o HP11
HP3
HT2
Mezcla para resíntesis
Mezcla para linealización 2
Mezcla para bloqueo
Mezcla para amplificación 2
Premezcla AMX2
100 % formamida
Cebador de secuenciación de la Lectura 2
Solución de desnaturalización
Tampón de lavado
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
7
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
8
Baje los dispensadores e introdúzcalos en los tubos de reactivos "paired-end" del
siguiente modo:
a Tire del mango hacia usted y bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en los tubos.
c Suelte el mango en la ranura del extremo inferior del canal.
Carga de ICB para la Lectura 2
1
Registre el peso del reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
2
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos de secuenciación con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango del dispensador hacia usted y levántelo.
b Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo superior del canal.
Asegúrese de que el mango del dispensador se encuentre colocado de forma segura
en la ranura.
3
Deslice la gradilla de reactivos para extraerla del compartimento de reactivos.
4
Retire la botella de reactivo ICB existente de la posición 1 de la gradilla de reactivos y
retire la tapa de embudo de la botella.
5
Coloque la tapa de embudo en la botella de ICB nueva y cargue la botella en la
posición 1. Asegúrese de que el extremo cónico de la botella esté apoyado en la muesca
de la base de la gradilla.
6
Deslice la gradilla de reactivos dentro del compartimento de reactivos y alinee la
gradilla con la guía elevada en el suelo del compartimento.
7
Baje los dispensadores e introdúzcalos en las botellas de reactivos de secuenciación
como se indica a continuación:
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
81
Carga de reactivos para la Lectura 2
NOTA
En el caso de los experimentos "paired-end" y de doble índice, RMR se carga con reactivos de
indexación antes de comenzar el experimento. En el caso de los experimentos no indexados o
de un solo índice, RMR se carga cuando se cargan los reactivos "paired-end".
Realización de un experimento de TruSeq v3
a
b
c
8
82
Tire del mango del dispensador hacia usted y bájelo.
Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en las tapas de embudo.
Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo inferior del canal.
Cierre la puerta del compartimento de reactivos y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente) para reanudar el experimento.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 4 Realización de un experimento rápido
Introducción
Flujo de trabajo de la secuenciación de experimento rápido
Tipos de experimento para química de experimento rápido
Comprobación del volumen previa al experimento
Introducción de parámetros del experimento
Carga y cebado de reactivos
Carga de una celda de flujo
Monitorización del experimento
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Capítulo 4
Realización de un
experimento rápido
84
86
87
89
90
96
106
112
83
Realización de un experimento rápido
Introducción
El modo de experimento rápido proporciona dos opciones para el paso de la generación de
grupos, en el cBot o en el HiSeq 2500. La generación de grupos en el cBot permite dos
bibliotecas, una por cada carril, en la celda de flujo rápida de dos carriles. Tras la
hibridación de la plantilla y la primera extensión en el cBot, el resto del proceso de la
generación de grupos se lleva a cabo en el HiSeq.
Tras la preparación de los reactivos, entre los pasos de configuración del experimento se
incluyen la introducción de los parámetros del experimento, la carga y el cebado de los
reactivos, la carga de la celda de flujo, y la realización de una comprobación de fluídica. Si
la generación de grupos se realiza en HiSeq 2500, se omite el paso de cebado de reactivos
en los pasos de configuración del experimento.
Visite la página de especificaciones de HiSeq 2500 en el sitio web de Illumina para obtener
más información acerca de la duración y otras especificaciones de rendimiento.
Consumibles para secuenciación del experimento rápido
84
Nombre del kit de experimento
rápido
Descripción
HiSeq Rapid SBS Kit v2
o
TruSeq Rapid SBS Kit (v1)
Contiene reactivos SBS que se utilizan en el HiSeq 2500
y tapones de embudo para las botellas de reactivos SBS.
HiSeq Rapid PE Cluster Kit v2
o
HiSeq Rapid SR Cluster Kit v2
o
TruSeq Rapid PE Cluster Kit (v1)
o
TruSeq Rapid SR Cluster Kit (v1)
Contiene reactivos de agrupación e indexación
utilizados en el HiSeq 2500 y un juego de juntas de
celda de flujo.
Las versiones PE de los kits de generación de grupos
incluyen reactivos "paired-end" que se utilizan en el
HiSeq 2500.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Antes de configurar el experimento, prepare los reactivos SBS, los reactivos de indexación y
los reactivos "paired-end".
} Para la preparación de reactivos SBS, consulte la guía correspondiente:
• HiSeq Rapid SBS Kit v2 Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de HiSeq
Rapid SBS Kit v2), n.º de referencia 15058772
• TruSeq Rapid SBS Kit Reagent Prep Guide (200 Cycles) (Guía de preparación de reactivos
de TruSeq Rapid SBS Kit [200 ciclos]), n.º de referencia 15036501
• TruSeq Rapid SBS Kit Reagent Prep Guide (50 Cycles) (Guía de preparación de reactivos
de TruSeq Rapid SBS Kit [50 ciclos]), n.º de referencia 15036502
} Para la preparación de reactivos "paired-end" y de indexación, consulte la guía
correspondiente:
• HiSeq Rapid Cluster Kit v2 Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de
HiSeq Rapid Cluster Kit v2), n.º de referencia 15059131
• TruSeq Rapid PE Cluster Kit Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de
TruSeq Rapid PE Cluster Kit), n.º de referencia 15038861
• TruSeq Rapid SR Cluster Kit Reagent Prep Guide (Guía de preparación de reactivos de
TruSeq Rapid SR Cluster Kit), n.º de referencia 15038860
Antes de configurar el experimento, prepare todos los reactivos. Cuando se lo solicite el
software de control, cargue todos los reactivos. Si utiliza la química de experimento rápido,
no tendrá que volver al instrumento durante el experimento para cargar los reactivos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
85
Introducción
Pasos de preparación de los reactivos
Realización de un experimento rápido
Flujo de trabajo de la secuenciación de experimento
rápido
Prepare todos los reactivos para el experimento y la cadena molde de la
biblioteca.
Para obtener información sobre la preparación de los reactivos, consulte
Pasos de preparación de los reactivos en la página 85.
Con el software de control, realice una comprobación del volumen e
introduzca los parámetros del experimento.
Para la generación de grupos integrada en el instrumento: Cargue todos los
reactivos del experimento y la cadena molde de la biblioteca preparada.
Para la generación de grupos en el cBot: Cargue todos los reactivos del
experimento.
Con una celda de flujo usada en el instrumento, confirme el flujo correcto.
Para la generación de grupos en el cBot: Cebe los reactivos SBS y mida los
residuos del cebado.
Inicie el experimento de secuenciación. Después del ciclo 1, inspeccione el
informe de primera base (ajuste opcional) y, a continuación, continúe con la
Lectura 1.
El experimento de secuenciación continúa a través del análisis PE y la
Lectura 2 sin necesidad de intervención.
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos. Lleve a
cabo un lavado con agua posterior al experimento.
86
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
En las siguientes tablas se muestran los tipos de experimentos de secuenciación y el
número de ciclos posibles para cada lectura cuando se utiliza la química de experimento
rápido. Utilice esta información a modo de referencia a la hora de configurar el
experimento.
Tabla 10 HiSeq Rapid SBS Kit v2
Tipo de
Ciclos
experimento
de
Lectura 1
Lectura individual,
≤ 251
no indexada
Lectura individual,
≤ 251
un solo índice
Ciclos de
lectura
de Índice 1 (i7)
--
Ciclos de
lectura
de Índice 2 (i5)
--
Ciclos
de
Lectura 2
--
Ciclos
totales
--
--
8
--
≤ 258 ¹
≤ 259 ²
≤ 267
≤ 251
Lectura individual,
doble índice
"Paired-end",
no indexada
"Paired-end",
un solo índice
≤ 251
7¹
8²
8
≤ 251
--
--
≤ 251
≤ 502
≤ 251
--
≤ 251
"Paired-end",
doble índice
≤ 251
7¹
8²
8
7+8³
≤ 251
≤ 509 ¹
≤ 510 ²
≤ 525
Ciclos de
lectura
de Índice 2 (i5)
--
Ciclos
de
Lectura 2
--
--
--
8
--
Tabla 11 TruSeq Rapid SBS Kit (v1)
Tipo de
Ciclos
Ciclos de
experimento
de
lectura
Lectura 1
de Índice 1 (i7)
Lectura individual,
≤ 101
-no indexada
Lectura individual,
≤ 101
7¹
un solo índice
8²
Lectura individual,
≤ 101
8
doble índice
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Ciclos
totales
≤ 101
≤ 108 ¹
≤ 109 ²
≤ 117
87
Tipos de experimento para química de experimento rápido
Tipos de experimento para química de experimento
rápido
Realización de un experimento rápido
Tipo de
experimento
"Paired-end",
no indexada
"Paired-end",
un solo índice
"Paired-end",
doble índice
Ciclos
de
Lectura 1
≤ 101
Ciclos de
lectura
de Índice 1 (i7)
--
Ciclos de
lectura
de Índice 2 (i5)
--
Ciclos
de
Lectura 2
≤ 101
≤ 101
7¹
8²
8
--
≤ 101
7+8³
≤ 101
≤ 101
Ciclos
totales
≤ 202
≤ 209 ¹
≤ 210 ²
≤ 225
¹ Número de ciclos para bibliotecas de un solo índice.
² Número de ciclos para bibliotecas de doble índice.
³ La lectura de índice 2 de un experimento de doble índice "paired-end" incluye siete ciclos de solo
química adicionales.
88
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
En la pantalla Welcome (Bienvenida), seleccione Sequence | New Run (Secuenciar |
Nuevo experimento). Se abre la pantalla Volume Check (Comprobación del volumen).
Pantalla de comprobación del volumen
1
Cuando el software le solicite realizar una comprobación del volumen, seleccione Yes
(Sí).
2
Coloque los tubos de residuos 1, 2, 3, 6, 7 y 8 de la celda de flujo actual en una botella
de 1 litro llena de agua desionizada. La colocación de los tubos en agua desionizada
impide que las bombas de los reactivos se dañen.
3
Cargue agua de laboratorio en las ocho posiciones SBS, las diez posiciones de la
gradilla "paired-end" y la posición de la biblioteca para la celda de flujo actual.
4
Cierre la estación de carga.
5
Seleccione la casilla de verificación Water loaded and template loading station closed
(Agua cargada y estación de carga de cadenas molde cerrada).
6
Seleccione Next (Siguiente).
7
Asegúrese de que haya una celda de flujo rápida utilizada cargada en el instrumento.
Introduzca el ID de la celda de flujo utilizada.
8
Seleccione Next (Siguiente).
9
Seleccione Pump (Dispensar) para confirmar el flujo.
10 Coloque los tubos 4 y 5 en tubos cónicos de 15 ml vacíos individuales.
11 Seleccione Next (Siguiente). Se iniciará la comprobación del volumen.
Cuando la comprobación del volumen haya finalizado, el volumen esperado será de
9,5 ml ±10 % para cada tubo.
12 Devuelva todos los tubos a la botella de residuos.
13 Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
89
Comprobación del volumen previa al experimento
Comprobación del volumen previa al experimento
Realización de un experimento rápido
Introducción de parámetros del experimento
En la pantalla de bienvenida, seleccione Sequence | New Run (Secuenciar | Nuevo
experimento).
La interfaz del software de control le guía por los pasos de configuración del experimento.
Los pasos de configuración del experimento se organizan en tres pestañas: Run
Configuration (Configuración del experimento), Pre-Run Setup (Configuración previa al
experimento) e Initiate Run (Iniciar experimento).
} Las pantallas de configuración del experimento contienen listas desplegables, casillas
de verificación o campos de texto para los parámetros del experimento. Utilice el lector
de códigos de barras portátil para leer el ID del kit de reactivos o de la celda de flujo, o
introduzca el ID con ayuda del teclado táctil. El icono de teclado
se encuentra a la
derecha de los campos de texto.
} Seleccione Next (Siguiente) para pasar a la siguiente pantalla o seleccione Back (Atrás)
para volver a la pantalla anterior.
} En cualquier momento durante los pasos de configuración del experimento, puede
seleccionar Cancel (Cancelar) para abandonar la configuración del experimento y
volver a la pantalla Welcome (Bienvenida).
Pantalla de integración
La pantalla de integración permite conectar el experimento a BaseSpace.
Para conectarlo a BaseSpace, realice lo siguiente:
90
1
Seleccione BaseSpace.
2
Seleccione una de las siguientes opciones de BaseSpace:
• Storage and Analysis (Almacenamiento y análisis): Envía los datos del
experimento a BaseSpace para la supervisión remota y el análisis de los datos. Con
esta opción, se precisa una hoja de muestras.
• Run Monitoring Only (Solo supervisión del experimento): Envía solamente los
archivos InterOp a BaseSpace, lo que le permite supervisar el experimento de
forma remota.
3
Inicie sesión en BaseSpace con su correo electrónico y la contraseña de la cuenta de
MyIllumina.
4
Seleccione Next (Siguiente).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Seleccione None (Ninguno).
2
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de almacenamiento
1
Seleccione la casilla de verificación Save to an output folder (Guardar en una carpeta
de salida) y seleccione Browse (Examinar) para ir a la ubicación de red deseada. Si el
experimento está conectado a BaseSpace para almacenamiento y análisis, este campo
es opcional.
2
Seleccione Zip BCL files (Comprimir archivos BCL) para reducir el espacio de
almacenamiento necesario. Si el experimento está conectado a BaseSpace, la opción Zip
BCL files (Comprimir archivos BCL) está seleccionada de forma predeterminada.
NOTA
El parámetro Bin Q-Scores (Agrupar puntuaciones Q) está activado de forma
predeterminada para reducir el espacio de almacenamiento necesario. Este parámetro
agrupa las puntuaciones de calidad de un rango de valores más amplio sin repercutir en la
precisión ni el rendimiento.
3
Seleccione una de las siguientes opciones de Save Auxiliary Files (Guardar archivos
auxiliares):
• Save All Thumbnails (Guardar todas las vistas en miniatura): Guarda todas las
imágenes en miniatura. Una imagen en miniatura es una muestra de imágenes de
muchas placas en cada columna de placas, o sector, combinada en una imagen en
miniatura.
• Save Tile Thumbnails (Guardar vistas en miniatura de placa): Guarda las vistas
en miniatura de las placas. Las vistas en miniatura de las placas representan una
única placa en lugar de una muestra de placas en un sector.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración de la celda de flujo
La pantalla Flow Cell Setup (Configuración de la celda de flujo) registra información acerca
de la celda de flujo utilizada en el experimento.
1
Seleccione un tipo de kit de reactivos, TruSeq Rapid v1 o HiSeq Rapid v2.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
91
Introducción de parámetros del experimento
Para continuar sin conexión a BaseSpace, realice lo siguiente:
Realización de un experimento rápido
2
Realice la lectura del código de barras de la celda de flujo o introduzca el ID (número
del código de barras) de la celda de flujo que desea secuenciar. El ID de la celda de
flujo se utiliza para determinar el tipo de celda de flujo y la compatibilidad de los
reactivos.
3
Confirme que el tipo de celda de flujo sea correcto, ya sea la celda de flujo TruSeq
Rapid v1 o la celda de flujo HiSeq Rapid v2. El tipo de celda de flujo se selecciona de
forma automática en función del ID de la celda de flujo.
4
Introduzca un nombre para el experimento. El nombre del experimento aparece en
cada pantalla para ayudar a identificar el experimento en curso.
5
Introduzca un nombre de usuario.
6
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de configuración avanzada
1
[Opcional] Seleccione la casilla de verificación Confirm First Base (Confirmar primera
base).
Se genera un informe de primera base automáticamente para cada experimento. Al
seleccionar esta opción se abre el informe de primera base antes de continuar con el
experimento.
2
[Opcional] En las casillas de verificación de Align to PhiX (Alinear a PhiX), anule la
selección de la casilla de verificación de los carriles que no contienen PhiX.
De forma predeterminada, se seleccionan todos los carriles para la alineación mediante
el análisis en tiempo real.
También puede optar por seleccionar los carriles de la imagen de la celda de flujo para
añadir o eliminar carriles para la alineación de PhiX.
NOTA
No se requiere ningún carril de control específico con HCS v2.2 ni RTA v1.18. Por lo
tanto, la opción para asignar un carril de control no está disponible con esta
configuración de software.
3
92
[Opcional][Para TruSeq Rapid v1] Seleccione Keep Intensity Files (Conservar archivos
de intensidad) para volver a realizar análisis con posterioridad o personalizar el
procesamiento.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de fórmulas
En la pantalla Recipe (Fórmula) se genera automáticamente una fórmula a partir de la
información introducida.
1
Seleccione de las siguientes opciones de Index Type (Tipo de índice):
• No Index (No indexado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) no indexado.
• Single Index (Un solo índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read"
(de lectura individual) con una lectura de indexación.
• Dual Index (Doble índice): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con dos lecturas de indexación.
• Custom (Personalizado): Realiza un experimento "paired-end" o "single-read" (de
lectura individual) con un número de ciclos personalizado de lecturas del índice.
2
Si especifica la opción Dual Index (Doble índice) o Custom (Personalizado), seleccione
un formato de celda de flujo: bien Single Read (Lectura única) o bien Paired End.
3
Introduzca el número de ciclos para la Lectura 1 y la Lectura 2, según sea necesario.
NOTA
El número de ciclos realizados en una lectura es de un ciclo más que el número de ciclos
analizados. Por ejemplo, para realizar 100 ciclos para la Lectura 1, introduzca 101.
Para la opción de indexación Custom (Personalizado), introduzca el número de ciclos
para las lecturas del índice. Las longitudes de lectura no tienen por qué ser idénticas.
4
Confirme los siguientes parámetros de análisis químico: Estos campos se completan
automáticamente en función del tipo de kit de reactivos y del formato de celda de flujo
que se haya seleccionado.
a SBS: TruSeq Rapid SBS Kit v1 o HiSeq Rapid SBS Kit v2
b Cluster Kit (Kit de generación de grupos): TruSeq Rapid PE Cluster Kit v1,
TruSeq Rapid SR Cluster Kit v1, HiSeq Rapid PE Cluster Kit v2 o HiSeq Rapid
SR Cluster Kit v2
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
93
Introducción de parámetros del experimento
De forma predeterminada, esta opción no está seleccionada. No es necesario guardar
archivos de intensidad para el análisis integrado en el instrumento. Si activa esta
opción, aumenta de forma considerable el tamaño de la carpeta de salida de datos.
Realización de un experimento rápido
5
[Opcional] Seleccione la casilla de verificación Use Existing Recipe (Usar fórmula
existente) para utilizar una fórmula personalizada. También puede dejar que el
software cree la fórmula a partir de los parámetros del experimento introducidos.
Pantalla de hoja de muestras
Las hojas de muestras son opcionales salvo si utiliza BaseSpace para realizar análisis de
datos, ejecutar un experimento de indexación o prevé supervisar el rendimiento de la
demultiplexación con el visor del análisis de secuenciación. Para obtener información
adicional, consulte la Guía del usuario del Visor del análisis de secuenciación (SAV), n.º de
referencia 15020619.
1
Seleccione una de las siguientes opciones para especificar el método de generación de
grupos:
• Seleccione On-Board Cluster Generation (Generación de grupos incorporada) para
llevar a cabo la generación de grupos integrada en el instrumento.
• Si se ha iniciado la generación de grupos en el cBot, seleccione Template
Hybridization on cBot (Hibridación de la cadena molde en cBot).
2
Seleccione Next (Siguiente).
3
En el campo Sample Sheet (Hoja de muestras), seleccione Browse (Examinar) y vaya a
la ubicación de la hoja de muestras.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de reactivos
La pantalla Reagents (Reactivos) registra información sobre los kits de reactivos utilizados
para el experimento. El ID del kit de reactivos (el número de código de barras comienza por
RGT) se utiliza para determinar el tipo del kit de reactivos y la compatibilidad con los
modos de experimento.
94
1
Realice una lectura o introduzca el ID del kit de reactivos SBS.
2
En el caso de los experimentos "paired-end", lea o introduzca el ID del kit de reactivos
del kit de generación de grupos.
3
Seleccione el kit de reactivos SBS para el experimento:
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
NOTA
En el caso de los kits parciales, el software cuenta el número de ciclos introducidos.
Cuando los ciclos están en un nivel bajo, el software le solicita cargar reactivos nuevos.
4
Seleccione Next (Siguiente).
Pantalla de revisión
1
Revise los parámetros del experimento en la pantalla Review (Revisión).
2
Seleccione Next (Siguiente) para continuar o seleccione Back (Atrás) para modificar los
parámetros.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
95
Introducción de parámetros del experimento
• [Para HiSeq Rapid SBS Kit v2] Seleccione 500 Cycles (500 ciclos) para un kit de
500 ciclos. Los ciclos restantes se establecen en 525 ciclos de forma
predeterminada.
• Seleccione 200 Cycles (200 ciclos) para un kit de 200 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 225 de forma predeterminada.
• Seleccione 50 Cycles (50 ciclos) para un kit de 50 ciclos. Los ciclos restantes se
establecen en 74 de forma predeterminada.
• Seleccione Custom (Personalizar) para un kit parcial o varios kits de 50 ciclos. En
el campo Cycles Remaining (Ciclos restantes), introduzca el número de ciclos SBS
que se espera que duren los reactivos.
Realización de un experimento rápido
Carga y cebado de reactivos
Tras introducir los parámetros del experimento, cargue los reactivos SBS, "paired-end", de
agrupación y de indexación para el experimento. A continuación, cebe los reactivos con el
sistema de fluídica. El software le guiará a través de estos pasos mediante una serie de
pantallas en la pestaña Pre-Run Setup (Configuración previa al experimento).
Consumibles proporcionados por Illumina
} Ocho tapas de embudo
Consumibles proporcionados por el usuario
} Botella de 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
} Tubos cónicos de 15 ml (Corning, n.º de catálogo 430052)
} Agua de laboratorio
NOTA
Para preparar el enjuague posterior al experimento al final del experimento de secuenciación,
cargue 25 ml de PW1 o agua de laboratorio en la posición 2.
El enjuague posterior al experimento no sustituye al lavado del instrumento posterior al
experimento.
Carga de reactivos de agrupación y SBS
Asegúrese de que los reactivos SBS estén listos para cargarlos en el instrumento.
Consumibles proporcionados por Illumina
} Ocho tapas de embudo
Consumibles proporcionados por el usuario
} Una botella de 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
} Un tubo Eppendorf abatible por celda de flujo (1,5 ml o 1,7 ml). No utilice tubos con
tapas roscadas.
Procedimiento
1
96
Registre el peso de cada reactivo en el formulario de seguimiento del laboratorio.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Abra la puerta del compartimento de reactivos.
3
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos de secuenciación con el siguiente
movimiento:
a Tire del mango hacia usted y, a continuación, levántelo.
b Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo superior del canal.
Asegúrese de que el mango del dispensador se encuentre colocado de forma segura
en la ranura.
4
Deslice la gradilla de reactivos SBS para extraerla del compartimento de reactivos.
5
Retire la tapa de cada botella de reactivo y sustitúyala por una tapa de embudo.
Sustituya la tapa de la botella de CRM en último lugar y, a continuación, cambie los
guantes.
6
Coloque cada una de las botellas de reactivos SBS en la gradilla, en la posición
numerada correspondiente. Asegúrese de que el extremo cónico de la botella esté
apoyado en la muesca de la base de la gradilla.
Tabla 12 Posiciones de reactivos SBS de HiSeq Rapid v2
Posición
Reactivo
Descripción
1
IMT
Mezcla maestra para incorporación
2
PW1
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
3
USM
Mezcla de lectura universal
4
PW1
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
5
USB
Tampón de secuenciación universal
6
USB
Tampón de secuenciación universal
7
CRM
Reactivo de mezcla maestra para clivaje
8
CWM
Mezcla de lavado para clivaje
Tabla 13 Posiciones de reactivos SBS de TruSeq Rapid (v1)
Posición
Reactivo
Descripción
1
IMM
Mezcla maestra para incorporación
2
PW1
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
3
SRM
Reactivo de mezcla maestra para lectura
4
PW1
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
5
USB
Tampón de secuenciación universal
6
USB
Tampón de secuenciación universal
7
CRM
Reactivo de mezcla maestra para clivaje
8
PW1
25 ml de PW1 o agua de laboratorio
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
97
Carga y cebado de reactivos
2
Realización de un experimento rápido
7
Cargue 25 ml de PW1 o de agua de laboratorio en las siguientes posiciones:
• [Para HiSeq Rapid SBS Kit v2] Posiciones 2 y 4.
• [Para TruSeq Rapid SBS Kit] Posiciones 2, 4 y 8.
8
Deslice la gradilla SBS hacia dentro del compartimento de reactivos y alinéela con la
guía elevada del suelo del compartimento.
9
Seleccione la casilla de verificación PW1 (25 ml) loaded (PW1 [25 ml] cargada).
10 Deslice la gradilla de reactivos PE para extraerla del compartimento de reactivos.
11 Retire las tapas de los tubos de reactivos y colóquelos en la gradilla en la posición
numerada correspondiente.
Tabla 14 Celda de flujo "single-read" (de lectura individual)
Posición
Reactivo
Descripción
10 ml de PW1 o agua de laboratorio
10
PW1
10 ml de PW1 o agua de laboratorio
11
PW1
10 ml de PW1 o agua de laboratorio
12
PW1
Mezcla para amplificación rápida
13
AMS
Premezcla rápida
14
FPM
Reactivo de desnaturalización rápida (contiene
15
FDR
formamida)
Cebador de Índice i5
16
HP9*
Cebador de Índice i7
17
HP12*
Cebador de Lectura 1
18
HP10
Solución de linealización rápida
19
FLS
* Se requiere HP9 solamente para experimentos de doble índice. Se requiere HP12 para todas las
opciones de indexación. Si no se utilizan HP9 ni HP12, cargue un tubo cónico de 15 ml con 10 ml
de PW1 o agua de laboratorio en la posición 16 para HP9 y en la posición 17 para HP12.
Tabla 15 Celda de flujo "paired-end"
Posición
Reactivo
Descripción
Mezcla para resíntesis rápida
10
FRM
Mezcla para linealización rápida 2 (Lectura 2)
11
FLM2
Mezcla para linealización rápida 1 (Lectura 1)
12
FLM1
Mezcla para amplificación rápida
13
AMS
Premezcla rápida
14
FPM
98
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Reactivo
FDR
16
17
18
19
HP11
HP12*
HP10
PW1
Descripción
Reactivo de desnaturalización rápida (contiene
formamida)
Cebador de Lectura 2
Cebador de Índice i7
Cebador de Lectura 1
10 ml de PW1 o agua de laboratorio
* HP12 solo es necesario para experimentos indexados. Si no se utiliza HP12, cargue un tubo cónico
de 15 ml con 10 ml de PW1 o agua de laboratorio en la posición 17.
12 Añada 10 ml de PW1 o agua de laboratorio a tubos cónicos de 15 ml en las siguientes
posiciones:
• Experimento "paired-end": posición 19
No indexado: posición 17
• Experimento de lectura individual: posiciones 10, 11 y 12
No indexado: posiciones 16 y 17
13 Deslice la gradilla PE hacia dentro del compartimento de reactivos y alinee las
gradillas con la guía elevada del suelo del compartimento.
14 Baje los dispensadores e introdúzcalos en las botellas de reactivos de secuenciación
como se indica a continuación:
a Tire del mango del dispensador hacia usted y, a continuación, bájelo.
b Inspeccione visualmente los dispensadores para asegurarse de que no se doblan
cuando se bajan para introducirlos en las tapas de embudo.
c Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo inferior del canal.
Carga de cadenas molde
Cargue la cadena molde de la biblioteca para la generación de grupos en el instrumento.
Para obtener las instrucciones de preparación de bibliotecas, consulte Desnaturalización y
dilución de bibliotecas para HiSeq y GAIIx (n.º de referencia 15050107).
NOTA
Si se ha utilizado el cBot para la generación de grupos, coloque dos tubos Eppendorf con 1 ml
de agua desionizada en la estación de carga en lugar de utilizar las siguientes instrucciones.
1
Añada la cadena molde de la biblioteca preparada de 420 µl en un tubo Eppendorf de
1,5 ml o 1,7 ml.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
99
Carga y cebado de reactivos
Posición
15
Realización de un experimento rápido
2
Cargue la cadena molde en la estación de carga tal y como se indica a continuación:
a Abra la puerta de la estación de carga.
b Extraiga el tubo Eppendorf que contiene agua y sustitúyalo por el tubo Eppendorf
que contiene 420 µl de cadena molde de la biblioteca preparada.
c Asegure las tapas por debajo de la barra de detrás de los tubos para evitar
interferencias con los dispensadores.
Figura 36 Estación de carga
NOTA
El líquido que queda en el tubo tras el experimento está muy diluido y no se puede
volver a utilizar.
d
Cierre con cuidado la puerta de la estación de carga y asegúrese de que los
dispensadores estén correctamente alineados con los tubos Eppendorf cuando la
tapa esté cerrada.
3
Seleccione la casilla de verificación Template loaded and template loading station
closed (Cadena molde cargada y estación de carga de cadenas molde cerrada).
4
Seleccione Next (Siguiente).
Cebado de reactivos
NOTA
Cebe los reactivos únicamente si ha utilizado HiSeq o TruSeq Rapid Duo Sample Loading Kit
para realizar la hibridación de la cadena molde en el instrumento cBot. De lo contrario, omita
el paso de cebado de reactivos y continúe con Carga de una celda de flujo en la página 106.
Entre los pasos para cebar reactivos se incluyen la limpieza del soporte de la celda de flujo,
la carga de una celda de flujo usada, la confirmación de flujo correcto y el inicio del
cebado.
100
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Abra la puerta del compartimento de la celda de flujo.
PRECAUCIÓN
No coloque líquidos sobre la puerta del compartimento de la celda de flujo o en la platina de
la celda de flujo cuando la puerta esté abierta. Los derrames en esta zona pueden dañar el
instrumento.
2
Compruebe que la palanca de la celda de flujo está en posición OFF (Desactivada).
Figura 37 Palanca de la celda de flujo en posición 0
3
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
4
En caso de presencia de la celda de flujo de un experimento anterior, retírela y
resérvela en un tubo de tampón de almacenamiento o agua de laboratorio para evitar
que se seque. Se puede utilizar para confirmar un flujo adecuado antes de cargar la
celda de flujo agrupada.
5
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
6
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
101
Carga y cebado de reactivos
Limpieza del soporte de la celda de flujo
Realización de un experimento rápido
Figura 38 Ubicaciones de los orificios de vacío
Carga de una celda de flujo para el cebado
NOTA
Utilice la celda de flujo usada para cebar los reactivos. No utilice la celda de flujo que desee
secuenciar.
1
Lave una celda de flujo usada con agua de laboratorio. Séquela con una toallita para
limpiar lentes o una toallita sin pelusa.
2
Limpie la celda de flujo con paños humedecidos en alcohol y una toallita para limpiar
lentes.
NOTA
No extraiga ni sustituya las juntas del distribuidor.
102
3
Coloque la celda de flujo usada en el soporte de la celda de flujo con los puertos de
entrada y salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que
la flecha del extremo izquierdo de la celda de flujo, que indica la dirección del flujo,
apunta hacia el instrumento.
4
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
A
B
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
5
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1 para activar el vacío
y fijar la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo está
verde, el vacío está activado.
Figura 40 Palanca de la celda de flujo en posición 1
6
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2 (extremo derecho). Cuando el color de la palanca de la
celda de flujo sea verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está
lista para usarse.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
103
Carga y cebado de reactivos
Figura 39 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
Realización de un experimento rápido
Figura 41 Palanca de la celda de flujo en posición 2
7
Introduzca el ID de la celda de flujo.
NOTA
Puede utilizar una celda de flujo TruSeq Rapid o HiSeq Rapid v2 para el cebado.
8
Asegúrese de marcar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) en la
pantalla de carga de la celda de flujo para el cebado y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
Confirmación de flujo correcto
Después de cargar la celda de flujo usada, compruebe que el flujo es correcto. Un flujo
correcto confirma que la celda de flujo y las juntas están bien instaladas y el distribuidor
está acoplado.
1
Seleccione la solución 2 (agua de laboratorio) de la lista desplegable.
PRECAUCIÓN
Utilice agua para confirmar que el flujo es correcto solo en una celda de flujo usada. No use
nunca agua para confirmar que el flujo es correcto en una celda de flujo agrupada.
104
2
Confirme los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 250
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 1500
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Seleccione Pump (Dispensar).
4
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Colocación de tubos y cebado de reactivos
1
Afloje los tubos de residuos de la celda de flujo apropiada y retírelos del contenedor de
residuos. No incluya los ocho tubos de la celda de flujo opuesta ni el tubo de la bomba
de condensación.
2
Coloque los tubos 4 y 5 en tubos de 15 ml diferentes.
3
Coloque los tubos 1, 2, 3, 6, 7 y 8 en una botella que contenga agua de laboratorio.
4
Seleccione Next (Siguiente).
5
Seleccione Start Prime (Iniciar cebado) para comenzar el cebado. Puede supervisar el
progreso del cebado en la pantalla de cebado.
6
Cuando termine, mida el residuo de cebado obtenido y compruebe que el volumen sea
de 2,5 ml ±10 %, 500 µl por reactivo y carril. Registre los resultados en el formulario de
seguimiento del laboratorio.
7
Vuelva a colocar los tubos 4 y 5 en el contenedor de residuos antes de continuar. Deje
los tubos de residuos 1, 2, 3, 6, 7 y 8 en la botella que contiene agua de laboratorio.
8
Seleccione Next (Siguiente).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
105
Carga y cebado de reactivos
Si detecta una presencia excesiva de burbujas, compruebe si las juntas están
obstruidas, reduzca la velocidad de aspiración a 1000 y bombee otros 250 µl de agua a
la celda de flujo. Si el problema persiste, retire la celda de flujo, repita los pasos de
limpieza y vuelva a cargarla.
Realización de un experimento rápido
Carga de una celda de flujo
El siguiente paso es retirar la celda de flujo usada y cargar la celda de flujo que desea para
la secuenciación.
NOTA
Si se ha utilizado el cBot para la generación de grupos, cargue la celda de flujo agrupada. Para
la generación de grupos integrada en el instrumento, cargue una nueva celda de flujo.
Retirada de la celda de flujo usada
1
Abra la puerta del compartimento de la celda de flujo.
Figura 42 Palanca de la celda de flujo en posición 1
106
2
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 1 para desacoplar los
distribuidores.
3
Mueva lentamente la palanca de la celda de flujo a la posición 0 para desacoplar la
junta de vacío y desbloquear la celda de flujo.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Carga de una celda de flujo
Figura 43 Palanca de la celda de flujo en posición 0
4
Levante la celda de flujo usada del soporte de la celda de flujo.
Limpieza del soporte de la celda de flujo
1
Utilice un nuevo par de guantes de látex sin polvo.
2
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
Figura 44 Inspección de los orificios de vacío
3
Inspeccione visualmente el soporte de la celda de flujo para comprobar que no hay
pelusas ni obstrucciones en los orificios de vacío.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
107
Realización de un experimento rápido
Limpieza de la celda de flujo
1
Extraiga la celda de flujo del contenedor de la celda de flujo con un par de pinzas
hemostáticas de plástico.
2
Enjuague la celda de flujo con agua de laboratorio y séquela con una toallita para
limpiar lentes.
3
Doble un paño humedecido en alcohol hasta que tenga el tamaño aproximado de la
celda de flujo.
4
Sujete con dos dedos los extremos de la celda de flujo agrupada. Asegúrese de que los
puertos de entrada y salida están boca arriba.
5
Limpie cada lado de la celda de flujo con un solo movimiento de arrastre. Repita,
doblando el paño después de cada pasada, hasta que la celda de flujo quede limpia.
6
Seque la celda de flujo con una toallita para limpiar lentes seca.
7
Proteja la celda de flujo del polvo hasta que vaya a cargarla en el instrumento.
Carga de la celda de flujo de secuenciación
NOTA
No sustituya las juntas del distribuidor. Sustituya las juntas del distribuidor cuando el
experimento de secuenciación haya finalizado y antes del lavado de mantenimiento.
108
1
Coloque la celda de flujo en el soporte de la celda de flujo con los puertos de entrada y
salida hacia abajo y el código de barras en el lado derecho. Asegúrese de que la flecha
del extremo izquierdo de la celda de flujo, que indica la dirección del flujo, apunta
hacia el instrumento.
2
Deslice suavemente la celda de flujo hacia los pasadores guía superiores y derechos,
hasta que se detenga.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
A
B
Pasador guía superior
Pasadores guía derechos
NOTA
Retire las manos de la celda de flujo antes de accionar el interruptor de vacío para evitar
posibles desvíos posteriores en la alineación.
3
Mueva con cuidado la palanca de la celda de flujo a la posición 1 para activar el vacío
y fijar la celda de flujo en su posición. Cuando la palanca de la celda de flujo está
verde, el vacío está activado.
Figura 46 Palanca de la celda de flujo en posición 1
4
Espere unos cinco segundos y, a continuación, mueva lentamente la palanca de la
celda de flujo a la posición 2. Cuando el color de la palanca de la celda de flujo sea
verde fijo, los distribuidores están en posición y la celda de flujo está lista para usarse.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
109
Carga de una celda de flujo
Figura 45 Colocación de la celda de flujo contra los pasadores guía superiores y derechos
Realización de un experimento rápido
Figura 47 Palanca de la celda de flujo en posición 2
5
Asegúrese de seleccionar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado)
en la pantalla Load Sequencing Flow Cell (Cargar celda de flujo de secuenciación).
Confirmación de flujo correcto
110
1
Seleccione la solución 5 (USB) en la lista desplegable.
2
Asegúrese de que ha introducido los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 250
• Aspirate Rate (Velocidad de aspiración): 1500
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
3
Asegúrese de que los tubos de salida de residuos 1, 2, 3, 6, 7 y 8 están en una botella de
agua limpia y que los tubos 4 y 5 están en el contenedor de residuos.
4
Seleccione Pump (Dispensar).
5
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
Si observa una presencia excesiva de burbujas, compruebe si las juntas del distribuidor
están obstruidas y repita el proceso.
a Seleccione la solución 6 (USB) para evitar agotar el USB de la posición 5.
b Reduzca la velocidad de aspiración a 1000 y dispense otros 250 µl de USB a la
celda de flujo.
6
Una vez haya confirmado un flujo correcto, seleccione Next (Siguiente) para continuar.
7
Asegúrese de que la palanca de la celda de flujo está de color verde y, a continuación,
cierre la puerta del compartimento de la celda de flujo.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Confirme que las casillas de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado) y Door
Closed (Puerta cerrada) están seleccionadas y, a continuación, seleccione Next
(Siguiente).
9
Seleccione Start (Iniciar) para comenzar el experimento de secuenciación.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
111
Carga de una celda de flujo
8
Realización de un experimento rápido
Monitorización del experimento
Supervise los criterios de medición del experimento que aparecen en la pantalla de
resumen del experimento, la fluídica y la adquisición de imágenes.
Figura 48 Pantalla de resumen del experimento
A
B
C
D
E
Barra de progreso: Utilice la barra de progreso para supervisar el número de ciclos que
han finalizado.
Gráfico de fluídica: Amplíe la sección de fluídica para supervisar los pasos de análisis
químico.
Configuración del experimento: Consulte los parámetros del experimento actual.
Gráfico de análisis: Utilice el gráfico de análisis para supervisar las puntuaciones de
calidad por ciclo.
Gráfico de imágenes: Utilice el gráfico de imágenes para supervisar las intensidades por
ciclo.
Informe de primera base
Si ha seleccionado la opción Confirm First Base (Confirmar primera base) durante la
configuración del experimento, se abrirá el cuadro de diálogo de confirmación de primera
base automáticamente tras finalizar la adquisición de imágenes del primer ciclo. El
experimento se pone en pausa en este paso.
112
1
Revise el informe de primera base del cuadro de diálogo de confirmación.
2
Si los resultados son satisfactorios, seleccione Continue (Continuar).
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Una vez finalizado el experimento, descargue y pese los reactivos y, a continuación, lave el
instrumento. Si desea obtener más información, consulte Procedimientos posteriores al
experimento en la página 115.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
113
Monitorización del experimento
Procedimientos posteriores al experimento
114
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 5 Procedimientos posteriores al experimento
Introducción
Descarga y cálculo del peso de los reactivos
Realización de un lavado de mantenimiento
Realización de un lavado con agua
Cambio de modos de secuenciación
Inactividad del instrumento
Apagado del instrumento
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Capítulo 5
Procedimientos posteriores
al experimento
116
117
118
122
124
126
127
115
Procedimientos posteriores al experimento
Introducción
Los procedimientos posteriores al experimento incluyen retirar los reactivos y calcular su
peso, así como lavar el instrumento. Se requiere un lavado con agua después de cada
experimento, con la opción de realizar un lavado de mantenimiento en su lugar tras un
experimento de rendimiento elevado. Illumina recomienda un lavado de mantenimiento.
Unos lavados regulares del instrumento garantizan un rendimiento continuado de la
siguiente manera:
} Expulsa cualquier resto de reactivo y muestra de los dispensadores y tubos de la
fluídica.
} Se evita la acumulación y cristalización de sales en los dispensadores y los tubos de la
fluídica.
} Evita la contaminación cruzada del experimento anterior, incluida la contaminación
cruzada tras cambiar de modo.
NOTA
Al final de un experimento, se debe realizar un lavado con agua para lavar el sistema y
comprobar la fluídica. Al configurar un experimento, el software confirma que se ha
realizado un lavado con agua o un lavado de mantenimiento durante las últimas 24 horas. Se
debe realizar un lavado de mantenimiento cada diez días. Transcurridos diez días del último
lavado de mantenimiento, el software le solicita que lleve a cabo un lavado de
mantenimiento.
116
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Abra la puerta del compartimento de reactivos.
2
Levante los dispensadores de la gradilla de reactivos SBS y "paired-end"
correspondientes siguiendo esta secuencia de movimiento:
a Tire del mango del dispensador hacia fuera.
b Levante el mango del dispensador hacia arriba mientras tira de él hacia fuera.
c Suelte el mango del dispensador en la ranura del extremo superior del canal.
Asegúrese de que el mango del dispensador se encuentre colocado de forma segura
en la ranura.
3
Deslice la gradilla de reactivos hacia el exterior del compartimento de reactivos con el
mango de la gradilla.
4
Retire cada botella de la gradilla de reactivos y registre el peso en el formulario de
seguimiento del laboratorio.
Visite la página de asistencia de HiSeq 2500 en el sitio web de Illumina para descargar
un formulario de seguimiento de laboratorio interactivo.
5
[En el modo de experimento rápido] Extraiga los tubos de la estación de carga de
bibliotecas.
ADVERTENCIA
Este grupo de reactivos contiene formamida, una amida alifática que es una toxina que
puede alterar la capacidad reproductora. Evite su inhalación, ingestión y el contacto con
la piel o los ojos puesto que puede provocar lesiones. Deseche los contenedores y el
contenido no utilizado de acuerdo con las normativas de seguridad oficiales de su zona.
Para obtener más información, consulte la hoja de datos de seguridad (SDS) de este kit en
support.illumina.com/sds.html.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
117
Descarga y cálculo del peso de los reactivos
Descarga y cálculo del peso de los reactivos
Procedimientos posteriores al experimento
Realización de un lavado de mantenimiento
Se debe llevar a cabo un lavado de mantenimiento cada diez días o al cambiar entre los
modos de rendimiento elevado y rápido, y de manera opcional tras cada experimento de
rendimiento elevado. Illumina recomienda realizar un lavado de mantenimiento tras cada
experimento de rendimiento elevado.
La pantalla Load Gasket (Cargar junta) se abre con un lavado de mantenimiento cada diez
días y al cambiar del modo rápido al de rendimiento elevado. Sustituya la junta de diez
puertos en el distribuidor delantero y la junta de ocho puertos en el distribuidor trasero
antes de continuar con el lavado, aunque esta pantalla no aparezca.
Un lavado de mantenimiento consiste en lavar el sistema con la solución Tween 20 y
ProClin 300.
Consumibles proporcionados por el usuario
}
}
}
}
Paños humedecidos en etanol
8 botellas, 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
10 tubos, 15 ml (Corning, n.º de catálogo 430052)
[Para el modo de experimento rápido] 1 tubo Eppendorf por cada celda de flujo para el
lavado de la estación de carga
} Agua de laboratorio
} Tween 20 (Sigma-Aldrich, n.º de catálogo P7949)
} ProClin 300 (Sigma-Aldrich, n.º de catálogo 48912-U)
Preparación de solución de lavado
Prepare 5 litros de solución de lavado de mantenimiento para su uso con 1 instrumento.
Esta solución se puede utilizar hasta 3 veces y almacenarse hasta 30 días a temperatura
ambiente.
NOTA
Deseche la solución de lavado de conformidad con las normativas de seguridad oficiales de
su zona.
118
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Prepare 250 ml de Tween 20 al 10 % combinando los siguientes volúmenes y
añadiendo el agua en primer lugar:
• Agua de laboratorio (225 ml)
• Tween 20 (25 ml)
2
Coloque una barra de agitación en un bidón vacío con una capacidad mínima de
6 litros.
3
Combine los siguientes volúmenes en el bidón, añadiendo agua en primer lugar:
• Agua de laboratorio (750 ml)
• Tween 20 al 10 % (250 ml)
• ProClin 300 (1,5 ml)
Estos volúmenes proporcionan el resultado de una solución de lavado de Tween 20 al
2,5 % y de ProClin 300 al 0,15 % aproximadamente.
4
Coloque el bidón en una placa de agitación y agite hasta que la solución se haya
mezclado bien.
5
Añada a la solución 4 litros de agua de laboratorio. Estos volúmenes proporcionan el
resultado de una solución de lavado de Tween 20 al 0,5 % y de ProClin 300 al 0,03 %
aproximadamente.
6
Continúe la agitación hasta que la solución se haya mezclado bien.
7
Reserve en un contenedor cerrado a temperatura ambiente hasta que esté listo para
llenar o rellenar los tubos y las botellas de reactivos con la solución de lavado.
Lavado con Tween 20 y ProClin 300
1
En la pantalla de bienvenida, seleccione Wash | Maintenance (Lavado |
Mantenimiento).
2
[Para los modos de rendimiento elevado] Seleccione Yes (Sí) para lavar las posiciones
de reactivos PE cuando el experimento de secuenciación haya incluido una lectura de
indexado o un análisis PE. De lo contrario, seleccione No. Seleccione Next (Siguiente)
para continuar.
3
Si utiliza una solución de lavado fresca, prepare los componentes de lavado como se
indica a continuación:
a Llene ocho botellas SBS con 250 ml de solución de lavado.
b Llene diez tubos PE con 12 ml de solución de lavado.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
119
Realización de un lavado de mantenimiento
1
Procedimientos posteriores al experimento
c
[Para el modo de experimento rápido] Llene los tubos Eppendorf con 1,6 ml de
solución de lavado y cárguelos en la estación de carga.
Si va a reutilizar una solución de lavado, rellene las botellas y los tubos guardados del
lavado anterior.
4
Para la solución de lavado fresca, asigne cada botella y tubo a una posición de la
gradilla de reactivos y mantenga dichas posiciones para cada lavado que se lleve a
cabo posteriormente. De lo contrario, la solución de lavado podría contaminarse con
los reactivos que estuvieran presentes en los dispensadores.
5
Cargue las botellas y los tubos en el instrumento en la gradilla de reactivos correcta.
6
Seleccione la casilla de verificación Wash solution loaded and template loading station
closed (Solución de lavado cargada y estación de carga de cadenas molde cerrada).
7
Seleccione Next (Siguiente).
8
Extraiga la celda de flujo de la platina de la celda de flujo y apártela hasta que esté
listo para volver a cargar la misma celda de flujo antes de iniciar el lavado.
9
Con un par nuevo de guantes, ejerza una ligera presión en un extremo de la junta
delantera hasta que se levante el extremo contrario. Utilice unas pinzas para coger y
extraer la junta. Repita el procedimiento para retirar la junta trasera.
Figura 49 Desinstalación de las juntas usadas de los distribuidores
10 Coloque una junta nueva de diez puertos en el distribuidor delantero y una junta
nueva de ocho puertos en el distribuidor trasero.
11 Vuelva a cargar la celda de flujo.
12 Asegúrese de seleccionar la casilla de verificación Vacuum Engaged (Vacío activado)
en la pantalla Load Wash Flow Cell (Cargar celda de flujo de lavado).
120
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
14 Realice una comprobación de fluídica:
a Seleccione la solución 2 en la lista desplegable. Acepte los valores predeterminados
de la bomba.
b Seleccione Pump (Dispensar).
c Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores. Las burbujas adicionales son normales
en el caso de lavado con las soluciones Tween 20 y ProClin 300 y no afectan al
volumen administrado.
15 Retire los ocho tubos de residuos de la celda de flujo apropiada del contenedor de
residuos. No incluya los ocho tubos de la celda de flujo opuesta ni los tubos de la
bomba de condensación.
16 [Para los modos de rendimiento elevado] Agrupe los ocho tubos de residuos con papel
Parafilm y asegúrese de mantenerlos todos nivelados. Introduzca los extremos de los
tubos agrupados en una botella de 250 ml.
17 [Para el modo de experimento rápido] Coloque los extremos de los tubos 4 y 5 en un
contenedor vacío. Coloque los extremos de todos los demás tubos en una botella de
agua limpia para evitar que entre aire en las bombas de las jeringas.
18 Seleccione Next (Siguiente) para iniciar el lavado.
19 Una vez finalizado el lavado, seleccione Return to Start (Volver a iniciar).
20 Mida el volumen administrado.
NOTA
Todas las botellas y los tubos se llenan hasta su capacidad correspondiente para garantizar
que los dispensadores se enjuagan. Sin embargo, el volumen administrado para cada
posición varía de forma que las botellas y los tubos contienen volúmenes diferentes cuando
ha finalizado el lavado.
Posiciones
8 posiciones SBS
10 posiciones PE
1 posición de biblioteca
Todas las posiciones
Volumen administrado de la celda
de flujo de rendimiento elevado
82 ml
76 ml
Vacío
19,75 ml por carril
Volumen administrado de la
celda de flujo rápida
29 ml
30 ml
1,2 ml
30,1 ml por carril
21 Desenvuelva los tubos de residuos y devuélvalos al contenedor de residuos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
121
Realización de un lavado de mantenimiento
13 Seleccione Next (Siguiente).
Procedimientos posteriores al experimento
Realización de un lavado con agua
Se requiere realizar un lavado con agua después de cada experimento de secuenciación.
Tras un experimento de rendimiento elevado, puede realizar un lavado de mantenimiento
en su lugar.
Realice un lavado con agua antes de empezar un nuevo experimento de secuenciación si el
instrumento ha permanecido inactivo durante un día o más.
Consumibles proporcionados por Illumina
} Agua de laboratorio
Consumibles proporcionados por el usuario
}
}
}
}
8 botellas, 250 ml (Corning, n.º de catálogo 430776)
10 tubos, 15 ml (Corning, n.º de catálogo 430052)
Agua de laboratorio
[Para el modo de experimento rápido] Un tubo Eppendorf abatible para cada celda de
flujo
Procedimiento
122
1
En la pantalla de bienvenida, seleccione Wash | Water (Lavado | Agua).
2
Seleccione Yes (Sí) para lavar las posiciones de los reactivos "paired-end". En caso
contrario, seleccione No para lavar solo las posiciones de los reactivos SBS. Seleccione
Next (Siguiente) para continuar.
3
Cargue el instrumento con agua de laboratorio de la siguiente forma:
a Llene ocho botellas SBS con 20 ml de agua de laboratorio.
b Llene diez tubos de PE con 10 ml de agua de laboratorio.
c [Para el modo de experimento rápido] Llene el tubo Eppendorf con 1 ml de agua de
laboratorio.
4
Asegúrese de que hay cargada una celda de flujo usada. Si es necesario, cargue una
celda de flujo usada. Seleccione Next (Siguiente).
5
Realice una comprobación de fluídica:
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
b
c
Seleccione la solución 2 en la lista desplegable. Acepte los valores predeterminados
de la bomba.
Seleccione Pump (Dispensar).
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
6
Retire los tubos de residuos de la celda de flujo apropiada del contenedor de residuos.
No incluya los tubos de residuos de la celda de flujo opuesta ni los tubos de la bomba
de condensación.
7
[Para los modos de rendimiento elevado] Agrupe los tubos de residuos con papel
Parafilm y asegúrese de mantener todos los extremos nivelados. Introduzca los
extremos de los tubos agrupados en una botella de 250 ml.
8
[Para el modo de experimento rápido] Coloque los extremos de los tubos 4 y 5 en un
contenedor vacío. Coloque el extremo de todos los demás tubos en una botella de agua
limpia para evitar que entre aire en las bombas de las jeringas.
9
Seleccione Next (Siguiente) para iniciar el lavado con agua.
Posiciones
8 posiciones SBS
8 posiciones SBS y 10 posiciones "paired-end"
[Modo de experimento rápido] 8 posiciones SBS, 10 posiciones
"paired-end" y 1 posición de carga de bibliotecas
Tiempo aproximado
del experimento
20 minutos
60 minutos
10 minutos
10 Cuando finalice el lavado, mida el volumen administrado y regístrelo en el formulario
de seguimiento del laboratorio.
Posiciones
8 posiciones SBS
8 posiciones SBS y 10 posiciones "paired-end"
[Modo de experimento rápido] 8 posiciones SBS, 10 posiciones "paired-end" y
1 posición de carga de bibliotecas
Volumen
administrado
32 ml
72 ml
9,5 ml por
carril
11 Desenvuelva los tubos de residuos y devuélvalos a la botella de residuos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
123
Realización de un lavado con agua
a
Procedimientos posteriores al experimento
Cambio de modos de secuenciación
Utilice el comando Mode Select (Selección de modo) de la pantalla de bienvenida para
cambiar entre los modos de rendimiento elevado y de experimento rápido.
Únicamente se pueden realizar de forma simultánea experimentos del mismo modo. Por lo
tanto, los cambios de modo se aplican tanto a la celda de flujo A como a la celda de flujo B.
Si se está utilizando una de las celdas de flujo, no se puede realizar ningún cambio de
modo.
Se requiere llevar a cabo un lavado de mantenimiento y cambiar la junta a la hora de
cambiar entre modos de experimento. Para obtener más información, consulte Realización de
un lavado de mantenimiento en la página 118.
Cambio del modo de rendimiento elevado al modo de experimento rápido
El cambio de un modo de rendimiento elevado (HiSeq v4 o TruSeq v3) al modo de
experimento rápido requiere un lavado de mantenimiento en modo rápido.
Especificación
Lavado de mantenimiento rápido
Tipo de celda de flujo
Celda de flujo rápida (dos carriles)
Junta de celda de flujo
Junta de 8 puertos o junta de 10
puertos
Reactivos
Tween 20 y ProClin 300
Volúmenes esperados (ml)
60,2 ml
Tiempo (minutos)
60 minutos
Cambio del modo de experimento rápido al modo de rendimiento elevado
El cambio del modo de experimento rápido a un modo de rendimiento elevado (HiSeq v4 o
TruSeq v3) requiere un lavado de mantenimiento en modo rápido seguido de un lavado de
mantenimiento de rendimiento elevado.
124
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Lavado de
mantenimiento rápido
Tipo de celda de flujo
Celda de flujo rápida
(dos carriles)
Celda de flujo de
rendimiento elevado
(ocho carriles)
Junta de celda de flujo
Junta de 8 puertos o
junta de 10 puertos
Junta de 8 puertos o junta
de 10 puertos
Volúmenes esperados (ml)
60,2 ml
158 ml
Tiempo (minutos)
60 minutos
130 minutos
Tiempo total de cambio de modo
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
~3 horas
125
Cambio de modos de secuenciación
Lavado de
mantenimiento de
rendimiento elevado
Especificación
Procedimientos posteriores al experimento
Inactividad del instrumento
Siga estas instrucciones para preparar el instrumento para que permanezca inactivo
durante un máximo de 10 días. Para los plazos de tiempo superiores a 10 días, consulte
Apagado del instrumento en la página 127.
126
1
Realice un lavado de mantenimiento completo para llenar completamente el sistema.
Para obtener más información, consulte Realización de un lavado de mantenimiento en la
página 118.
2
Deje la celda de flujo en la platina de la celda de flujo con la palanca de la celda de
flujo en la posición 2. Los distribuidores quedarán levantados.
3
[Para los modos de rendimiento elevado] Cargue 10 ml de agua de laboratorio en cada
posición de reactivo de las gradillas de reactivos. A continuación, sumerja los
dispensadores.
4
[Para el modo de experimento rápido] Cargue 10 ml de agua de laboratorio en cada
posición de reactivos de las gradillas de reactivos y 1 ml de agua de laboratorio en
cada posición de la estación de carga. A continuación, sumerja los dispensadores.
5
No apague el instrumento.
6
Antes de volver a utilizar el instrumento, realice un lavado con agua. Para obtener más
información, consulte Realización de un lavado con agua en la página 122.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Apague el instrumento solo si no tiene pensado utilizarlo en un periodo de diez días como
mínimo. Si tiene pensado utilizar el instrumento en un periodo de diez días como máximo,
consulte Inactividad del instrumento en la página 126.
Lleve a cabo el siguiente procedimiento para preparar de forma segura la fluídica y apagar
el sistema.
1
Realice un lavado de mantenimiento para lavar el sistema. Para obtener más
información, consulte Realización de un lavado de mantenimiento en la página 118.
2
Retire la celda de flujo de la platina de la celda de flujo.
3
Con un paño humedecido en alcohol o una toallita sin pelusa humedecida en etanol o
isopropanol, limpie con cuidado la superficie del soporte de la celda de flujo hasta que
esté limpia.
PRECAUCIÓN
Procure que no entre alcohol en los orificios de vacío ni alrededor de los distribuidores. Si es
necesario, utilice una toallita de laboratorio sin pelusa para secar la platina.
4
[Para los modos de rendimiento elevado] Cargue 10 ml de agua de laboratorio en cada
posición de reactivo de las gradillas de reactivos. A continuación, sumerja los
dispensadores.
5
[Para el modo de experimento rápido] Cargue 10 ml de agua de laboratorio en cada
posición de reactivo y 1 ml de agua de laboratorio en cada posición de la estación de
carga. A continuación, sumerja los dispensadores.
6
Apague el instrumento.
7
Para reiniciar el instrumento, cargue agua en todas las posiciones de reactivos,
encienda el instrumento y realice un lavado con agua. Para obtener más información,
consulte Realización de un lavado con agua en la página 122.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
127
Apagado del instrumento
Apagado del instrumento
128
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 6 Análisis en tiempo real
Introducción
Descripción de análisis en tiempo real
Supervisión de criterios de medición de experimento
Flujo de trabajo del análisis en tiempo real
Archivos de salida de secuenciación
Estructura de carpetas de salida
Numeración de placas
Imágenes en miniatura
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
130
131
134
136
141
143
145
146
129
Capítulo 6
Análisis en tiempo real
Análisis en tiempo real
Introducción
El software de análisis en tiempo real (RTA) realiza un análisis de las imágenes integrado
en el instrumento y la llamada de bases durante un experimento de secuenciación en el
instrumento HiSeq 2500, lo que ahorra un valioso tiempo en los posteriores análisis de
datos.
130
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
El análisis en tiempo real se ejecuta en el ordenador del instrumento, en el que realiza la
llamada de bases y asigna una puntuación de calidad a cada llamada de bases.
El software realiza un seguimiento del estado de cada placa y determina cuándo se debe
avanzar al siguiente paso del proceso. Cuando avanza una placa, el análisis en tiempo
real genera un archivo para el paso finalizado y, a continuación, inicia el siguiente paso.
Por tanto, el software puede determinar el estado de cada placa en función de los archivos
que existan. Si ha finalizado el análisis en tiempo real, este guarda los datos del
experimento y puede reanudar el procesamiento.
Entradas de análisis en tiempo real
El análisis en tiempo real requiere los siguientes archivos de entrada:
} Archivos de intensidad de grupos, que contienen los resultados de los análisis de
imágenes.
} RunInfo.xml, que el software de control genera automáticamente al inicio del
experimento. A partir de este archivo, el análisis en tiempo real lee el nombre del
experimento, el número de ciclos, si una lectura ha sido indexada y el número de
placas de la celda de flujo.
} HiSeq.Configuration.xml, que es un archivo de configuración del instrumento en el
formato XML.
} RTA.exe.config, que es un archivo de configuración de software en formato XML.
El análisis en tiempo real utiliza los parámetros del experimento introducidos durante su
configuración y recibe los comandos del software de control que incluyen información
sobre cuándo iniciarlo y la ubicación de RunInfo.xml.
Salidas de análisis en tiempo real
Las placas son pequeñas áreas de adquisición de imágenes en la celda de flujo definidas
como un campo de visión por la cámara. Para cada placa que se analiza, el análisis en
tiempo real produce un resultado principal como un conjunto de archivos de filtro y
archivos de llamadas de bases clasificadas por calidad. Otros archivos admiten la
generación de archivos de salida principal.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
131
Descripción de análisis en tiempo real
Descripción de análisis en tiempo real
Análisis en tiempo real
} Archivos de llamadas de bases: Para cada placa que se analiza, se genera un archivo
de llamada de bases comprimido (*.bcl) para cada placa por ciclo. El archivo de
llamada de bases contiene la llamada de bases y la puntuación de calidad asociada.
} Archivos de filtro: Cada placa produce información de filtro que se incluye en un
archivo de filtro (*.filter) para cada placa a lo largo de todo el experimento. El archivo
de filtro especifica si los grupos han superado los filtros.
} Archivos de ubicación de grupos: Un archivo de ubicación de grupos (*.locs) contiene
las coordenadas X e Y para cada grupo de la celda de flujo.
} Archivos de estadísticas: Para cada ciclo, se produce un archivo de estadísticas
(*.stats). El archivo de estadísticas contiene estadísticas agregadas para el ciclo.
Los archivos de resultados principales se utilizan para los análisis de datos posteriores.
Utilice bcl2fastq para la demultiplexación y la conversión de los archivos .bcl en archivos
FASTQ, que se pueden utilizar como entrada para la alineación. Para convertir datos desde
HiSeq, utilice bcl2fastq 1.8.4 o una versión posterior.
El análisis en tiempo real proporciona criterios de medición en tiempo real de la calidad de
los experimentos guardados como archivos InterOp. Los archivos InterOp son archivos
binarios que contienen criterios de medición relacionados con placas, ciclos y lecturas para
la visualización de criterios de medición en el visor del análisis de secuenciación. Para la
visualización de los criterios de medición generados por el análisis en tiempo real, utilice
el visor del análisis de secuenciación v1.8.20 o una versión posterior.
Para obtener más información, consulte Archivos de salida de secuenciación en la página 141.
Solución de errores de análisis en tiempo real
El análisis en tiempo real mantiene archivos de registro en la carpeta RTALogs. Si se
produce un error, este se registra en un archivo de registro de error denominado *Error.txt.
NOTA
El software crea el archivo de registro de error solo si se produce un error.
Transferencia de datos
Durante el experimento, el análisis en tiempo real (RTA) copia de manera automática los
datos generados a partir de los archivos de imágenes sin procesar en la ubicación
especificada para la carpeta de salida. Si el análisis de imágenes se retrasa, el análisis en
tiempo real (RTA) detiene el procesamiento y coloca la celda de flujo en un estado seguro.
El procesamiento se reanuda cuando los datos de las imágenes están disponibles.
132
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Si utiliza BaseSpace, Illumina recomienda una velocidad de conexión de red mínima de
10 Mbps. Para obtener información adicional, consulte la Guía de preparación del centro de
HiSeq 2500, 1500 y 2000 (n.º de referencia 15006407_ESP).
La transferencia de datos finaliza cuando se genera un archivo de marcador denominado
Basecalling_Netcopy_complete.txt. Uno de estos archivos se genera para cada lectura y se
genera uno para todo el experimento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
133
Descripción de análisis en tiempo real
NOTA
Si el análisis en tiempo real (RTA) deja de funcionar, el procesamiento se reanudará
automáticamente durante el siguiente ciclo, en el punto adecuado de la celda de flujo. No
reinicie el análisis en tiempo real de forma manual.
Análisis en tiempo real
Supervisión de criterios de medición de experimento
El análisis en tiempo real genera criterios de medición de calidad cuando comienza el
análisis de imágenes. Sin embargo, no todos los criterios de medición están disponibles en
los primeros ciclos, ya que algunos procesos requieren varios ciclos para generar datos.
134
Data
Ciclo
Análisis de imágenes
Después del ciclo 5.
Durante los primeros cinco ciclos del experimento, el software
genera una plantilla de las ubicaciones de los grupos.
Llamadas de bases
Después del ciclo 12.
La llamada de bases comienza tras estimar la matriz de color en
el ciclo 12.
Cálculos de hebra
retrasada
Después del ciclo 25.
Las correcciones en la hebra retrasada para los 25 primeros ciclos
determinan el cálculo de la hebra retrasada.
Puntuaciones de calidad
Después del ciclo 25.
Se genera una puntuación de calidad para las lecturas que
superan el filtro de calidad. Dado que las puntuaciones de calidad
requieren intensidades corregidas de futuros ciclos, la puntuación
de calidad siempre sigue a la llamada de bases.
Índices de error
Después del ciclo 25.
Los índices de error se generan solo cuando los grupos de PhiX
están presentes y la opción Align to PhiX (Alinear a PhiX) se ha
seleccionado durante la configuración del experimento.
Controles en línea
En el ciclo 52 de cada lectura o al final del experimento en el caso
de los experimentos que cuentan con menos de 52 ciclos.
Los controles en línea se generan únicamente para los métodos
de preparación de bibliotecas de TruSeq.*
Recuento de índices
Después de que finalicen las lecturas de índices.
El recuento de índices por carril se genera únicamente cuando se
ofrece una hoja de muestras.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Visor del análisis de secuenciación
El software del visor del análisis de secuenciación muestra los criterios de medición
generados durante el experimento de secuenciación. Los criterios de medición aparecen en
forma de diagramas, gráficos y tablas. El visor del análisis de secuenciación se abre
automáticamente una vez que estén disponibles los criterios de medición.
Seleccione Refresh (Actualizar) en cualquier momento durante el experimento para ver los
criterios de medición actualizados.
Para obtener información adicional, consulte la Guía del usuario del Visor del análisis de
secuenciación (SAV), n.º de referencia 15020619.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
135
Supervisión de criterios de medición de experimento
* El visor del análisis de secuenciación v1.8.44 y las versiones posteriores no incluyen la ficha TruSeq
Controls (Controles de TruSeq), en la que el SAV informa de los resultados del análisis de los
controles en línea.
Análisis en tiempo real
Flujo de trabajo del análisis en tiempo real
El análisis en tiempo real y el software de control llevan a cabo el flujo de trabajo del
análisis en tiempo real. El flujo de trabajo incluye los siguientes pasos:
} Generación de plantillas: Para asignar las ubicaciones de grupos.
} Registro y extracción de intensidad: Registra la ubicación de cada imagen en la celda
de flujo y determina un valor de intensidad para cada grupo.
} Corrección de la matriz de color: Para corregir la comunicación cruzada entre canales.
} Corrección empírica de hebras: Para corregir los efectos de la hebra retrasada y la
hebra adelantada.
} Llamada de bases: Para determinar una llamada de bases para cada grupo.
} Puntuación de calidad: Para asignar una puntuación de calidad a cada llamada de
bases.
Generación de plantillas
El primer paso del flujo de trabajo es la generación de plantillas que define la posición de
cada grupo en una placa mediante el uso de las coordenadas X e Y. La plantilla se utiliza
como referencia en el paso siguiente de registro y extracción de intensidad.
Debido a la matriz aleatoria de grupos en la celda de flujo, la generación de plantillas
requiere datos de imágenes de los primeros cinco ciclos del experimento. Tras el último
ciclo de la plantilla para la adquisición de imágenes de una placa, se genera la plantilla.
Las posiciones en los grupos se escriben en un archivo de ubicación de grupos (*.locs) o en
un archivo de ubicación de grupos comprimido (*.clocs) para cada placa. Para obtener más
información, consulte Archivos de salida de secuenciación en la página 141.
Registro y extracción de intensidad
El registro y la extracción de intensidad empiezan tras generarse la plantilla de posiciones
de grupo.
} El registro alinea las imágenes producidas durante cada ciclo posterior a la generación
de plantillas en relación con la plantilla.
} La extracción de intensidad determina un valor de intensidad para cada grupo de la
plantilla para una imagen determinada.
Si se produce un error en el registro de cualquier imagen en un ciclo, no se generará
ninguna llamada de bases para esa placa en ese ciclo. Utilice el software del visor del
136
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Corrección de la matriz de color
Tras el registro y la extracción de intensidad, el análisis en tiempo real corrige la
comunicación cruzada entre canales. La comunicación cruzada se produce cuando un
grupo muestra intensidad en el canal C y, al mismo tiempo, cierta intensidad en el canal
A, por ejemplo. Mediante el uso de una matriz de color de 4 x 4, el análisis en tiempo real
genera intensidades corregidas de matriz con una comunicación cruzada reducida o
inexistente, y equilibra diferencias de intensidad global entre canales de color.
Corrección empírica de hebras
Durante la reacción de secuenciación, cada cadena de ADN de un grupo se amplía en una
base por cada ciclo. La hebra retrasada y la hebra adelantada se producen cuando una
cadena queda fuera de la fase en relación con el ciclo de incorporación actual.
} La hebra retrasada se produce cuando una base se atrasa.
} La hebra adelantada se produce cuando una base se avanza.
Figura 50 Hebra retrasada y hebra adelantada
A
B
Lectura con una base con hebra retrasada
Lectura con una base con hebra adelantada
El análisis en tiempo real corrige los efectos de la hebra retrasada y la hebra adelantada
mediante el uso del algoritmo de corrección empírica de hebras que maximiza la calidad
de datos en cada ciclo durante el experimento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
137
Flujo de trabajo del análisis en tiempo real
análisis de secuenciación para examinar las imágenes en miniatura e identificar las
imágenes que no se han podido registrar. Utilice los archivos de ajuste para resolver los
problemas de registro. Para obtener más información, consulte Archivos de salida de
secuenciación en la página 141.
Análisis en tiempo real
Los resultados de hebra retrasada y hebra adelantada se registran en el archivo llamado
EmpiricalPhasing_[carril]_[lectura]_[placa].txt, que se encuentra en la carpeta
Data\Intensities\BaseCalls\Phasing.
Llamada de bases
Tras corregir el color de las intensidades sin procesar, y corregir la hebra retrasada y la
hebra adelantada, el canal de color con mayor intensidad es la llamada de bases para ese
grupo en ese ciclo. La llamada de bases en el HiSeq 2500 mediante el análisis en tiempo
real empieza tras el ciclo 12.
La llamada de bases determina una base (A, C, G o T) para cada grupo de una placa
determinada en un ciclo específico. Las llamadas de bases se guardan en archivos de
llamadas de bases (*.bcl), que son archivos binarios con 1 byte por llamada y puntuación
de calidad. El archivo de llamada de bases contiene la llamada de bases y la puntuación
de calidad asociada. Para realizar una llamada de bases, los grupos deben superar antes el
filtro de castidad. Los grupos que no superan el filtro o a los que no se puede llamar
porque están sin imagen o falla el registro de imagen se etiquetan como ausencia de
llamadas. La ausencia de llamadas se representa como (N).
Grupos que superan el filtro
Durante los 25 primeros ciclos de Lectura 1, el filtro de castidad elimina los grupos menos
fiables de los resultados del análisis. Los grupos superan el filtro si no más de dos
llamadas de base presentan un valor de castidad inferior a 0,6 en los primeros 25 ciclos. La
castidad es la relación de la mayor intensidad de base dividida por la suma de la mayor
intensidad de base y la segunda mayor intensidad de base. El porcentaje de grupos que
superan el filtro se representa en los informes de análisis como % PF.
Los grupos se forman en una matriz aleatoria y se ubican durante la generación de
plantillas. Los grupos de baja calidad se eliminan del recuento de grupos sin procesar
durante la generación de plantillas, lo que genera un porcentaje relativamente mayor de
grupos que superan el filtro.
138
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Una puntuación de calidad, o puntuación Q, es una predicción de la probabilidad de
obtener una llamada de bases incorrecta. Una puntuación Q superior implica que una
llamada de bases es más fiable y, por lo tanto, la probabilidad de que sea correcta es
superior.
La puntuación Q sirve como una forma concisa de comunicar probabilidades de error
pequeñas. Las puntuaciones de calidad se representan como Q(X), donde X es la
puntuación. En la siguiente tabla figura la relación entre la puntuación de calidad y la
probabilidad de error.
Puntuación Q, Q(X)
Q40
Q30
Q20
Q10
Probabilidad de error
0,0001 (1 en 10 000)
0,001 (1 en 1000)
0,01 (1 en 100)
0,1 (1 en 10)
NOTA
La puntuación de calidad se basa en una versión modificada del algoritmo Phred. Si desea
obtener más información, consulte en.wikipedia.org/wiki/Phred_quality_score.
La puntuación de calidad calcula un conjunto de predictores para cada llamada de bases
y, a continuación, utiliza los valores de los predictores para determinar la puntuación Q en
la tabla de calidad. Las tablas de calidad se crean para proporcionar predicciones de
calidad con una precisión óptima para experimentos generados mediante una
configuración de plataforma de secuenciación y versión de análisis químico específicas.
Tras determinar la puntuación Q, los resultados se registran en los archivos de llamadas
de bases (*.bcl). Para obtener más información, consulte Archivos de salida de secuenciación en
la página 141.
Agrupación de puntuaciones Q
El análisis en tiempo real agrupa las puntuaciones de calidad en rangos específicos,
o grupos, y asigna un valor a cada rango. La agrupación de puntuaciones Q reduce
significativamente los requisitos de espacio de almacenamiento sin que ello afecte a la
precisión o al rendimiento de las aplicaciones de etapas posteriores.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
139
Flujo de trabajo del análisis en tiempo real
Puntuación de calidad
Análisis en tiempo real
La agrupación de puntuaciones Q contribuye a la eficiencia de los procesos de análisis y
los requisitos de transferencia de datos asociados con el alto rendimiento de HiSeq 2500.
El archivo *.bcl resultante es más pequeño porque los algoritmos de compresión pueden
comprimir el archivo de modo más efectivo. La cantidad de datos que se escriben en el
ordenador del instrumento y que se transfieren a la ubicación de red son menores, lo que
permite que el archivo se copie de forma más rápida.
140
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Tipo de archivo
Descripción del archivo, ubicación y nombre
Archivos de llamadas
de bases
Cada placa analizada se incluye en un archivo de llamada de bases que
contiene la llamada de bases y la puntuación de calidad codificada.
Data\Intensities\BaseCalls\L00[X]: Los archivos se almacenan por
carpetas de ciclo para cada carril.
s_[Carril]_[Placa].bcl.gz, donde el carril es el número de carril de un
dígito y la placa es el número de placa de cuatro dígitos. Los archivos
de llamadas de bases se comprimen mediante el uso de la compresión
gzip.
Archivos de ubicación
de grupos
Para cada placa, un archivo de ubicación de grupo contiene las
coordenadas X e Y para cada grupo. Los archivos de ubicación de
grupos son el resultado de la generación de plantillas.
Data\Intensities
Archivos de filtro
El archivo de filtro especifica si un grupo ha superado los filtros. Los
archivos de filtro se generan en el ciclo 26 mediante el uso de 25 ciclos
de datos.
Data\Intensities\BaseCalls\L00[X]: Los archivos se almacenan en una
carpeta para cada carril y placa.
s_[carril]_[placa].filter
Archivos InterOp
Archivos de informes binarios utilizados por el visor del análisis de
secuenciación. Los archivos InterOp se actualizan durante el
experimento.
Carpeta InterOp
Archivos de registro
Registra los eventos y se actualizan a lo largo del experimento.
Data\RTALogs
Archivos de ajuste
Para cada experimento se crean dos archivos de ajuste:
• offsets.txt: Contiene los ajustes de placa para cada ciclo y canal en
relación con la plantilla.
• SubTileOffsets.txt: Contiene el desplazamiento medido para cada
cuadrante de cada imagen en relación con el marco de referencia.
Data\Intensities\Offsets
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
141
Archivos de salida de secuenciación
Archivos de salida de secuenciación
Análisis en tiempo real
Tipo de archivo
Descripción del archivo, ubicación y nombre
Archivos de hebras
retrasadas
Contiene información empírica de hebras retrasadas por placa. Los
archivos de hebras se crean en la primera base del ciclo de llamada de
bases y se actualizan tras cada base del ciclo de llamada de bases.
Data\Intensities\BaseCalls\Phasing
EmpiricalPhasing_[carril]_[lectura]_[placa].txt: La placa se representa
con un número de cuatro dígitos que indica la superficie, el sector y la
placa.
Archivo de configuración
del análisis en tiempo
real
142
Creado al inicio del experimento, el archivo de configuración del
análisis en tiempo real contiene los parámetros de configuración del
experimento.
Data\Intensities
RTAConfiguration.xml
Archivos de estadísticas
Estadísticas creadas en la llamada de bases para cada ciclo.
Data\Intensities\Basecalls\L00[X]\C[X.1]: Los archivos se almacenan
en una carpeta para cada carril y una subcarpeta para cada ciclo.
Archivo de información
del experimento
Indica el nombre del experimento, el número de ciclos de cada lectura,
si la lectura es una lectura indexada y el número de sectores y placas
de la celda de flujo. El archivo de información del experimento se crea
al inicio del experimento.
[Carpeta raíz]
RunInfo.xml
Archivos de vistas en
miniatura
Una imagen en miniatura para cada canal y placa en cada sector de
cada ciclo durante la adquisición de imágenes.
Thumbnail_Images\L00[X]\C[X.1]: Los archivos se almacenan en una
carpeta para cada carril y una subcarpeta para cada ciclo.
s_[carril]_[placa]_[canal].jpg: La placa se representa con un número de
cuatro dígitos que indica la superficie, el sector y la placa. Consulte
Numeración de placas en la página 145.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Config: Ajustes de configuración del experimento.
Data
Intensities
BaseCalls
L00[X]: Archivos de llamadas de bases para cada carril, agregados en
un archivo por ciclo.
Phasing: Archivos empíricos de hebras, un archivo por placa en cada
ciclo.
L00[X]: Archivos de ubicación de grupos agregados para cada carril.
Offsets: Dos archivos de ajustes para el experimento.
RTAConfiguration.xml
Images
Focus
L00[X]: Imágenes de enfoque para cada carril.
InterOp: Archivos binarios utilizados por el visor del análisis de secuenciación.
Logs: Archivos de registro que describen los pasos operativos.
Recipe: Archivo de fórmulas específico del experimento con el nombre del ID del
cartucho de reactivo.
RTALogs: Archivos de registro que describen los eventos del análisis en tiempo
real.
Thumbnail_Images: Imágenes en miniatura de 9 ubicaciones de cada placa,
generadas para cada ciclo y base.
RunInfo.xml
RunParameters.xml
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
143
Estructura de carpetas de salida
Estructura de carpetas de salida
Análisis en tiempo real
Nombre y ruta de la carpeta del experimento
La carpeta del experimento es la carpeta raíz para los resultados de un experimento de
secuenciación. Durante la configuración del experimento, el software le solicita que
introduzca la ruta de la carpeta del experimento. De manera predeterminada, la carpeta se
denomina con el siguiente formato:
AAMMDD_<Nombre del ordenador>_<Número del experimento>_<ID de la celda de
flujo>
Ejemplo: 110114_SN106_0716_A90095ACXX
El número del experimento aumenta en incrementos de uno cada vez que realiza un
experimento en el instrumento. El ID de la celda de flujo introducido durante los pasos de
configuración del experimento se añade al nombre de la carpeta del experimento.
La carpeta del experimento se guarda en la ruta de salida especificada en la pantalla Scan
(Lectura) durante la configuración del experimento. La carpeta del experimento temporal
para la celda de flujo A se guarda en la unidad D: y la carpeta del experimento temporal
para la celda de flujo B se guarda en la unidad E:.
144
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
La celda de flujo de rendimiento elevado de HiSeq se digitaliza en 96 placas en cada carril,
inferior y superior, para cada ciclo. Cada carril tiene tres sectores con 16 placas por sector.
La celda de flujo rápida se digitaliza en 64 placas. Cada carril tiene dos sectores con 16
placas por sector.
El nombre de la placa contiene un número de cuatro dígitos que representa la posición en
la celda de flujo.
} El primer dígito representa la superficie:
• 1 para la parte superior
• 2 para la parte inferior
} El segundo dígito representa el sector:
• 1 para el primer sector
• 2 para el segundo sector
• 3 para el tercer sector (según sea necesario)
NOTA
Un sector es una columna de placas dentro de un carril de la celda de flujo.
} Los últimos dos dígitos representan la placa, de 01 a 16. La numeración de las placas
comienza por 01 en el extremo de salida de la celda de flujo hasta 16 en el extremo de
entrada.
Figura 51 Numeración de placas
Este ejemplo indica una placa de la superficie superior de la celda de flujo, en el
segundo sector y en la séptima placa.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
145
Numeración de placas
Numeración de placas
Análisis en tiempo real
Imágenes en miniatura
Puede configurar el software de control para generar imágenes en miniatura en formato de
archivo *.jpg. Las imágenes en miniatura se generan para cada ciclo y base.
El software de control recoge imágenes de nueve secciones de una placa. Estas nueve
imágenes se combinan en una imagen en miniatura y se pueden utilizar para solucionar
problemas de un experimento. Las imágenes en miniatura no son aptas para el análisis de
imágenes, pero se pueden utilizar para la solución de problemas.
Figura 52 Imagen en miniatura
146
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Capítulo 7 Solución de problemas
Introducción
Posibles problemas de configuración de experimentos
Escalonamiento de experimentos en la celda de flujo A y la celda de flujo B
Realización de una comprobación de fluídica
BaseSpace no está disponible
Detención y reanudación de un experimento
Pausa de un experimento
Rehibridación del cebador
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
148
149
151
152
153
154
158
160
147
Capítulo 7
Solución de problemas
Solución de problemas
Introducción
Esta sección describe lo que puede hacer si se produce algún problema durante un
experimento de secuenciación, además de cómo realizar una comprobación de fluídica
desde la pantalla Welcome (Bienvenida).
148
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Problema
El software no se ha
inicializado.
Causa posible
El software no pudo
iniciar dispositivos de
hardware internos.
La palanca de la celda
de flujo está en
naranja.
La celda de flujo no se
ha asentado
correctamente.
No se ha sellado al
vacío.
Los distribuidores no
se elevaron.
La palanca de la celda
de flujo parpadea en
color naranja.
Se proporciona vacío
pero no es adecuado.
La palanca de la celda
de flujo parpadea en
color verde.
La presión de vacío es
adecuada.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Acción
Cierre el mensaje de error y, a continuación,
vuelva a iniciar el software del instrumento.
Si el problema persiste, reinicie el ordenador del
instrumento. Si va a reiniciar el ordenador,
primero debe apagar el instrumento para
garantizar que la unidad DoNotEject se reconoce
correctamente.
Si el problema persiste después de reiniciar el
ordenador del instrumento, apague el
instrumento, espere un mínimo de 60 segundos
y, a continuación, reinicie el instrumento.
Retire la celda de flujo y repita los pasos de
limpieza.
Asegúrese de que las juntas están presentes y
bien asentadas.
Vuelva a cargar la celda de flujo.
Si los pasos anteriores no funcionan, intente
sustituir las juntas y, a continuación, vuelva a
cargar la celda de flujo.
Retire la celda de flujo y repita los pasos de
limpieza.
Asegúrese de que las juntas están presentes y
bien asentadas.
Vuelva a cargar la celda de flujo.
Si los pasos anteriores no funcionan, intente
sustituir las juntas y, a continuación, vuelva a
cargar la celda de flujo.
Cambie la palanca de la celda de flujo a la
posición 2.
149
Posibles problemas de configuración de experimentos
Posibles problemas de configuración de experimentos
Solución de problemas
Problema
Suministro de fluidos
deficiente.
150
Causa posible
Posibles burbujas en el
sistema.
Acción
Vuelva a colocar la celda de flujo y confirme que
los orificios están orientados hacia abajo.
Busque precipitado blanco alrededor de las
juntas. En caso de presencia de precipitado,
cambie las juntas. Cambie siempre las juntas
antes de realizar un lavado de mantenimiento
del instrumento.
Confirme que los dispensadores se encuentran
totalmente bajados y que dichos dispensadores
se encuentran en contacto con los reactivos.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
1
Espere a que el experimento de la celda de flujo contigua comience un análisis químico
y, a continuación, seleccione Pause (Pausa). Se abre el menú Pause (Pausa).
NOTA
Detenga siempre el experimento actual durante un paso de química en lugar de durante un
paso de adquisición de imágenes.
2
Seleccione Normal Pause (Pausa normal).
3
Espere a que el software realice el paso de química actual. El sistema cambia a un
estado seguro de forma automática.
4
Tras poner en pausa el experimento contiguo, configure el nuevo.
5
Después de cargar la nueva celda de flujo para el nuevo experimento, cierre la puerta
del compartimento.
6
Seleccione Start (Iniciar) para comenzar el nuevo experimento de secuenciación.
7
Seleccione Resume (Reanudar) en la celda de flujo contigua para reanudar el
experimento detenido. El software controla automáticamente los procesos de química y
adquisición de imágenes de ambas celdas de flujo.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
151
Escalonamiento de experimentos en la celda de flujo A y la celda de flujo B
Escalonamiento de experimentos en la celda de flujo A
y la celda de flujo B
Solución de problemas
Realización de una comprobación de fluídica
El botón Check (Comprobar) en la pantalla de bienvenida realiza una comprobación de
fluídica. Utilice esta opción durante la instalación del instrumento y la solución de
problemas con la fluídica.
152
1
Cargue una celda de flujo usada en el instrumento.
2
Cargue ocho botellas de SBS con PW1 o con agua de laboratorio y cargue las botellas
en la gradilla de reactivos correspondiente. Cargue la gradilla en el instrumento.
3
Seleccione Check (Comprobar) en la pantalla Welcome (Bienvenida).
4
Seleccione la solución 5 (SB2) de la lista desplegable. Si va a realizar una
comprobación de fluídica con la celda de flujo usada, seleccione la solución 2, que es
agua.
5
Introduzca los siguientes valores predeterminados:
• Volume (Volumen): 250
• [Para los modos de HiSeq v4 y TruSeq v3] Aspirate Rate (Velocidad de aspiración):
250
• [Para el modo de experimento rápido] Aspirate Rate (Velocidad de aspiración):
1500
• Dispense Rate (Velocidad de dispensación): 2000
6
Seleccione Pump (Dispensar). Si tiene que poner en pausa la comprobación de la
fluídica, seleccione Pause (Pausa).
7
Inspeccione visualmente la celda de flujo para comprobar si hay burbujas en los
carriles o fugas cerca de los distribuidores.
Si detecta una presencia excesiva de burbujas, compruebe si las juntas del distribuidor
están obstruidas, reduzca la velocidad de aspiración a 100 y bombee otros 250 µl de
agua a la celda de flujo.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Si BaseSpace no está disponible, abra Servicios de Windows para asegurarse de que
BaseSpace Broker se haya iniciado. Si no se ha iniciado, reinícielo. Si los servicios se están
ejecutando y BaseSpace aún no está disponible, póngase en contacto con el servicio de
asistencia técnica de Illumina.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
153
BaseSpace no está disponible
BaseSpace no está disponible
Solución de problemas
Detención y reanudación de un experimento
Puede que sea necesario detener un experimento si no se configuró correctamente, si la
calidad de los datos es deficiente o si se ha producido un error en el hardware. Para
reanudar un experimento detenido, asegúrese de que selecciona las opciones de detención
adecuadas que permitan la reanudación del experimento.
Opción de detención
Normal Stop
(End of Lane\Chemistry)
(Detención normal [Final
de carril\química])
Opción de análisis
en tiempo real
Keep As Is (Dejar tal
cual)
Complete For Run
(Completo para
experimento)
Complete For Read
(Completo para
lectura)
Normal Stop
Keep As Is (Dejar tal
(End of Cycle) (Detención
cual)
normal [Final de ciclo])
Complete For Run
(Completo para
experimento)
Complete For Read
(Completo para
lectura)
Immediate Stop (Detención No option (No hay
inmediata)
opción)
1
¿Se puede reanudar?
Sí. El experimento se reanuda con el siguiente
comando de adquisición de imágenes o de la
siguiente química.
No. El experimento no se puede reanudar.
Sí. El experimento se reanuda al comienzo de
la siguiente lectura.
Sí. El experimento se reanuda en el siguiente
ciclo.
No. El experimento no se puede reanudar.
Sí. El experimento se reanuda al comienzo de
la siguiente lectura.
No.
Desde la pantalla Run Overview (Resumen del experimento), seleccione Stop (Detener).
El menú de detención se abre.
Figura 53 Detención del experimento
2
154
Seleccione una de las siguientes opciones de detención:
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Seleccione una opción de detención:
• Normal Stop (End of Lane\Chemistry) (Detención normal [Final de
carril/química]): Detiene solo el experimento después de que se haya finalizado la
química actual o el comando de procesamiento de imágenes y, a continuación,
coloca la celda de flujo en un estado seguro.
• Normal Stop (End of Cycle) (Detención normal [Final de ciclo]): Detiene solo el
experimento después de que se haya finalizado el ciclo actual y, a continuación,
coloca la celda de flujo en un estado seguro.
• Immediate Stop (Detención inmediata): Detiene el experimento sin finalizar la
operación actual y no coloca la celda de flujo en un estado seguro. No puede
reanudar un experimento que se detuvo con la opción de detención inmediata.
4
Seleccione una de las siguientes opciones de análisis en tiempo real:
• Keep As Is (Dejar tal cual): El experimento se detiene sin ninguna modificación en
el análisis en tiempo real. El experimento puede reanudarse desde donde se ha
detenido.
• Complete For Run (Completo para experimento): El análisis en tiempo real se
detiene. La información del experimento, los parámetros del experimento y los
archivos de la fórmula se actualizan para reflejar el total de ciclos cuando finalizó
el último ciclo. A continuación, el análisis en tiempo real se reinicia para finalizar
la llamada de bases del experimento hasta el punto en que este último se detuvo.
El experimento no se puede reanudar.
• Complete For Read (Completo para lectura): El análisis en tiempo real se detiene.
La información del experimento, los parámetros del experimento y los archivos de
la fórmula se actualizan para recortar la longitud de la lectura actual hasta el
último ciclo completado. Esto no afectará a las lecturas posteriores. A continuación,
el análisis en tiempo real se reinicia para finalizar el análisis de la lectura actual.
El experimento se puede reanudar al comienzo de la siguiente lectura.
5
Tras detener el experimento, seleccione Return to Start (Volver a iniciar) en la pantalla
Run Overview (Resumen del experimento). Se abre la pantalla Welcome (Bienvenida).
Reanudación de un experimento detenido
Se puede reanudar un experimento únicamente si se detuvo de forma segura con la
detención normal con una de las opciones de análisis en tiempo real que permiten
reanudar el experimento.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
155
Detención y reanudación de un experimento
3
Solución de problemas
NOTA
Si en la parte contigua se está realizando una generación de grupos o la secuenciación
química "paired-end", el experimento no se reanudará hasta que haya finalizado el proceso
en curso.
1
En la pantalla Welcome (Bienvenida), seleccione Sequence (Secuenciar) y, a
continuación, seleccione Resume Run (Reanudar experimento). Se abre la pantalla
Resume (Reanudar).
2
Seleccione la carpeta del experimento correspondiente en la lista desplegable.
NOTA
El software reanuda el experimento en el punto en que se detuvo y se establece de manera
predeterminada la configuración correcta en la pantalla Resume (Reanudar).
3
Confirme la configuración en la pantalla Resume (Reanudar) o seleccione el punto
adecuado en el que desea reanudar el experimento.
• Resume At (Reanudar en) enumera la lectura o el punto en que se va a reanudar el
experimento.
• Start At Cycle (Comenzar en ciclo) muestra el ciclo que se va a reanudar.
PRECAUCIÓN
Illumina no recomienda reanudar un experimento en el momento de procesamiento de
"paired-end", excepto para la rehibridación del cebador de la Lectura 2.
4
Confirme la configuración en la pantalla Resume (Reanudar) o seleccione los
comandos de química y las imágenes que desea reanudar. Para obtener más
información, consulte Configuración de ejemplo para reanudar un experimento en la
página 156.
5
Seleccione Next (Siguiente) para continuar. El software le guiará a través de los pasos
restantes de configuración del experimento.
Configuración de ejemplo para reanudar un experimento
Si se ha detenido el experimento tras la adquisición de imágenes del carril 1 en el ciclo 23,
el software define automáticamente los ajustes de reanudación del experimento de la
Lectura 1 en el ciclo 23. El sistema muestra los siguientes ajustes en la pantalla Resume
(Reanudar):
} Resume At: (Reanudar en:) Read #1 (Lectura 1)
} Start At Cycle: (Comenzar en ciclo:) 23
156
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Dado que el experimento en este ejemplo se detuvo durante un paso de adquisición de
imágenes, Imaging (no chemistry) (Imágenes [sin química]) se selecciona automáticamente.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
157
Detención y reanudación de un experimento
Figura 54 Ejemplo de reanudación del ciclo 23
Solución de problemas
Pausa de un experimento
PRECAUCIÓN
No ponga en pausa un experimento durante la adquisición de imágenes. Utilice la detención
normal, finalice el ciclo o complete la función de carril para detener y reanudar un
experimento.
Ponga en pausa un experimento desde la pantalla Run Overview (Resumen del
experimento). Puede que sea necesario poner en pausa un experimento para comprobar sus
componentes, tales como los volúmenes de reactivos, antes de continuar. En condiciones
normales, no es necesario poner en pausa un experimento.
1
En la pantalla Run Overview (Resumen del experimento), seleccione Pause (Pausa). El
menú de pausa se abre.
Figura 55 Opciones de pausa
2
Seleccione Normal Pause (Pausa normal).
3
Seleccione Yes (Sí) para confirmar el comando de pausa. El software finaliza la
química actual o el comando de procesamiento de imágenes y coloca la celda de flujo
en un estado seguro.
4
Seleccione Resume (Reanudar) para reanudar el experimento.
Cambio de reactivos durante un experimento
Si comenzó su experimento con un volumen parcial de reactivos, utilice la función de
cambio de reactivos para poner en pausa su experimento y volver a llenar los reactivos.
158
1
En la pantalla Run Overview (Resumen del experimento), seleccione Pause (Pausa). El
menú de pausa se abre.
2
Seleccione Change Reagents (Cambiar reactivos).
3
Seleccione Yes (Sí) para confirmar el comando de pausa. El software finaliza el análisis
químico o el comando de adquisición de imágenes en curso, coloca la celda de flujo en
un estado seguro y abre la pantalla Reagents (Reactivos).
4
En la pantalla Reagents (Reactivos), introduzca los siguientes parámetros de reactivo:
• El ID del kit de reactivos de los nuevos reactivos.
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
NOTA
La casilla de verificación del cebado se desactiva en la pantalla Change Reagents (Cambiar
reactivos). No es necesario realizar el cebado.
5
Seleccione Next (Siguiente) para continuar con la carga de reactivos.
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
159
Pausa de un experimento
• El número de ciclos que se espera que duren los reactivos.
Solución de problemas
Rehibridación del cebador
El experimento de rehibridación repite el paso de secuenciación de hibridación del cebador.
Si los criterios de medición del experimento arrojan números bajos de grupos, intensidades
bajas de grupos u otros, realice una rehibridación del cebador para recuperar la celda de
flujo. La rehibridación del cebador no daña a los grupos de la celda de flujo.
Celda de flujo de HiSeq v4
Todos los pasos de la rehibridación se realizan en el HiSeq 2500. El kit incluye cebadores
para Lectura 1, Lectura de índice 1, Lectura de índice 2 para celdas de flujo de lectura
individual y Lectura 2.
Nombre del kit de rehibridación
Instrucciones sobre el flujo de trabajo
HiSeq Multi-Primer Rehyb Kit v4
N.º de catálogo GD-403-4001
HiSeq Primer Rehybridization Guide (Guía de
rehibridación del cebador de HiSeq), n.º de
referencia 15050105
Celda de flujo de HiSeq v3
La rehibridación del cebador de Lectura 1 se realiza en el cBot. El kit incluye una placa de
reactivos de cBot que contiene el cebador de secuenciación de Lectura 1 HP6. Para las
bibliotecas de Nextera, utilice HP10 de la caja TruSeq Dual Index Sequencing Primer Box.
Nombre del kit de rehibridación
Instrucciones sobre el flujo de trabajo
TruSeq v2 cBot Multi-Primer Rehyb Kit
N.º de catálogo GD-304-2001
Read 1 Primer Rehybridization on the cBot
(Rehibridación del cebador de Lectura 1 en cBot),
n.º de referencia 15018149
Celda de flujo rápida
Todos los pasos de la rehibridación se realizan en el HiSeq 2500. El kit incluye cebadores
para Lectura 1, Lectura de índice 1, Lectura de índice 2 para celdas de flujo de lectura
individual y Lectura 2.
160
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Instrucciones sobre el flujo de trabajo
HiSeq Rapid Rehyb Kit
N.º de catálogo GD-404-1001
HiSeq Rapid Run Primer Rehybridization
(Rehibridación del cebador mediante experimento
rápido de HiSeq), n.º de referencia 15059379
TruSeq Rapid Rehyb Kit
N.º de catálogo GD-402-2001
TruSeq Rapid Run Primer Rehybridization
(Rehibridación del cebador mediante experimento
rápido de TruSeq), n.º de referencia 15039627
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
161
Rehibridación del cebador
Nombre del kit de rehibridación
162
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
%
% PF 138
A
análisis en tiempo real
agrupación de puntuaciones Q 139
archivos de entrada 131
archivos de registro 141
archivos de salida 131, 141
con experimento detenido 154
corrección de matriz de color 137
criterios de medición de
experimento 134
experimento detenido, reanudación
automática 132
hebra retrasada 137
puntuación de calidad 139
resultados 141
apagado del instrumento 127
apagar instrumento 127
archivo de configuración, análisis en
tiempo real 131, 142
archivo RTA.exe.config 131
archivos de estadísticas 131
archivos de filtro 131, 141
archivos de llamadas de bases 131, 141
archivos de registro, análisis en tiempo
real 141
archivos de salida 141
llamadas de bases 131
ubicaciones de grupos 131
archivos InterOp 131, 142
archivos locs 141
asistencia al cliente 167
asistencia técnica 167
ausencia de llamadas 138
ayuda
documentación 19
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
Índice alfabético
Índice alfabético
B
BaseSpace
hoja de muestras 28, 59
hojas de muestras 16
C
carga de celda de flujo
burbujas, fugas 38, 45, 68, 75
celda de flujo para secuenciación 43,
73
carga de reactivos 31, 33
pesaje 30
posiciones de SBS 30
tapas de embudo 30
cargar celda de flujo
cebar celda de flujo 36, 66
cargar reactivos 80, 96
consumibles 30
PW1 en posición 2 30
carpeta de salida
ubicación predeterminada 13
cebado
preparación 39, 69, 105
volumen de residuo 105
cebar
volumen de residuos 39, 69
celda de flujo
cargar 41, 71, 106
grupos que superan el filtro 138
ID de celda de flujo 89
ID de la celda de flujo 26, 56, 91
limpiar 43, 73, 108
matriz aleatoria 138
numeración de placas 145
palanca 36, 43, 66, 73, 102, 108
solución de problemas 149
soporte de celda de flujo 34, 64, 101
163
Índice alfabético
celda de flujo de tramas
posiciones de grupo 136
ciclos, supervisar 47, 77, 112
compartimento de fluídica 3
compartimento de la celda de flujo 3, 5
compartimento de reactivos 3-4
componentes
compartimento de fluídica 3
compartimento de la celda de
flujo 3, 5
compartimento de reactivos 3-4
módulo óptico 3
compresión de datos 139
comprobación del sistema 10
comunicación cruzada 137
configuración del experimento
carga de celda de flujo 43, 73
confirmar el flujo correcto 38, 45, 68,
75
confirmar el flujo correcto, valores
predeterminados 38, 45, 68, 75
consumibles
kits de secuenciación de
Illumina 22, 50, 84
proporcionados por el usuario 17
consumibles para secuenciación 22, 50,
84
consumibles proporcionados por el
usuario 17
corrección de matriz de color 137
D
detención de un experimento 154
detención normal 154
doble indexación
configuración en pantalla de
fórmulas 27, 58, 93
en celda de flujo "paired-end" 27, 58,
93
documentación 19, 167
E
empírico de hebras 137
errores y advertencias
iconos de estado 12
escala Phred 139
espacio en disco, comprobar 15
164
esquema de indexación 28, 59
estadísticas
archivos 131
estado del instrumento 13
experimentos escalonados 151
extracción de intensidad 136
F
filtro de castidad 138
fluídica, solución de problemas 149,
152
flujo de trabajo
experimentos escalonados 151
formación en línea 19
G
generación de plantillas 136
grupos que superan el filtro 138
H
hebra adelantada 137
hebra retrasada 137
hoja de muestras
BaseSpace 28, 59
resumen 16
I
icono de alerta de estado 12
iconos
alerta de estado 12
errores y advertencias 12
imágenes
guardar muestras de imágenes 26,
56, 91
supervisar 47, 77, 112
vistas en miniatura 26, 56, 91, 142
inactividad del instrumento 126
incorporación de primera base 47, 77,
112
confirmación 27, 57, 92
ubicación de informe 27, 57, 92
indicadores de actividad 11
indicadores de sensor 11
informe de primera base 47, 77, 112
informes
incorporación de primera base 27,
47, 57, 77, 92, 112
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
L
lavado
lavado de mantenimiento 118
lavado con agua 10, 122
consumibles 122
duración 122
lavado de mantenimiento 10, 118
duración 124-125
lavado del instrumento 118
lavados
lavado con agua 122
solución de lavado de
mantenimiento
preparar 119
llamada de bases
ciclo 12 138
puntuación de calidad 138
M
modos
cambio 124
modos de cambio 124
modos de secuenciación
cambio 124
módulo óptico 3
mostrar archivo de registro 13
N
nombre de experimento 26
numeración de placas 145
P
página de estado 47, 77, 112
palanca de celda de flujo
posición 1 36, 43, 66, 73
posición 2 36, 43, 66, 73
palanca de la celda de flujo
posición 0 34, 64, 101
pantalla de bienvenida 9
comandos 10
menú 13
pantalla de configuración de la celda de
flujo 26, 56, 91
pantalla de fórmula 89
pantalla de lectura 89
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
pantalla de reactivos 29, 59, 94
pantalla de revisión de la configuración
del experimento 89
pasos de análisis químico,
supervisar 47, 77, 112
pesaje de reactivos
antes del experimento 30
pesar reactivos
después del experimento 117
posición de los reactivos
indexación 62
posiciones de los reactivos
paired-end 80
posiciones de reactivo
SBS 30
posiciones de reactivo SBS 30
posiciones de reactivos
paired-end 31, 33
probabilidad de error 139
puntuaciones de calidad 139
agrupación 139
generar 134
puntuaciones Q 139
R
reactivos
carga 31, 33
cargar 62, 80
cargar, ICB 81
cargar, SBS 96
cebado 105
cebar 39, 69
descargar 117
paired-end 31, 33, 80
pantalla de reactivos 29, 59, 94
registrar ID del kit 29, 59, 94
registro, ubicaciones de grupo 136
RunInfo.xml 141-142
S
sector 26, 56, 91
secuenciación indexada
reactivos, cargar 62
secuenciación paired-end
reactivos, carga 31, 33
reactivos, cargar 80
servidor LIMS 13
165
Índice alfabético
intensidades de grupo 47, 77, 112, 137
Índice alfabético
software
acerca de, versión 13
análisis en tiempo real 9
control de HiSeq 15
Experiment Manager 16
inicialización 7
mostrar archivo de registro 13
pantalla de bienvenida 9
software de control de HiSeq 9
solución de problemas 149
ver pantalla completa 13
visor del análisis de secuenciación 9
software bcl2fastq 131
software de análisis en tiempo real 9
software de control de HiSeq 9, 15
solución de lavado de mantenimiento
almacenar 118
desecho 118
preparar 119
solución de problemas 149
cargar la celda de flujo 149
fluídica 152
registro 136
soporte de celda de flujo
pasadores guía 36, 66
ubicaciones de los orificios de
vacío 34, 64, 101
soporte de la celda de flujo
pasadores guía 43, 73
supervisar el experimento 47, 77, 112
visor del análisis de secuenciación 9
descripción general 135
volúmenes esperados 122
T
técnica, ayuda 167
U
ubicación de generación de grupos
archivos 141
ubicación de grupos
archivos 131
generación de plantillas 136
ubicaciones de carpetas, configuración
predeterminada 13
unidad DoNotEject 7
V
visor de análisis de secuenciación
archivos InterOp 131
166
N.º de referencia 15035786 Rev. D ESP
Si necesita asistencia técnica, póngase en contacto con el servicio de asistencia técnica de
Illumina.
Tabla 16 Información de contacto general de Illumina
Dirección
Sitio web de
Correo electrónico
5200 Illumina Way
San Diego, CA 92122, EE. UU.
www.illumina.com
techsupport@illumina.com
Tabla 17 Números de teléfono del Servicio de asistencia al cliente de Illumina
Zona
Norteamérica
Alemania
Austria
Bélgica
Dinamarca
España
Finlandia
Francia
Número de contacto
1.800.809.4566
0800.180.8994
0800.296575
0800.81102
80882346
900.812168
0800.918363
0800.911850
Zona
Irlanda
Italia
Noruega
Países Bajos
Reino Unido
Suecia
Suiza
Otros países
Número de contacto
1.800.812949
800.874909
800.16836
0800.0223859
0800.917.0041
020790181
0800.563118
+44.1799.534000
Hojas de datos de seguridad
Las hojas de datos de seguridad (SDS) están disponibles en el sitio web de Illumina en
support.illumina.com/sds.html.
Documentación del producto
La documentación del producto en PDF está disponible para su descarga en el sitio web
de Illumina. Vaya a support.illumina.com, seleccione un producto y, a continuación,
haga clic en Documentation & Literature (Documentación y literatura).
Guía del usuario del sistema HiSeq 2500
167
Asistencia técnica
Asistencia técnica
Illumina
San Diego, California 92122 U.S.A.
+1.800.809.ILMN (4566)
+1.858.202.4566 (fuera de Norteamérica)
techsupport@illumina.com
www.illumina.com
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